趙 霞,張子強(qiáng),夏振遠(yuǎn),Kyu Kyu Thin,郭鶴寶,何山文,高菊生,4*,張曉霞*
(1.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)資源與農(nóng)業(yè)區(qū)劃研究所,北京 100081;2.北京城市學(xué)院生物醫(yī)藥學(xué)部,北京 100083;3.云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,云南 昆明 650021;4.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院衡陽紅壤實(shí)驗(yàn)站,湖南 祁陽 426182)
種子的生理生態(tài)學(xué)和病理學(xué)相關(guān)研究表明,植物種子內(nèi)富含微生物種群[1-2]。利用可培養(yǎng)方法,在水稻、玉米、大麥、苜蓿等25種植物中,發(fā)現(xiàn)有4個(gè)門131個(gè)屬的種子內(nèi)生細(xì)菌,其中Proteobacteria為最主要的類群,其它依次為Actinobacteria,Bacteroidetes和 Firmicutes[3]。在屬水平,Bacillu,Pseudomonas,Paenibacillus,Micrococcus,Staphylococcus,Pantoea等類群最為常見。近年來高通量測(cè)序技術(shù)應(yīng)用到種子微生物的研究中,使得種子中微生物多樣性得到進(jìn)一步的認(rèn)識(shí)。16S rRNA高通量測(cè)序發(fā)現(xiàn)種子中的主要類群與可培養(yǎng)法一致,為Proteobacteria,Actinobacteria,Bacteroidetes和Firmicutes,同時(shí)還有一些新類群如Acidobacteria,F(xiàn)usobacteria,Chlamydiae和 Gemmatimonadetes[4-7]。種子內(nèi)生菌也顯示出生物防治和植物促生的功能,如固氮、溶磷、分泌生長(zhǎng)素(IAA)和嗜鐵素以及ACC(1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸)脫氨酶活性等[8-10]。此外,種子內(nèi)生菌對(duì)其宿主植物具有抗致病菌、抗動(dòng)物攝食等作用[11],可有效提高種子萌發(fā)率、幼苗存活率、幼苗根長(zhǎng)和苗高、生物量積累等[12]。當(dāng)植物種子落入土壤后,在萌發(fā)過程中,還會(huì)通過特定機(jī)制招募特定微生物在其表面聚集,以幫助種子萌發(fā),防止退化或被捕食[13]。種子微生境目前研究較少,近年來因其作為有益微生物的儲(chǔ)庫(kù)和載體的潛力而備受關(guān)注[14]。
綠肥作為一種傳統(tǒng)的農(nóng)業(yè)技術(shù),應(yīng)用歷史悠久。在化肥大規(guī)模應(yīng)用之前,是增加土壤養(yǎng)分供應(yīng)的主要來源之一。我國(guó)是世界上種植綠肥面積最廣的國(guó)家。據(jù)不完全統(tǒng)計(jì),19世紀(jì)中期,全國(guó)綠肥種植面積有173萬hm2,隨后逐步增加。到20世紀(jì)80年代初期,種植面積穩(wěn)定在1 000萬hm2左右,但到80年代中后期,由于化肥的推廣和使用,綠肥生產(chǎn)開始出現(xiàn)滑坡,到90年代初期種植面積劇減[15-16]。雖然化肥在一定程度上提高了作物的產(chǎn)量,但由于化學(xué)合成物質(zhì)在農(nóng)田的大量使用嚴(yán)重改變了土壤原有的微生物組成和生物地球化學(xué)循環(huán)[17-18]。給農(nóng)業(yè)生產(chǎn)和環(huán)境帶來了一系列的負(fù)面作用[19-21],成為進(jìn)一步提高作物產(chǎn)量及質(zhì)量的重要障礙。而種植綠肥不僅能為土壤提供豐富的養(yǎng)分,控制植物病蟲害的發(fā)生[22-23],還可以促進(jìn)土壤微生物的活動(dòng)[24-26],具有顯著的土壤增肥功能[27]。實(shí)驗(yàn)室前期工作已證實(shí)長(zhǎng)期水稻-稻-綠肥輪作可以顯著改變水稻根際和根內(nèi)生微生物群落的組成結(jié)構(gòu)[28-29]。本研究進(jìn)一步探討了綠肥(紫云英)輪作對(duì)水稻種子內(nèi)生細(xì)菌微生物群的影響與功能。
長(zhǎng)期綠肥與水稻輪作試驗(yàn)田位于湖南省祁陽縣農(nóng)業(yè)部紅壤生態(tài)環(huán)境重點(diǎn)田間監(jiān)測(cè)試驗(yàn)站(26°45′42″N,111°52′32″E)。1982~ 2012年,進(jìn)行稻-稻-冬閑(RR-WF)和稻-稻-紫云英(RR-MV)輪作。每個(gè)處理重復(fù)3次,隨機(jī)區(qū)組排列,小區(qū)面積37.5 m2(2.5 m×15.0 m),各小區(qū)之間由60 cm水泥埂隔開。每季早稻和晚稻的使用總肥料(基肥+追肥)包括N(153.0 kg/hm2),P2O5(84.0 kg/hm2)和K2O(129.0 kg/hm2)。復(fù)合肥[N(84.0 kg/hm2),P2O5(84.0 kg/hm2) 和K2O(84.0 kg/hm2)]用作基肥,N(69.0 kg/hm2)和K2O(45.0 kg/hm2)用作追肥。移栽水稻前施用基肥,水稻移栽6~10 d后追肥。在晚稻收獲前10~15 d,播種綠肥紫云英種子(播種量為7.5 kg/hm2)。種植綠肥的小區(qū)在次年早稻移栽前15 d將鮮草全部翻入各自小區(qū)內(nèi)。每季除稻茬外,其他秸稈全部移走。冬種綠肥不再施肥。2013年10月,每塊地隨機(jī)選取3個(gè)點(diǎn)采集水稻種子樣品,風(fēng)干后,4℃冷藏保存。
根據(jù)Sun等[30]的方法對(duì)水稻種子進(jìn)行表面殺菌:兩個(gè)處理各選取1 g種子,先用無菌水沖洗一次,然后分別浸入70%酒精和新鮮NaClO溶液(2.5%可用Cl-)中各3和5 min,再浸入70%酒精30 s,最后用無菌水清洗5次。將種子輕輕在TSA平板上按壓翻滾以檢查表面殺菌效果。將表面殺菌后的樣品在裝有少量無菌石英砂的研缽中研磨至粉末,然后用無菌水稀釋成10-1、10-2和10-3的懸浮液。3個(gè)梯度各吸取100 μL分別在TSA[31](Difico),1/4 R2A[32](Difico) 和 Ashby[33]無 氮培養(yǎng)基(蔗糖20 g,K2HPO40.1 g,KH2PO40.4 g,MgSO4·7H2O 0.2 g,NaCl 0.01 g,F(xiàn)eCl30.01 g,Na2MoO4·2H2O 0.002 g,1 L水)上進(jìn)行涂布,每種平板3個(gè)重復(fù)。所有平板28℃下培養(yǎng)3 d。挑取每個(gè)處理的1/4 R2A平板上的所有菌落,并從其他平板上挑取大小和顏色不同的菌落進(jìn)行劃線純化。所有純化后的菌株通過冷凍干燥法在4℃儲(chǔ)存。
使用DNA提取試劑盒(Transgen,China)提取細(xì)菌DNA(具體步驟參照試劑盒說明)。根據(jù)Lane[34], 使 用 通 用 引 物 27F 和 1492R 進(jìn) 行 16S rRNA基因的擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物送生物公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果使用EzTaxon進(jìn)行序列比對(duì)[35];系統(tǒng)發(fā)育樹由 MEGA 6.0 軟件構(gòu)建[36]。
在Pikovskaya培養(yǎng)基上進(jìn)行菌株溶磷活性的檢測(cè)[37];在含有100 μg/mL L-色氨酸的TSB培養(yǎng)基接種細(xì)菌并培養(yǎng)48 h,參照Glickmann等[38]的方法檢測(cè)懸浮液中IAA含量;參照Machuca等[39]的方法檢測(cè)菌株是否產(chǎn)鐵載體。
本研究使用3種不同的培養(yǎng)基估測(cè)水稻種子內(nèi)生細(xì)菌的數(shù)量。平板計(jì)數(shù)結(jié)果如圖1所示:3種不同培養(yǎng)基的計(jì)數(shù)結(jié)果均表明長(zhǎng)期綠肥輪作顯著增加水稻種子內(nèi)生細(xì)菌的數(shù)量;同時(shí)綠肥輪作系統(tǒng)收獲的水稻種子內(nèi)生菌對(duì)培養(yǎng)基有不同的偏好:長(zhǎng)期綠肥輪作R-R-MV在TSA上觀察到的內(nèi)生細(xì)菌數(shù)量最高,達(dá)2.87×106CFU/g,而冬閑R-R-WF在1/4 R2A上檢測(cè)的細(xì)菌數(shù)量最高,為2.33×106CFU/g,說明R-R-MV和R-R-WF的種子內(nèi)生細(xì)菌間存在不同的代謝類型。
圖1 梯度稀釋涂布并計(jì)數(shù)的方法檢測(cè)水稻種子內(nèi)生細(xì)菌的數(shù)量
據(jù)梯度稀釋平板細(xì)菌生長(zhǎng)情況,選擇1/4 R2A平板上所有菌落,和其他兩種培養(yǎng)基上不同菌落形態(tài)不同顏色的細(xì)菌進(jìn)行分離培養(yǎng)。結(jié)果R-R-WF種子分離到42株內(nèi)生細(xì)菌,R-R-MV種子分離到66株內(nèi)生細(xì)菌,通過16S rRNA基因序列擴(kuò)增并測(cè)序,約700 bp序列上傳至Eztaxon(http://www.ezbiocloud.net/eztaxon)比對(duì)分析;序列提交GenBank并獲得登錄號(hào),圖2、3括號(hào)中的數(shù)字即為相應(yīng)菌株的GenBank登錄號(hào);使用MEGA 6.0構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2、3)。結(jié)果表明,42株R-R-WF內(nèi)生菌分別屬于9屬12種,66株R-R-MV內(nèi)生菌屬于15屬21種。
R-R-WF和R-R-MV內(nèi)生菌的優(yōu)勢(shì)門均為γ-Proteobacteria,分別占60%和50%。α-Proteobacteria(24%)是R-R-WF的次要優(yōu)勢(shì)群,其次是Actinobacteria和Firmicutes。而Firmicutes(22%)是R-R-MV的次要優(yōu)勢(shì)門,其次是Actinobacteria(15%)和α-Proteobacteria(9%)。而β- Proteobacteria(5%)僅在R-R-MV中檢測(cè)到。
圖2 R-R-WF水稻種子分離到的內(nèi)生細(xì)菌16S rRNA序列的系統(tǒng)發(fā)育樹
在屬水平上,Pseudomonas(28.57%)和Xanthomonas(26.19%)是R-R-WF中的優(yōu)勢(shì)屬,其次是Sphingomonas(16.67%)。 此外,在R-R-WF中還發(fā)現(xiàn)Bacillus,Rhizobium,Micrococcus,Methylobacterium,Pantoea和 Microbacterium。與R-R-WF相比,Pantoea(27.94%)是R-R-MV中的優(yōu)勢(shì)屬,其次是Pseudomonas(14.71%),Paenibacillus(13.24%)。Paenibacillus,Curtobacterium,Acidovorax,Rothia,Acidovorax,Kocuria 和 Staphylococcus是R-R-MV中的特有類群(表1)。
圖3 R-R-MV水稻種子分離到的內(nèi)生細(xì)菌16S rRNA序列的系統(tǒng)發(fā)育樹
表1 水稻種子內(nèi)生細(xì)菌在屬水平的相對(duì)豐度(R-R-WF:稻-稻-冬閑,R-R-MV:稻-稻-紫云英)(%)
基于內(nèi)生細(xì)菌的來源與分類地位,本研究選擇31株菌檢測(cè)植物促生特性(表2)。其中,14株( 屬 于Bacillus,Curtobacterium,Kocuria,Microbacterium,Paenibacillus,Pantoea,Pseudomonas,Rhizobium,Rothia和Sphingomonas)可以分泌生長(zhǎng)素IAA;10株(屬于Bacillus,Curtobacterium,Microbacterium,Pseudomonas,Sphingomonas和 Xanthomonas)在CAS平板上的菌落周圍產(chǎn)生橙色暈圈,表明這些菌株具有產(chǎn)鐵載體的活性;9株可以溶解有機(jī)和無機(jī)磷酸鹽(菌落周圍可以觀察到透明圈),測(cè)量菌落直徑(n)和暈圈直徑(z),計(jì)算z/n值,發(fā)現(xiàn)在無機(jī)磷酸鹽培養(yǎng)基上,菌株 RZ27、TZ26和RZ4的z/n大于2.0,表明這些菌株具有強(qiáng)溶解無機(jī)磷的能力[40]。此外,8株菌可溶解有機(jī)磷酸鹽,但不能溶解無機(jī)磷酸鹽。TZ22、TD10和AD1具有本研究中所檢測(cè)的植物促生的所有特征,但也有9株沒有檢測(cè)到任何促生作用。
表2 水稻種子細(xì)菌的溶磷酸鹽、IAA和產(chǎn)鐵載體促生能力的檢測(cè)
本試驗(yàn)前期研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)期紫云英綠肥輪作(R-R-MV)會(huì)顯著改變水稻根內(nèi)細(xì)菌的多樣性和組成[28]。本研究通過傳統(tǒng)分離培養(yǎng)方法證明長(zhǎng)期紫云英綠肥輪作對(duì)水稻種子內(nèi)生細(xì)菌的影響。結(jié)果表明內(nèi)生細(xì)菌數(shù)量顯著增加,多樣性也明顯增加,主要類群發(fā)生變化。可見長(zhǎng)期的稻-稻-綠肥輪作不僅會(huì)改變水稻根內(nèi)生細(xì)菌[28],也改變了種子內(nèi)生菌的數(shù)量與多樣性。與Zhang等[28]描述的根內(nèi)生細(xì)菌相比,Pantoea,Pseudomonas,Xanthomonas和Sphingomonas是種子內(nèi)生菌的主要類群,但在水稻根內(nèi)豐度較低。Herbaspirillum和Cedecea是根內(nèi)生細(xì)菌的優(yōu)勢(shì)屬,但種子中并沒有分離到。一些豐度較低的屬(Methylobacterium,Curtobacterium,Rothia和Kocuria)僅在種子中分離到。Mano 等[41]根據(jù)大量關(guān)于水稻根和種子內(nèi)生細(xì)菌的報(bào)道也得出類似的結(jié)論,水稻種子內(nèi)的固有細(xì)菌較少,不同植物組織其菌群結(jié)構(gòu)也不同。因此,本研究推測(cè)種子內(nèi)生細(xì)菌受根內(nèi)生菌和其他環(huán)境因素的影響。
Pseudomonas,Xanthomonas,Sphingomonas和Pantoea是本研究檢測(cè)到的種子內(nèi)生細(xì)菌優(yōu)勢(shì)屬。此外,水稻種子中也存在非優(yōu)勢(shì)屬,例如Paenibacillus,Curtobacterium,Acidovorax,Kocuria,Staphylococcus和 Rothi。Mano等[41]報(bào)道了水稻種子內(nèi)生細(xì)菌主要包含Pantoea,Herbaspirillum,Metylobacterium,Klebsiella,Acidovorax,Bacillus,Curtobacterium,Micrococcus,Paenibacillus,Sphingomonas,Xanthomonas,Ochorbacterium,Pseudomonas等。過去基于16S rRNA Illumina測(cè)序發(fā)現(xiàn)Pantoea,Acinetobacter,Xanthomonas,Bacillus,F(xiàn)lavobacterium,Stenotrophomonas,Neorhizobium和 Pseudomonas是水稻種子中的共有優(yōu)勢(shì)屬[7]。因此,本研究分離的細(xì)菌大多數(shù)是典型的種子內(nèi)生細(xì)菌。
Pantoea是水稻種子內(nèi)生細(xì)菌的主要種類之一,表明Pantoea和水稻之間有很強(qiáng)的親和力。研究報(bào)道玉米種子內(nèi)生細(xì)菌最豐富的也是Pantoea[42],Pantoea具有固氮、分泌植物激素的功能[43],本研究發(fā)現(xiàn)Pantoea具有產(chǎn)IAA、溶解無機(jī)和有機(jī)磷酸鹽的能力。
Pseudomonas也是種子內(nèi)生細(xì)菌的主要組成之一。本研究選擇兩株P(guān)seudomonas來檢測(cè)植物促生功能,發(fā)現(xiàn)AD1能夠產(chǎn)IAA、鐵載體,并可以溶解無機(jī)和有機(jī)磷酸鹽(表2)。此外,Pseudomonas也是研究細(xì)菌與植物互作的模式菌[44],如Pseudomonas fluorescens可以通過分泌抗生素和競(jìng)爭(zhēng)營(yíng)養(yǎng),使植物免受致病菌的侵害[45],并增加作物產(chǎn)量[46]。
本研究發(fā)現(xiàn)一些低豐度細(xì)菌對(duì)植物具有潛在的有益功能,如表2所示的Bacillus,Paenibacillus,Methylobacterium和Sphingomonas。這些菌株在不同的環(huán)境中被發(fā)現(xiàn)與植物有密切的關(guān)系。Methylobacterium具有很強(qiáng)的抗逆性,能夠合成植物激素并刺激種子萌發(fā)[47]。Curtobacterium是一類典型的種子共生細(xì)菌,能夠保護(hù)植物免受Erwinia的攻擊[48-49]。Bacillus可溶解無機(jī)或有機(jī)磷酸鹽,分泌IAA并產(chǎn)生抗真菌代謝物以抑制致病菌[50-51]。
本研究的主要結(jié)論如下:(1)長(zhǎng)期綠肥輪作改變了水稻種子內(nèi)生細(xì)菌的群落結(jié)構(gòu)和數(shù)量;(2)種子選擇并積累了一些特定的細(xì)菌,如Pseudomonas,Xanthomonas,Sphingomonas和 Pantoea;(3) 大 多數(shù)分離菌株具有植物促生功能,表明它們與植物有密切關(guān)系。