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    基于多重聚合酶鏈式反應(yīng)和表面增強拉曼光譜技術(shù)的食源性病原菌檢測模型的建立與比較

    2020-05-04 09:49:08莊蓓蓓祁釗周紫卉黃昊宋祥軍邵穎涂健
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2020年7期
    關(guān)鍵詞:食源性拉曼沙門氏菌

    莊蓓蓓,祁釗,周紫卉,黃昊,宋祥軍,邵穎,涂健

    (安徽農(nóng)業(yè)大學,獸醫(yī)病理生物學與疫病防控安徽省重點實驗室,安徽 合肥,230036)

    沙門氏菌、大腸桿菌和金黃色葡萄球菌是3種主要的食源性病原菌,近年來關(guān)于3種病原菌引起食物中毒的報道較多[1-3],大多數(shù)中毒與食用受污染的牛奶、碎牛肉、水和乳制品有關(guān)。據(jù)統(tǒng)計可知,食源性疾病引起的腹瀉和侵襲性疾病致死多達23萬人[4],因此,對食源性病原菌進行快速準確的監(jiān)測是控制和預(yù)防人類食源性病原菌感染的最有效途徑之一。隨著食源性病原菌檢測技術(shù)的快速發(fā)展,檢測技術(shù)從耗時較長的培養(yǎng)基篩選[5],發(fā)展到特異性較強的酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme linked immunosorbent assay, ELISA)[6]和可同時檢測多種病原菌的多重PCR[7],再延伸到基因探針[8]和生物傳感器[9]等現(xiàn)代常用檢測技術(shù),這些檢測方法在一定程度上具有快速、有效等優(yōu)點,但是仍存在一些局限性,比如容易出現(xiàn)假陽性、成本高等。因此,迫切需要開發(fā)出一種具有樣品預(yù)處理簡單、成本低、靈敏度高、便于現(xiàn)場檢測等優(yōu)點的檢測方法。表面增強拉曼光譜(surface-enhanced Raman scattering, SERS)利用不同菌種細胞壁的結(jié)構(gòu)組成不同,產(chǎn)生獨特的拉曼位移,廣泛應(yīng)用于食品病原菌檢測鑒定[10]。

    普通的拉曼信號非常微弱,在強背景熒光中很難被檢測到,為了減少背景熒光的干擾,提高拉曼信號的強度,LAN等[11]采用金納米顆?;椎睦⑸洌瑧?yīng)用PCA-HCA分析方法準確地區(qū)分出鼠傷寒沙門氏菌和大腸桿菌之間的差異。為了尋找增強效果更好的拉曼基底,WANG等[12]制備了金包覆磁性納米顆粒,與金黃色葡萄球菌抗體結(jié)合,捕獲細菌的檢測限低至10 CFU/mL。此外,為了實現(xiàn)SERS技術(shù)在食品安全檢測中的廣泛應(yīng)用,CHO等[13]研究了一種銀增強技術(shù)和膜過濾器輔助的SERS方法用于快速檢測碎牛肉中的大腸桿菌,分別在1和3 h內(nèi)從純培養(yǎng)物和碎牛肉中檢測到極低濃度的大腸桿菌。

    隨著納米技術(shù)的進步,便攜式拉曼光譜儀已應(yīng)用在食用油、農(nóng)藥和非法添加物等食品檢測中[14-15],根據(jù)SERS技術(shù)的理論和應(yīng)用實踐,有望建立起快速、特異、靈敏的SERS病原菌檢測。本研究建立的基于多重PCR和SERS技術(shù)的沙門氏菌、大腸桿菌和金黃色葡萄球菌檢測方法,對食源性病原菌快速、精準的監(jiān)測奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與菌株

    AgNO3、檸檬酸三鈉,西隴化工股份有限公司;DNA marker,生工生物工程(上海)股份有限公司;2×TaqPCR Master Mix,novoprotein;糞便基因組提取試劑盒,天根生化科技有限公司。

    大腸桿菌ATCC 44102、沙門氏菌ATCC 9150、福氏志賀氏菌、巴氏桿菌、變形桿菌、糞腸球菌、蘇云金芽孢桿菌和枯草芽孢桿菌,獸醫(yī)病理生物學與疫病防控安徽省重點實驗室保存;金黃色葡萄球菌ATCC 6538,上海獸醫(yī)研究所饋贈。

    1.2 主要儀器設(shè)備

    拉曼光譜儀,HORIBA堀場貿(mào)易有限公司;透射電鏡,HT-7700日本日立公司;紫外-可見-近紅外分光光度計,日本島津公司;磁力加熱攪拌器,常州普天儀器制造有限公司;PCR儀、超微量核酸蛋白分析儀,BIO-RAD;核酸電泳儀,北京六一生物科技有限公司。

    1.3 細菌基因組DNA提取

    采用“水煮法”提取細菌DNA,取2 mL在LB肉湯中過夜培養(yǎng)的菌液,12 000 r/min離心5 min,生理鹽水洗滌菌體,重懸混勻后置于沸水中煮沸10 min,立即放入-20 ℃冰箱中冰凍30 min,室溫溶解后離心取上清用于PCR擴增。

    1.4 引物設(shè)計及引物特異性驗證

    根據(jù) GenBank 中已發(fā)表的參考序列對沙門氏菌、大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的hilA、uidA和clfA靶基因設(shè)計特異性引物(表1),引物由北京擎科生物技術(shù)有限公司合成。

    1.5 多重PCR體系建立及條件優(yōu)化

    以大腸桿菌ATCC 44102、沙門氏菌ATCC 9150和金黃色葡萄球菌ATCC 6538為模板進行PCR擴增,優(yōu)化引物濃度、退火溫度和2×TaqPCR Master Mix用量。多重PCR反應(yīng)體系:mix 12.5 μL,2 μmol/L的上下游引物各1 μL,模板1 μL,超純水補足至25 μL。反應(yīng)程序: 95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共30個循環(huán);72 ℃后延伸7 min。PCR產(chǎn)物上樣于2%瓊脂糖凝膠,電泳后檢測擴增片段大小。

    表1 PCR引物序列

    1.6 多重PCR特異性和靈敏性檢測

    分別以標準陽性菌株和福氏志賀氏菌、巴氏桿菌、變形桿菌、糞腸球菌、蘇云金芽孢桿菌和枯草芽孢桿菌等陰性對照菌株的DNA為模板,每個樣品加入3對引物進行PCR擴增,驗證多重PCR的特異性。

    培養(yǎng)3種陽性菌株混合物至OD600為1.0,涂布平板計數(shù)確定細菌濃度后倍比稀釋,用于檢測多重PCR菌液靈敏度;提取陽性菌株的DNA,稀釋為不同濃度的DNA模板,檢測多重PCR的DNA敏感性。

    1.7 銀溶膠制備

    稱取33.72 mg的AgNO3,倒入200 mL滅菌去離子水的錐形瓶中,充分溶解后放置于磁力攪拌器上攪拌加熱15 min直至沸騰,再加入8 mL質(zhì)量分數(shù)為1%的檸檬酸鈉,40 min后停止加熱,待溶液溫度冷卻至室溫后離心濃縮10倍。

    1.8 銀納米顆粒的表征

    用碳支持膜(銅網(wǎng))蘸取濃縮好的銀納米顆粒以及銀納米顆粒包裹的細菌樣品,濾紙吸去多余液體,晾干后上樣于透射電子顯微鏡(transmission electron microscope, TEM)觀察銀膠粒徑。

    制備的銀溶膠原液稀釋10倍后,取3 mL加入石英比色皿中,使用紫外-可見-近紅外分光光度計對其進行光吸收波譜掃描,觀察銀膠粒子的特征吸收峰。

    1.9 SERS光譜采集

    SERS樣品制備:取1 mL菌液,8 000 r/min離心5 min得菌體沉淀,生理鹽水洗滌2次后加入2 mL銀溶膠,混勻置于石英比色皿,在拉曼儀液體池中進行光譜采集。

    采用拉曼光譜儀進行檢測前使用硅片進行校正,以520.7 cm-1峰作為基準峰,采用785 nm波長的激光器,激光強度設(shè)置為最大強度100 mw,拉曼光譜范圍為400~1 800 cm-1,分辨率為2 cm-1,單次采譜時間為60 s,循環(huán)次數(shù)為1次、狹縫孔徑為200 μm,PCA及光譜數(shù)據(jù)分析使用Origin 2019b軟件。

    1.10 表面增強拉曼光譜的靈敏性檢測

    菌液制備同1.6多重PCR靈敏度檢測,混合銀溶膠后進行SERS采集,用于檢測SERS的靈敏度。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單重PCR中驗證引物的特異性

    單重PCR驗證引物特異性的加樣內(nèi)容如表2所示,PCR擴增電泳圖如圖1-A所示,大腸桿菌uidA擴增出536 bp的條帶、沙門氏菌hilA擴增出398 bp的條帶,金黃色葡萄球菌clfA擴增出246 bp的條帶,引物間無交叉反應(yīng)。

    表2 單重PCR驗證引物特異性的加樣內(nèi)容

    2.2 多重PCR的特異性檢測

    分別以標準陽性菌株和陰性對照菌株的DNA為模板進行PCR擴增,結(jié)果如圖1-B所示,陽性菌株均擴增出目的條帶,而陰性菌株均未擴增出片段,表明多重PCR方法具有較好的特異性。

    2.3 多重PCR的敏感性檢測

    以稀釋后的陽性菌液為模板進行多重PCR擴增,結(jié)果如圖2-A所示,多重PCR檢測大腸桿菌、沙門氏菌、金黃色葡萄球菌的最低檢出量為104CFU/mL。

    A-單重PCR引物特異性;B-多重PCR特異性檢測;M-DL 600;1~5:dd H2O,混合陽性菌株,ATCC 44102,ATCC 9150,ATCC 6538;6~11:陰性菌株

    以不同濃度的陽性菌株DNA為模板進行多重PCR擴增,結(jié)果如圖2-B所示,多重PCR檢測到3種病原菌的最低檢出DNA量為50 pg/μL,具有較高的靈敏度。

    A-菌液敏感性;B-DNA敏感性;M-DL 600;A-1~8:dd H2O,混合陽性菌株,109,108,107,106,105,104 CFU/mL;B-1~12:dd H2O,混合陽性菌株,200 ng,100 ng,50 ng,10 ng,2 ng,1 ng,200 pg,100 pg,50 pg,10 pg

    2.4 銀納米顆粒的表征

    紫外可見光譜法和透射電鏡觀察是用于AgNPs結(jié)構(gòu)表征的最廣泛使用的技術(shù),透射電鏡觀察到銀納米顆粒呈球狀,大小均勻,粒徑約40 nm(圖3-A)。紫外可見光譜法檢測到銀膠的吸收峰在410 nm左右(圖3-B)。

    A-銀納米顆粒的TEM圖;B-銀溶膠的紫外吸收峰

    2.5 銀納米顆粒包裹細菌的TEM表征

    為研究銀納米顆粒是如何增強拉曼信號的,TEM觀察菌體與銀溶膠混合樣品,結(jié)果如圖4所示,銀納米顆粒均勻包裹在菌體表面,用以增強拉曼信號。

    圖4 銀納米顆粒包裹細菌的TEM圖

    2.6 三種菌株SERS譜峰的比較

    在400~1 800 cm-1范圍內(nèi)采集拉曼信號,SERS掃描結(jié)果如圖5所示,比較3種細菌的SERS譜峰,可觀察到730和1 330 cm-1左右處的2個強峰為腺嘌呤的典型拉曼特征,此外,大腸桿菌的主要特征峰在626、652、728、956,1 128、1 336、1 461、1 639、1 709 cm-1,沙門氏菌在454、524、643、729、1 009、1 118、1 329、1 395、1 458、1 643 cm-1有明顯的拉曼振動譜峰,而金黃色葡萄球菌的拉曼振動譜峰主要在634、732、1 207、1 276、1 340、1 379、1 460、1 547、1 636 cm-1。3者的譜峰特征有很大差異,可以作為區(qū)分3種細菌的依據(jù)。

    圖5 大腸桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌SERS譜峰

    2.7 PCA模型的建立

    3種標準菌株的PCA結(jié)果如圖6所示,前2個主成分的累積貢獻率是93.8%,第一、第二主成分包含了大部分光譜數(shù)據(jù)所具有的信息,PCA圖中可以看出大腸桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌各自聚集在一起,因此,認為3種菌株的譜峰顯著不同,可以明顯地區(qū)分開。

    2.8 SERS的靈敏度檢測

    如圖7所示,SERS檢測大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的最低檢出量為104CFU/mL,沙門氏菌最低檢出量為103CFU/mL。

    圖6 大腸桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌3種標準菌株的PCA分析

    圖7 SERS的靈敏度檢測

    3 結(jié)論與討論

    本研究為了同時檢測出3種食源性病原菌,建立了基于大腸桿菌、沙門氏菌和金黃色葡萄球菌uidA、hilA和clfA基因的三重PCR檢測方法,結(jié)果表明,3對引物擴增出的目的片段僅存在于陽性菌株,具有良好的特異性。GONG等[16]檢測到金黃色葡萄球菌和沙門氏菌的檢測限為100 pg/μL,而本研究的最低檢出DNA量為50 pg/μL,說明了本研究的檢測效率更高;此外,WEI等[17]在大腸桿菌O157∶H7、金黃色葡萄球菌、沙門氏菌培養(yǎng)液中檢出限為103CFU/mL,在模型食品體系中檢出限為104CFU/mL。本研究建立的多重 PCR 體系檢測3種細菌最低檢出量為104CFU/mL,敏感性的差異可能與細菌混合培養(yǎng)的組成或反應(yīng)體系有關(guān)。在實際樣品檢測中,只有一種細菌存在的情況很少,復(fù)雜的檢測環(huán)境對檢測結(jié)果有很大的影響,為了進一步接近樣品實際檢測效果,增加檢測的時效性,本研究檢測多重PCR敏感性的樣品是3個目標細菌混合共培后的菌液。

    本研究對銀納米顆粒的表征可知粒徑約為40 nm,這與MARWA等[18]的研究結(jié)果一致。與以往的研究相比[19],SERS譜峰的分布基本相同,只是在波數(shù)上存在一些時相。PCA的前2個主成分的累積貢獻率為93.8%,研究認為3種細菌有顯著差異。相比SUNDARAM等[20]鑒別食源性病原菌PCA分析的96%,主要區(qū)別于在制備銀納米顆粒時未使用聚乙烯醇,而聚乙烯醇主要作用是防止銀溶膠發(fā)生團聚。楊丹婷[21]以Ag NPs為基底最低檢測到105CFU/mL的大腸桿菌,WANG等[22]檢測沙門氏菌的檢測限為104CFU/mL,本研究檢測大腸桿菌和金黃色葡萄球菌的最低檢出量為104CFU/mL,沙門氏菌為103CFU/mL,而在CHONGWEN等[23]的研究中,使用萬古霉素修飾的Ag包覆磁性納米顆粒,檢出限低至5×102CFU/mL,由此可見,特異性基底的制備可以加強SERS檢測的靈敏性。

    SERS與多重PCR檢測相比較,后者需要經(jīng)過提取模板、PCR擴增、瓊脂糖凝膠驗證等過程,而SERS只需要進行拉曼掃描和結(jié)果比對,檢測時間相對節(jié)約了3 h。相對于多重PCR而言,SERS方法提高了沙門氏菌的檢測限,而且最近開發(fā)的各種標簽修飾技術(shù),比如特異性抗體修飾[24]、適配體修飾[25]的SERS技術(shù)以及萬古霉素和適配體的雙重識別[26]使得SERS技術(shù)檢測食源性致病菌的特異性更強,靈敏度更高。隨著便攜式拉曼光譜儀在食品檢測的應(yīng)用,SERS的現(xiàn)場快速檢測成為可能,對食品安全的監(jiān)測具有重要意義。

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