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    核酸適配體親和柱凈化-高效液相色譜法測定蓮子中黃曲霉毒素B1

    2020-05-11 05:56趙穎王楠高華龍郭子軒陸安祥郭曉軍盧靜華欒云霞
    分析化學(xué) 2020年5期
    關(guān)鍵詞:黃曲霉液相活化

    趙穎 王楠 高華龍 郭子軒 陸安祥 郭曉軍 盧靜華 欒云霞

    摘?要?以特異性的核酸適配體作為識別元件,制備了黃曲霉毒素B1 (AFB1)的適配體親和柱(AAC),用于AFB1 的特異性識別和富集。對AAC的載樣液中有機溶劑含量、載樣液的體積和淋洗體積等條件進行了優(yōu)化。此AAC吸附AFB1 的柱容量達到(334.6±18.2) ng,且AAC可重復(fù)使用20次。蓮子樣品經(jīng)AAC凈化富集后,用高效液相色譜-光化學(xué)衍生熒光法檢測,外標(biāo)法定量,AFB1 檢出限達到0.05 ng/mL,回收率為91.8%~108.6%。本方法為食品、農(nóng)產(chǎn)品和中藥等復(fù)雜基質(zhì)中痕量毒素的提取富集和分析提供了新的參考,具有良好的應(yīng)用前景。

    關(guān)鍵詞?適配體親和柱;黃曲霉毒素B1 ;固相萃取;N-羥基硫代琥珀酰亞胺活化的瓊脂糖;蓮子

    1?引 言

    黃曲霉毒素B1 (Aflatoxin B1 ,AFB1)是由黃曲霉、寄生曲霉等真菌產(chǎn)生的次級產(chǎn)物[1],毒性極強,被世界衛(wèi)生組織的癌癥研究機構(gòu)劃分為I類致癌物[2]。AFB1 具有致突變性、致畸性和致癌性[3~5],可在采摘前、收獲后儲存、運輸和食用等不同階段對農(nóng)產(chǎn)品、食品及中藥材等產(chǎn)生污染[6],威脅人類健康。很多國家對AFB1 都有嚴(yán)格的限量標(biāo)準(zhǔn),歐盟規(guī)定中藥材(植物藥)中AFB1 的限量標(biāo)準(zhǔn)為2 μg/kg[1],我國規(guī)定中藥材中AFB1 的限量標(biāo)準(zhǔn)為5 μg/kg[8]。因此,為了及時發(fā)現(xiàn)污染,防止AFB1 進入食物鏈,并盡量減少國際交易中貿(mào)易壁壘帶來的損失,研究人員不斷尋求快速、可靠地定量檢測黃曲霉毒素的方法。

    蓮子是水生草本植物蓮的種子,富含蛋白質(zhì)、維生素和礦物質(zhì),可食藥兩用[7,8]。然而,蓮子極易被黃曲霉毒素污染[9],特別在中國南方蓮子主產(chǎn)區(qū),其濕潤的氣候條件適宜AFB1 的產(chǎn)生,對消費者的健康造成極大威脅。因此,有必要對蓮子中AFB1 的污染狀況進行監(jiān)測和評價[10],建立蓮子中黃曲霉毒素的有效分析方法,而對蓮子樣品中AFB1 進行提取富集是提高其檢測靈敏度的關(guān)鍵。

    目前,常用的AFB1 定性與定量檢測方法有高效液相色譜法(High-performance liquid chromatography,HPLC)[11~14]、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(HPLC-tandem mass spectrometry,HPLC-MS)[15]、酶聯(lián)免疫吸附法(Enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)[16,17]及薄層色譜法(Thin-layer chromatography,TLC)[18,19]等,廣泛用于谷物、豆類、堅果、調(diào)味品、嬰幼兒配方食品和輔助食品中AFB1 的測定[20~23]。免疫親和柱(Immune affinity column,IAC)是檢測AFB1 時廣泛使用的前處理方法,已被我國國標(biāo)、行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)、中國藥典、國際標(biāo)準(zhǔn)(Association of Official Analytical Chemists,AOAC)等收錄。然而,IAC以抗體為識別元件,而抗體生產(chǎn)依賴動物,存在批次差異大、成本高、對溫度、pH值以及鹽濃度依賴性強、不可逆變性等缺點[24,25],導(dǎo)致IAC存在價格昂貴、難以重復(fù)使用和檢測成本高等問題。適配體是一類親和力高和特異性強的單鏈核苷酸分子,具有可選擇性識別特定靶標(biāo)的能力。作為“化學(xué)抗體”,核酸適配體具有良好的熱穩(wěn)定性和化學(xué)穩(wěn)定性、易于修飾、可體外制備和合成成本低等天然優(yōu)勢[26]。因此,制備適配體親和柱(Aptamer affinity column,AAC)用于真菌毒素的凈化富集,具有良好的應(yīng)用前景。

    目前,以適配體為識別元件的親和柱已被用于血液、啤酒和花生中小分子目標(biāo)物的前處理,如可卡因、赭曲霉毒素A(Ochratoxin,OTA)等[27,28,23]。然而,用于富集凈化中藥材中AFB1 的AAC還未見報道。本研究以無毒的N-羥基硫代琥珀酰亞胺活化的瓊脂糖(N-Hydroxy succinimide,NHS-sepharose)替代傳統(tǒng)親和柱中使用的高毒性溴化氰活化的瓊脂糖作為固相載體[23,29,30],制備了AFB1-AAC。對AFB1-AAC的柱容量、準(zhǔn)確性、重復(fù)性和特異性等性能進行評價,并與AFB1-IAC的凈化效果進行比較。將優(yōu)化后的AAC用于蓮子樣品中AFB1 的凈化富集,并利用高效液相色譜-光化學(xué)衍生熒光檢測法(HPLC-PCD-FCD)進行分析檢測。

    2?實驗方法

    2.1?儀器與試劑

    1260系列高效液相色譜-熒光檢測器(美國安捷倫公司);0.2 μm針筒式濾膜過濾器(天津津騰實驗設(shè)備有限公司);玻璃纖維濾紙(110 mm,1.5 μm,青島普瑞邦生物工程有限公司);DHM200渦旋振蕩器(寧波洛尚智能科技有限公司);FE28 pH計(上海梅特勒-托利多儀器有限公司);GmbH臺式冷凍離心機(德國Sigma離心機有限公司);光化學(xué)衍生器(北京華安麥科生物技術(shù)有限公司);固相萃取柱管(1 mL帶凸緣柱管,天津艾杰爾飛諾美公司);黃曲霉毒素B1 免疫親和柱(康源泰博生物科技有限公司)。

    5-氨基修飾的AFB1 適配體(5-GTT GGG CAC GTG TTG TCT CTC TGT TCG CCT TCG CTA GGC CCA CA-3)由上海生工生物技術(shù)有限公司合成。NHS活化的瓊脂糖溶液(4B,90 mol/L)和Tris-HCl (Sigma-Aldrich公司);AFB1 、黃曲霉毒素B2(Aflatoxin B2,AFB2)、黃曲霉毒素G1 (Aflatoxin G1 ,AFG1)、黃曲霉毒素G2(Aflatoxin G2,AFG2)標(biāo)準(zhǔn)溶液(美國Romer公司);甲醇和乙腈(色譜純,美國Thermo Fisher Scientific公司)。其它試劑均為國產(chǎn)分析純試劑。實驗用水為Milli-Q系統(tǒng)(美國Millipore公司)制備的超純水。

    反應(yīng)緩沖液(150 mmol/L NaCl,pH 6.0);封閉緩沖液(150 mmol/L NaCl和0.2% BSA,pH 6.0);清洗緩沖液(50 mmol/L Tris HCl和150 mmol/L NaCl,pH 6.0);結(jié)合緩沖液(10 mmol/L Tris-HCl、120 mmol/L NaCl、5 mmol/L KCl、1 mmol/L MgCl2,pH 7.5),均于4℃保存。AFB1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液(5 ng AFB1 標(biāo)準(zhǔn)品用結(jié)合緩沖液稀釋并定容至30 mL)

    HPLC-PCD-FLD分析條件:色譜柱Venusil MP C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm,美國安捷倫公司);進樣量40 μL;柱溫箱為35℃;檢測器為熒光檢測器,激發(fā)波長360 nm,發(fā)射波長440 nm;為流動相為甲醇-水(55∶45,V/V),以0.8 mL/min流速進行等度洗脫[23]。

    2.2?親和吸附劑的制備

    通過氨基與NHS共價偶聯(lián),將適配體固定在NHS活化的瓊脂糖表面。首先,將氨基修飾的適配體溶于反應(yīng)緩沖液,在95℃加熱5 min,室溫下靜置30 min,使適配體形成所需的構(gòu)象。取300 μL NHS活化的瓊脂糖,用1 mL 10% HCl洗滌2次。將適配體加到NHS活化的瓊脂糖孵育2 h,在室溫下振蕩。離心,去除上清液,加入封閉緩沖液,在室溫下振蕩2 h。將懸浮液裝入1 mL 固相萃取柱管中,用5 mL清洗緩沖液清洗,最后用5 mL結(jié)合緩沖液將適配體親和柱活化,于4℃保存。

    2.3?AFB1-AAC的操作流程

    將AFB1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液加樣至AAC,依次經(jīng)過淋洗和洗脫,用HPLC檢測洗脫液中AFB1 ,計算回收率,以篩選AAC的富集凈化的最佳條件。首先,用5 mL結(jié)合緩沖液將AAC活化;然后,將30 mL AFB1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液上樣至AAC中,以1 mL結(jié)合緩沖液淋洗,1 mL甲醇洗脫。洗脫液于40℃氮吹至近干,用1 mL 液相色譜流動相復(fù)溶,過0.2 μm濾膜,用HPLC-PCD-FLD檢測。

    AFB1-AAC的再生:使用前,AAC用5 mL結(jié)合緩沖液活化,經(jīng)過富集凈化過程后,用5 mL結(jié)合緩沖液活化,進行再生,4℃保存,以備下一次使用。

    2.4?樣品處理

    準(zhǔn)確稱取5 g蓮子樣品(精確至0.01 g)和1 g NaCl,加入25 mL甲醇-水(70∶30,V/V)進行提取,使用渦旋振蕩器,以2500 r/min振蕩20 min后,10000 r/min離心10 min。每管中取5 mL上清液,稀釋至50 mL,用玻璃纖維濾紙過濾,取續(xù)濾液,備用。以5 mL結(jié)合緩沖液活化AAC后,準(zhǔn)確移取續(xù)濾液30 mL上樣至AAC,1 mL結(jié)合緩沖液淋洗,將2~3 mL空氣通過AAC,1 mL甲醇洗脫,收集的洗脫液在40℃氮吹至近干,用1 mL液相流動相復(fù)溶,過0.2 μm濾膜,轉(zhuǎn)入進樣瓶后,用HPLC-PCD-FLD檢測。

    2.5?AFB1-AAC和AFB1-IAC的比較

    蓮子加標(biāo)樣品(0.5、5和50 μg/kg)分別通過AFB1-AAC和AFB1 ?IAC進行凈化和富集。根據(jù)AFB1-IAC的使用說明,取10 mL上清液,用20 mL水稀釋后,用玻璃纖維濾紙過濾。將15 mL稀釋液上樣至IAC,10 mL結(jié)合緩沖液淋洗,通入2~3 mL空氣,1 mL甲醇洗脫,洗脫液經(jīng)40℃氮吹至近干,用1 mL液相流動相復(fù)溶,過0.2 μm膜。最后,分別用HPLC-PCD-FLD檢測,計算回收率,比較IAC和AAC對AFB1 的識別與捕獲能力。

    3?結(jié)果與討論

    3.1?AFB1-AAC的富集原理

    將氨基修飾的AFB1 適配體共價偶聯(lián)至NHS活化的瓊脂糖上,制備AAC[31]。蓮子樣品經(jīng)過提取、過濾、稀釋后,過柱。AFB1 與適配體特異性結(jié)合,未被結(jié)合的干擾物質(zhì)被淋洗出來,flow of AFB1-apatmer affinity column (AAC)最后用甲醇洗脫,洗脫液用HPLC-PCD-FLD檢測,AAC凈化的步驟如圖1所示,包括親和柱的活化、樣品的載入(載樣過程)、干擾物的淋洗和靶標(biāo)的洗脫。

    3.2?AFB1-AAC應(yīng)用條件的優(yōu)化

    載樣中有機溶劑濃度影響適配體結(jié)合活性,而AFB1 通常是用有機溶劑從樣品中提取的,如本研究采用甲醇-水(70∶30,V/V),高濃度的甲醇會破壞適配體的結(jié)構(gòu)。因此,需考察載樣過程中適配體親和柱對甲醇的最大耐受度。5 ng AFB1用含有不同濃度的甲醇(1%、5%、10%、25%、40%、55%和70%(V/V))的結(jié)合緩沖液稀釋到30 mL,分別全部載樣到適配體親和柱中,用結(jié)合緩沖液淋洗,1 mL甲醇洗脫。由圖2可見,隨著甲醇濃度增加,AFB1 的回收率逐漸下降。載樣液中甲醇濃度小于10%時,回收率接近100%,這與本研究組之前的研究結(jié)果一致[12,23],表明甲醇濃度應(yīng)控制在10%以下。因此,本研究采用10倍稀釋法稀釋提取液,以降低有機試劑的濃度和基質(zhì)效應(yīng)。

    進一步考察AAC捕獲AFB1 的最大載樣體積。將AFB1 (5 ng)標(biāo)準(zhǔn)品溶液分別用結(jié)合緩沖液稀釋至1、 2、 5、 10、 20、 30、 50和65 mL[12,23]。,將稀釋后的溶液分別上樣到AAC中,以相同的淋洗和洗脫步驟處理,結(jié)果如圖3A所示,當(dāng)載樣體積大于30 mL時,回收率低于70%。因此,在實際樣品分析中,選擇載樣體積為30 mL,為文獻[23]報道的AAC載樣體積的6倍。在本課題組之前的報道[12]中,磁珠需在液相體系中進行實驗,為開放體系;而本研究采用的AAC是在固相體系中進行凈化富集,屬于封閉體系,因此,AAC更適合富集純化毒性靶標(biāo)。另外,本研究的偶聯(lián)方式與文獻[12,23]有所不同。鏈霉親和素和生物素非共價偶聯(lián)的方式,存在載樣體積小、不可重復(fù)使用等缺點[12];溴化氫活化的瓊脂糖和氨基修飾的適配體的偶聯(lián)反應(yīng)需過夜反應(yīng),所需實驗時間較長[23];而本研究中適配體和固相載體的偶聯(lián)時間僅需2 h。對于痕量AFB1 的檢測,載樣體積的增加使更多的AFB1 被適配體識別捕獲,經(jīng)AAC富集凈化后的洗脫液中目標(biāo)物含量更高,有利于提高HPLC-PCD-FLD的檢測靈敏度。

    21?Setlem K,Mondal B,Ramlal S,Kingston J. Front. Microbiol.,2016,7: 1909

    22?ZHANG Hong-Bo,JIN Zhi-Min,GAO Zhi-Hui,ZHENG Yu-Shan. Food Safety Guide,2019,(1): 70-73

    張宏博,靳志敏,高智慧,鄭玉山. 食品安全導(dǎo)刊,2019,(1): 70-73

    23?Liu H M,Luan Y X,Lu A X,Li B R,Yang M H,Wang J H. Microchim. Acta,2018,185(1): NUSP71

    24?Song K M,Seonghwan L,Changill B. Sensors,2012,12(1): 612-631

    25?Li Y P,Sun L L,Zhao Q. Anal. Bioanal. Chem.,2018,410(24): 6269-6277

    26?Pichon V,Brothier F,Combés A. Anal. Bioanal. Chem.,2015,407(3): 681-698

    27?Madru B,Chapuis-Hugon F,Pichon V. Talanta,2011,85(1): 616-624

    28?De Girolamo A,Mckeague M,Miller J D,DeRosa M C,Visconti A. Food Chem.,2011,127(3): 1378-1384

    29?Wallukat G,Haberland A,Berg S,Schulz A,F(xiàn)reyse E J,Dahmen C,Kage A,Dandel M,Vetter R,Salzsieder E,Kreutz R,Schimke I. Circ. J.,2012,76(10): 2449-2455

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