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    醫(yī)用透明質酸鈉凝膠對腫瘤生長和轉移影響的實驗研究

    2020-04-13 14:31:56蔡同凱楊文勝曹永兵海軍軍醫(yī)大學藥學系上海00433同濟大學醫(yī)學院上海0009上海中西醫(yī)結合醫(yī)院脈管病研究所上海0008
    藥學實踐雜志 2020年2期
    關鍵詞:轉移率透明質懸液

    蔡同凱,楊文勝,曹永兵,3,韓 華,閻 瀾 (.海軍軍醫(yī)大學藥學系,上海 00433;.同濟大學醫(yī)學院,上海0009;3.上海中西醫(yī)結合醫(yī)院脈管病研究所,上海 0008)

    透明質酸鈉(圖1)又稱玻璃酸鈉,是由交替的N-乙酰葡糖胺(GlcNAc)和葡糖醛酸(GlcA)單元組成[1]的聚合物,聚合度最大的相對分子質量(Mr)可以達到107。具有高度黏彈性、可塑性、滲透性、獨特的流變學特性以及良好的生物相容性等特點[2]。透明質酸鈉廣泛存在于人體,是構成人體細胞間質、眼玻璃體、關節(jié)滑液等結締組織的主要成分,在體內(nèi)具有保水、維持細胞外空間、調節(jié)滲透壓、潤滑、促進細胞修復等重要生理功能[3]。醫(yī)用透明質酸鈉凝膠(HA)為無色透明黏稠液體,主要成分為透明質酸鈉。HA 常用于腫瘤患者術后的抗粘連,其廣泛的生理學活性有可能使得腫瘤細胞易于擴增和轉移,文獻報道內(nèi)源性的透明質酸能促進腫瘤增殖[4-6]。因此,本研究考察外源性HA 是否會促進腫瘤的生長和轉移,以明確HA 是否可用于腫瘤患者的術后防粘連。為HA 用于腫瘤患者腹、盆腔手術術后防粘連提供實驗依據(jù)。

    圖 1 透明質酸鈉的結構式

    1 儀器和材料

    1.1 實驗材料

    醫(yī)用透明質酸鈉凝膠(HA,10 mg/ml,上海昊海生物科技股份有限公司,批號:18052122,Mr≥1.0×106),氟尿嘧啶注射液(5-Fu,上海旭東海普藥業(yè)有限公司,批號:FA1800416),胎牛血清(FBS,Gibco,批 號:1932595),McCoy’s 5A Medium(Gibco,批號:1967679),RPMI Medium 1640(Gibco,批號:1967664),MEM(Minimum Eagle’s Medium,HyClone,批號:AD20532472),胰酶(Trypsin,上海博光生物科技有限公司),磷酸鹽緩沖液(PBS,上海博光生物科技有限公司),MTT(上海博光生物科技有限公司),無水甲醇、二甲基亞砜(DMSO,國藥集團化學試劑有限公司),生物膠(批號:217201N2)、小鼠結腸癌細胞(CT26,上海中西醫(yī)結合醫(yī)院),人宮頸癌細胞(Hela)、人結腸癌細胞(HCT116,中國科學院上海生命科學研究院)。

    1.2 實驗動物

    裸鼠:88 只,上海斯萊克實驗動物有限公司,SPF 級,SCXK(滬)2017-0005;64 只,上海靈暢生物科技有限公司,SPF 級,SCXK(滬)2018-0003),動物飼養(yǎng)于同濟大學滬北校區(qū)(SYXK(滬)2018-0034)。所有動物實驗過程均符合實驗動物倫理學要求。

    1.3 實驗儀器

    酶標儀1510-00411C(Thermo),坤宏BMB224分析天平(南京伯尼塔科學儀器有限公司),ECLIPSE TE100 顯微鏡(Nikon),細胞培養(yǎng)箱(Thermo)。

    2 實驗方法

    2.1 MTT 法檢測腫瘤細胞的生長

    將狀態(tài)良好的腫瘤細胞用胰酶消化后離心,棄上清液,分別用對應培養(yǎng)液重懸成單個腫瘤細胞懸液,顯微鏡下計數(shù),然后分別稀釋成以下濃度:Hela(2×104個/ml),CT26(5×103個/ml),HCT116(104個/ml)。取96 孔板,空白對照孔接入100 μl培養(yǎng)液,其余各孔接入腫瘤細胞混懸液,每孔100 μl,將96 孔板置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。24 h后吸棄培養(yǎng)液,空白對照和陰性對照孔分別加入200 μl 培養(yǎng)液,測試孔分別加入100%HA、50%HA+50%培養(yǎng)液、25%HA+75%培養(yǎng)液、12.5%HA+87.5%培養(yǎng)液、6.25%HA+93.75%培養(yǎng)液,每孔200 μl;陽性對照孔分別加入5-Fu 濃度為 16、8、4、2、1 μg/ml 培養(yǎng)液,每孔200 μl,將加藥96 孔板放回培養(yǎng)箱培養(yǎng)。分別培養(yǎng)3、5 和7 d 后,吸棄上層液體,加入含0.5 mg/ml MTT 的培養(yǎng)液100 μl,培養(yǎng)4 h。避光處吸棄上層液體,每孔加入100 μl DMSO,避光反應10 min,振蕩1 min,在酶標儀波長570 nm處(630 nm 校準)測量各孔的吸光值。細胞存活率=(實驗孔吸光值—空白對照孔吸光值)/(陰性對照孔吸光值—空白對照孔吸光值)×100%。

    2.2 Transwell 檢測腫瘤細胞的遷移

    將狀態(tài)良好的腫瘤細胞胰酶消化、離心后,分別用對應空白培養(yǎng)液重懸成單個腫瘤細胞懸液,顯微鏡下計數(shù),然后分別稀釋成以下濃度:Hela(1.5×105個/ml),HCT116(5×105個/ml)。分別將腫瘤細胞混懸液和HA 混勻,配成50%HA+50%腫瘤細胞懸液、25%HA+50%腫瘤細胞懸液+25%空白培養(yǎng)液、12.5%HA+50%腫瘤細胞懸液+37.5%空白培養(yǎng)液、50%腫瘤細胞懸液+50%空白培養(yǎng)液。將腫瘤細胞和HA 混合液加入Transwell 上層小室中,每個小室200 μl,Transwell 下層腔室分別加入含10% FBS 對應培養(yǎng)液 600 μl。將Transwell 培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱,培養(yǎng)24 h。取出Transwell 小室,輕輕吸棄小室內(nèi)培養(yǎng)液,用PBS 洗1 遍,甲醇固定15 min。用棉簽輕輕擦去小室內(nèi)層細胞,PBS 洗2 遍,加入結晶紫(0.1%)染色,室溫放置20 min,PBS 洗3 遍。顯微鏡10 倍物鏡下觀察、拍照和記數(shù)。

    2.3 原位種植瘤法考察裸鼠體內(nèi)腫瘤的生長

    PBS 重懸HCT116 細胞,調濃度至107個/ml,將細胞接種于裸鼠皮下,每只動物0.2 ml,共12 只,作為供瘤體。視腫瘤生長情況將裸鼠處死,取出瘤塊,選取瘤塊實質性部分,用生理鹽水沖洗干凈,剪成約1 mm×1 mm×1 mm 瘤塊備用。

    實驗動物腹腔麻醉,取腹部正中切口,逐層開腹,找到盲腸位置。假手術組:將盲腸拉出后放回腹腔,逐層縫合傷口。其余組:輕輕劃破結腸漿膜,用生物膠將瘤塊固定在漿膜破損處。模型組和陽性對照組在瘤塊接種處涂抹生理鹽水0.07 ml,HA 組涂抹HA 0.02 ml。逐層縫合傷口,觀察記錄裸鼠狀態(tài),5-Fu 組腹腔注5-Fu 20 mg/kg,隔天給藥,持續(xù)3 周。

    瘤塊接種4 周后將裸鼠處死,打開腹腔,用游標卡尺測量瘤塊的長短徑,按公式(V=ab2/2,a:瘤體最長直徑;b:瘤體最短直徑)計算體積,剝離瘤塊,瘤塊稱重。

    2.4 原位種植瘤法考察裸鼠體內(nèi)腫瘤的轉移

    建立裸鼠結腸原位種植結腸癌CT26 模型,方法同“2.3”項。瘤塊接種4 d 后,5-Fu 組腹腔注射氟尿嘧啶注射液50 mg/kg,隔3 d 給藥一次,共4 次。

    瘤塊接種3 周后將裸鼠脫頸處死,打開腹腔,觀察腫瘤轉移情況,取肺和肝臟,4%多聚甲醛固定、切片、HE 染色,統(tǒng)計腫瘤轉移率和轉移病灶數(shù)。

    2.5 統(tǒng)計方法

    3 結果

    3.1 HA 體外對腫瘤細胞生長的影響

    在體外實驗中,腫瘤細胞Hela、HCT116 和CT26 在100% HA 中均不能生長(圖2)。Hela 細胞在培養(yǎng)3 d 和5 d 時不同含量HA 均不影響細胞的生長,7 d 時25%HA 和50%HA 細胞生長率低于陰性對照組(P<0.001)。HCT116 細胞培養(yǎng)7 d 時,50%HA 細胞生長率低于陰性對照組(P<0.01)。CT26 細胞培養(yǎng)3 d 時12.5%HA、25% HA 和50%HA細胞生長率低于陰性對照組(P<0.001);培養(yǎng)5 d 和7 d時,50%HA 細胞生長率低于陰性對照組(P<0.001)。不同濃度5-Fu,培養(yǎng)3 d、5 d 和7 d 均抑制腫瘤細胞Hela、HCT116 和CT26 的生長,呈劑量相關性。

    圖 2 MTT 法考察不同濃度HA 體外對腫瘤細胞Hela、CT26 和HCT116 生長的影響

    3.2 HA 體外對腫瘤細胞遷移的影響

    Transwell 實驗結果顯示,高濃度HA 體外抑制腫瘤細胞遷移。50%HA、25%HA 和12.5%HA 組Hela 細胞穿透數(shù)均低于陰性對照組(P<0.01),HA 含量越高,Hela 細胞穿透數(shù)越少;50%HA 和12.5%HA 組HCT116 細胞穿透數(shù)均低于陰性對照組(P<0.05),25%HA 組HCT116 細胞穿透數(shù)低于陰性對照組,無統(tǒng)計學差異(圖3)。

    圖 3 Transwell 法考察對腫瘤細胞遷移的影響(100×)

    3.3 HA 體內(nèi)對腫瘤細胞生長的影響

    裸鼠結腸原位接種HCT116 瘤塊后,HA 組與模型組成瘤率均為100%,結果無差異。模型組裸鼠的瘤體體積達(339.1±258.0)mm3,5-Fu 組裸鼠的瘤 體 體 積 為(128.5±111.9)mm3,小 于 模 型 組(P<0.01),HA 組裸鼠的瘤體體積為(293.2±190.6)mm3,與模型組比較,差異無統(tǒng)計學意義;模型組裸鼠的瘤重為(0.359±0.219)g,5-Fu 組裸鼠的瘤重為(0.149±0.105)g,小于模型組(P<0.001),HA 組裸鼠的瘤重為(0.330±0.187)g,與模型組比較,差異無統(tǒng)計學意義。使用一定劑量的HA 在裸鼠體內(nèi)不影響HCT116 的成瘤率,同時也不影響HCT116 腫瘤的生長(表1)。

    3.4 HA 體內(nèi)對腫瘤細胞轉移的影響

    裸鼠結腸原位接種CT26 瘤塊,觀察16 d 后出現(xiàn)動物死亡,第18 天處死存活裸鼠。模型組存活率為62.5%,HA 組存活率68.8%,5-Fu 組存活率100%,體內(nèi)使用一定劑量的HA 不影響裸鼠的存活率。模型組肝臟轉移率90%,平均病灶數(shù)(2.2±1.7);5-Fu 組肝臟轉移率0.0%,低于模型組(P<0.001);平均病灶數(shù)(0.0±0.0),低于模型組(P<0.001)。HA 組肝臟轉移率36.4%,低于模型組(P<0.05);平均病灶數(shù)(0.6±1.0),低于模型組(P<0.01)。模型組肺轉移率為40%,平均病灶數(shù)(0.5±0.7);5-Fu 肺 轉 移 率6.3%,低 于 模 型 組(P<0.05);平均病灶數(shù)(0.1±0.3),低于模型組(P<0.05)。HA 組肺轉移率為18.2%,平均病灶數(shù)(0.2±0.4),與模型組均無統(tǒng)計學差異,見表2、圖4和圖5。

    4 討論

    很多胚胎遷移和增殖速率與胚胎組織中高濃度的透明質酸有關,而腫瘤組織和胚胎發(fā)育很相似,幾十年前已經(jīng)提出透明質酸可能對腫瘤生長很重要[7-9]。然而,本研究的HA 為外源性高分子量HA,結果與內(nèi)源性透明質酸結果不一致。在體外實 驗 中,Hela、CT26 和HCT116 的 細 胞 無 法 在100% HA 中生長,表明HA 不能作為腫瘤細胞培養(yǎng)基。此外,細胞生長速率隨著HA 的增加而不同程度的降低,說明高濃度HA 可以抑制腫瘤生長,在低濃度時雖然沒有明顯的抑制作用,但也未促進腫瘤的增殖。體內(nèi)結果證明,外源性HA 對腫瘤細胞的生長無促進作用。

    表 1 HA 在裸鼠體內(nèi)對HCT116 腫瘤生長的影響

    表 1 HA 在裸鼠體內(nèi)對HCT116 腫瘤生長的影響

    **P<0.01、***P<0.001,與模型組比較

    組別 動物數(shù)(只) 成瘤數(shù)(只) 成瘤率(%) 瘤體積(V/mm3) 瘤重(m/g)假手術組 16 0 0 0.0 ± 0.0 0.000 ± 0.000模型組 16 16 100 339.1 ± 258.0 0.359 ± 0.219 HA組 16 16 100 293.2 ± 190.6 0.330 ± 0.187 5-Fu組 16 14 87.5 128.5 ± 111.9** 0.149 ± 0.105***

    表 2 HA 在裸鼠體內(nèi)對CT26 腫瘤轉移的影響

    表 2 HA 在裸鼠體內(nèi)對CT26 腫瘤轉移的影響

    *P<0.05、**P<0.01、***P<0.001,與模型組比較

    肝轉移 肺轉移組別 動物數(shù)(只) 成活率(%)轉移率(%) 病灶數(shù) 轉移率(%) 病灶數(shù)假手術組 15 100.0 0.0 0.0 ± 0.0 0.0 0.0 ± 0.0模型組 16 62.5 90.0 2.2 ± 1.7 40.0 0.5 ± 0.7 HA 組 16 68.8 36.4* 0.6 ± 1.0** 18.2 0.2 ± 0.4 5-Fu 16 100.0 0.0*** 0.0 ± 0.0*** 6.3* 0.1 ± 0.3*

    圖 4 HA 體內(nèi)對CT26 腫瘤細胞肺轉移的影響(40×)

    圖 5 HA 體內(nèi)對CT26 腫瘤細胞肝轉移的影響(40×)

    內(nèi)源性低分子質量透明質酸(low molecular weight hyaluronan,LMWHA)可誘導細胞運動[10-11],促進血管生成,增加炎癥免疫刺激和誘導高爾基體應激的能力[12],從而能促進腫瘤的遷移。而Aikaterini 等[13-14]研究顯示,透明質酸酶2(Hyal-2)低表達同時透明質酸合成酶(HAS1 和HAS2)表達增高,導致產(chǎn)生高分子量透明質酸(high molecular weight hyaluronan,HMWHA)并在HT1080 細胞的周圍基質中沉積蓄積,結果HT1080 細胞遷移能力顯著降低,同時外源性HMWHA 顯著抑制HT1080細胞的遷移,當加入透明質酸酶后,HT1080 細胞運動性顯著增加。外源性透明質酸會促進透明質酸合成酶高表達[15],促進內(nèi)源性HA 合成作用,使機體合成HMWHA。本研究建立裸鼠原位種植瘤轉移模型,結果HA 組結腸癌的肝轉移率在體內(nèi)低于模型組(P<0.05)。HA 在體內(nèi)能抑制腫瘤的轉移,可能與外源性HA 能促使機體合成HMWHA 有關。

    本研究的主要目的是探討HA 是否會對腹部和盆腔腫瘤患者產(chǎn)生不良影響。結果表明,外源性HA 未見對上述腫瘤的增殖有促進作用,在轉移模型中HA 表現(xiàn)出一定的抑制腫瘤遷移的作用,符合HA 在腫瘤患者中應用的要求,但其機制還需進一步研究。

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