劉廣建 鄭惠華 蔣 益 桑 花 薛 璟 季宏更 張 蕾
(1江蘇省蘇微微生物研究有限公司,江蘇無錫214063;2江蘇安惠生物科技有限公司,江蘇南通226009)
猴頭菇是一種營養(yǎng)價(jià)值極高的食用藥用真菌,含有豐富的多糖、多肽、萜類、甾醇類等活性成分,具有抗腫瘤,降血糖,降血脂等諸多功效。現(xiàn)代研究表明猴頭菇活性蛋白具有免疫調(diào)節(jié)作用,活性肽則有抗氧化功效。猴頭菇的多肽組合物可以改善老年癡呆小鼠的學(xué)習(xí)能力。Chen Diling等采用化學(xué)分離結(jié)合藥效學(xué)評估方法,從猴頭菇中分離單帶蛋白(HEP3)。該蛋白通過調(diào)節(jié)腸道微生物群落的組成和代謝來改善免疫系統(tǒng),激活T細(xì)胞的增殖和分化。輔助試驗(yàn)還表明,HEP3可作為腫瘤負(fù)荷小鼠的抗腫瘤免疫抑制劑。近些年來隨著人們養(yǎng)生意識的提高,猴頭菇也因此成了國內(nèi)外極力追捧的明星級食藥用菌。試驗(yàn)以猴頭菇菌絲體為原料,對菌絲體蛋白的多種提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,并用聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)法測定其分子量分布,為猴頭菇菌絲體蛋白和多肽的進(jìn)一步研究和開發(fā)提供理論基礎(chǔ)。
猴頭菇菌絲體由液體發(fā)酵所得,經(jīng)測定蛋白質(zhì)含量35.2%;考馬斯亮藍(lán)G250、R250(分析純)、牛血清蛋白(分析純)、三羥甲基氨基甲烷(Tris)、N,N,N,N-四甲基乙二胺(TEMED)、木瓜蛋白酶(為國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司生產(chǎn));蛋白質(zhì)marker(8~180 kD)、SephadexG-100(為常州天地人和生物科技有限公司生產(chǎn));其余試劑均為市售分析純。
儀器設(shè)備:Alpha-1500型紫外可見分光光度計(jì)(上海譜元儀器有限公司生產(chǎn));JY98-111DN型超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)(寧波新藝超聲設(shè)備有限公司生產(chǎn))。
1.2.1 堿提酸沉法提取猴頭菇菌絲蛋白最佳工藝條件的確定
在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,堿提酸沉法以pH、料液比、溫度、時(shí)間為試驗(yàn)因素。采用4因素3水平L9(34)正交試驗(yàn),確定最佳菌絲體蛋白提取工藝條件。因素水平見表1。
表1 堿提酸沉法提取菌絲蛋白質(zhì)正交試驗(yàn)因素水平
1.2.2 酶法提取猴頭菇菌絲體蛋白最佳工藝條件的確定
在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,酶法提取以加酶量、料液比、溫度、時(shí)間為試驗(yàn)因素。采用4因素3水平L9(34)正交試驗(yàn),確定最佳提取工藝條件。因素水平見表2。
1.2.3 超聲波提取猴頭菇菌絲體蛋白最佳工藝條件的確定
采用超聲波輔助浸提的方法,在超聲功率、超聲時(shí)間和超聲溫度單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,采用Box-Benhnken方法設(shè)計(jì)三因素三水平試驗(yàn),以蛋白提取率為響應(yīng)值,進(jìn)行響應(yīng)面分析得到優(yōu)化組合條件。試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel進(jìn)行整理和繪圖,Design-Expert 8.0統(tǒng)計(jì)分析軟件進(jìn)行多元二次回歸模型方程的建立及方差分析,運(yùn)用該軟件中響應(yīng)面值優(yōu)化程序求得當(dāng)響應(yīng)面值最大時(shí)各因素的最佳組合。響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平見表3。
表2 酶法提取猴頭菇菌絲體蛋白正交試驗(yàn)因素水平
表3 超聲波提取菌絲體蛋白響應(yīng)面分析試驗(yàn)因素水平
1.3.1 牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
考馬斯亮藍(lán)比色法。精確稱取10 mg牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)品,加入100 mL容量瓶中,用蒸餾水溶解后定容,得到0.1 mg/mL的牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)液。分別取標(biāo)準(zhǔn)液0、0.1 mL、0.2 mL、0.3 mL、0.4 mL、0.5 mL、0.6 mL、0.7 mL于10 mL具塞試管中,加蒸餾水至1 mL,再分別向試管中加入配制好的考馬斯亮藍(lán)G250溶液5 mL,搖勻,避光反應(yīng)5~10 min后,在波長595 nm處測定其吸光度值,繪制牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線。
圖1牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線
1.3.2 猴頭菇菌絲體蛋白等電點(diǎn)確定
蛋白質(zhì)堿提酸沉方法,取等量的堿提離心液調(diào)pH至不同值,離心所得上清液采用考馬斯亮藍(lán)比色法測定其吸光度值,吸光度值最低點(diǎn)的pH就為等電點(diǎn)pI值。
1.3.3 猴頭菇菌絲體蛋白提取
將猴頭菇菌絲體于65℃烘干粉碎后過100目篩,備用。稱取猴頭菇菌絲體粉,在一定條件下浸提,6000 r/min離心15 min,取上清液,用0.1 moL/L的鹽酸調(diào)pH至等電點(diǎn),靜置1 h,8000 r/min離心15 min,得蛋白質(zhì)沉淀,加一定量蒸餾水溶解蛋白質(zhì),然后用0.01 moL/L的NaOH溶液中和至pH7.0,冷凍干燥,得猴頭菇菌絲體蛋白。
1.3.4 蛋白質(zhì)的純化及測定
SephadexG-100凝膠柱純化菌絲體蛋白質(zhì);參照GB5497—1985,用凱氏定氮法測定蛋白質(zhì)含量;SDS-PAGE測猴頭菇菌絲體蛋白分子量。
由圖2可知,猴頭菇菌絲體蛋白的等電點(diǎn)pI值為3.05。
圖2 等電點(diǎn)的確定
2.2.1 堿提酸沉法提取猴頭菇菌絲體蛋白最佳條件的確定
正交試驗(yàn)結(jié)果見表4。由表4可知,極差分析,RA>RD>RC>RB,可見影響菌絲體蛋白提取效果的因素依次為:A>D>C>B,即料液比>時(shí)間>溫度>pH。方差分析結(jié)果表明,溫度、pH、料液比、提取時(shí)間四因素中pH對提取率影響弱。提取蛋白質(zhì)的最佳條件為 A3B3C2D1,即料液比 1∶25,pH10.5,提取 時(shí) 間1.5 h,溫度25℃。經(jīng)驗(yàn)證試驗(yàn),該條件提取猴頭菇菌絲體蛋白,提取率為22.75%,確為最優(yōu)組合。
2.2.2 酶法提取猴頭菇菌絲體蛋白最佳條件的確定
正交試驗(yàn)結(jié)果見表5。由極差分析可知,4個(gè)因素極差大小順序?yàn)椋篟D>RA>RC>RB,即影響酶法提取工藝的最主要因素是溫度,料液比次之。方差分析結(jié)果表明,溫度、料液比對提取率影響極顯著,酶用量影響較小。最佳提取條件為A3B3C2D1,即料液比為1∶25,1%的木瓜蛋白酶酶液0.3 mL,溫度為25℃,提取時(shí)間為1.5 h。經(jīng)驗(yàn)證試驗(yàn),該提取條件提取猴頭菇菌絲體蛋白的提取率為21.04%,確為最優(yōu)組合。
表4 堿提酸沉法提取猴頭菇菌絲體蛋白正交試驗(yàn)結(jié)果
表5 酶法提取猴頭菇菌絲體蛋白正交試驗(yàn)結(jié)果
2.2.3 超聲波提取猴頭菇菌絲體蛋白最佳工藝條件的確定
在單因素試驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Benhnken設(shè)計(jì)原理,以超聲功率、超聲時(shí)間、超聲溫度3個(gè)因素為自變量,以猴頭菇菌絲體蛋白提取率為響應(yīng)值,采用響應(yīng)面法進(jìn)行三因素三水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì),共包括17組試驗(yàn)方案,試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案及結(jié)果見表6。
表6 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果
模型建立與方差分析:利用設(shè)計(jì)軟件Design-Expert對表6數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,獲得超聲時(shí)間(A)、超聲溫度(B)、超聲功率(C)的二次多項(xiàng)回歸方程為:
Y=23.09-5.46A+2.75B+1.48C+0.15AB-0.14AC+0.24BC-3.31A2-1.52B2-1.14C2,此回歸模型方程的ANOVA分析結(jié)果見表7。
表7 響應(yīng)面試驗(yàn)回歸模型方差分析
圖3 各兩因素交互作用對猴頭菇蛋白提取影響的響應(yīng)面圖及等高線圖
由表7結(jié)果可見:擬合方程具有較高的F值(F=12.55)和非常低的P值(P=0.0015),說明回歸方程達(dá)到比較顯著的水平(P=0.0015,R2=0.9417);失擬項(xiàng)的P=0.1156>0.05,試驗(yàn)數(shù)據(jù)與模型預(yù)測數(shù)據(jù)差異不顯著,表明該擬合方程與實(shí)際擬合較好。試驗(yàn)結(jié)果相關(guān)系數(shù)模型的決定系數(shù)R2為0.9417,表明猴頭菇菌絲體蛋白提取率的試驗(yàn)值與預(yù)測值由較好的一致性,調(diào)整決定系數(shù)R2Adj為0.8667,說明該模型能解釋86.67%響應(yīng)值的變化,有約總變異13.33%的不能由回歸模型來解釋。綜上所述,該二次回歸模型擬合程度好,試驗(yàn)誤差較小,該模型方程可對猴頭菇菌絲體蛋白提取條件進(jìn)行預(yù)測和分析。
由F值可以看出,3個(gè)因素對猴頭菇菌絲體蛋白質(zhì)提取率影響程度依次為超聲時(shí)間(A)>超聲溫度(B)>超聲功率(C);由響應(yīng)面模型分析得出最佳的提取參數(shù)為提取時(shí)間21.8 min、溫度34.6℃、微波功率758.6 W,提取率為27.3%。
響應(yīng)面分析:根據(jù)回歸模型,由Design-Expert 8.0.6軟件繪制響應(yīng)面分析圖和等高線圖(圖3)。從響應(yīng)面分析圖中可以看出各因素交互作用對猴頭菇菌絲體蛋白質(zhì)提取率的影響:對提取率影響越大的因素,其曲線走勢會相對越陡;在等高線圖中,各因素對猴頭菇菌絲體蛋白提取率的影響體現(xiàn)在其軸向等高線的密集程度上,軸向等高線越密集,說明該因素對猴頭菇菌絲體蛋白提取率的影響越顯著。通過比較圖3中響應(yīng)面分析圖和等高線圖可以看出:超聲時(shí)間(A)與超聲溫度(B)兩因素之間的交互作用對猴頭菇菌絲體蛋白提取率的影響較為顯著,而其他因素兩兩之間的交互作用對提取率的影響較小。
經(jīng)凱氏定氮法測得猴頭菇菌絲體中蛋白質(zhì)含量為35.2%,提取所得猴頭菇菌絲體粗蛋白中蛋白質(zhì)含量為59.53%,通過SephadexG-100凝膠過柱純化后,蛋白質(zhì)含量為81.35%(過柱純化后蛋白質(zhì)得率太低僅為10%,主要為水溶性蛋白)。
樣品蛋白質(zhì)用10%濃度的分離膠,SDS-PAGE分析蛋白亞基分子質(zhì)量,結(jié)果見圖2。主要蛋白質(zhì)分子量為:過柱純化后樣品蛋白質(zhì)57 kD和35 kD(過柱用蒸餾水洗脫,主要為水溶性蛋白,蛋白濃度在0.2 mg/mL,條帶色淺);堿液復(fù)溶后的樣品蛋白質(zhì)主要有8個(gè)條帶在90~24 kD(樣品緩沖液加20%SDS才能跑出,蛋白濃度3 mg/mL,樣品沒純化)。
圖4 猴頭菇菌絲體蛋白質(zhì)SDS-PAGE分析
猴頭菇菌絲體蛋白的等電點(diǎn)為pH 3.05。生產(chǎn)中可以在等電點(diǎn)附近沉淀蛋白質(zhì),這樣就不會因?yàn)閜H過低而造成蛋白質(zhì)變性,如本試驗(yàn)以pH4進(jìn)行猴頭菇菌絲體蛋白沉淀,菌絲體蛋白的得率與等電點(diǎn)沉淀蛋白的得率變化不大,而且猴頭菇菌絲體蛋白保持較強(qiáng)的活性。
猴頭菇菌絲體蛋白提取試驗(yàn)結(jié)果表明,堿提酸沉法提取蛋白質(zhì)最佳條件為:料液比1∶25,pH 10.5,時(shí)間1.5 h,溫度25℃,提取率為22.75%;酶法提取蛋白質(zhì)最佳條件為:料液比為1∶25,1%木瓜蛋白酶酶液0.3 mL,溫度為25℃,提取時(shí)間為1.5 h,提取率為21.04%。堿提酸沉法優(yōu)于酶法提取。在堿提酸沉法和酶法提取的基礎(chǔ)上,確定pH10.5、料液比為1∶25,超聲波提取蛋白質(zhì),運(yùn)用響應(yīng)面研究分析得出最佳提取條件:提取時(shí)間21.8 min,溫度34.6℃,微波功率758.6 W,提取率為27.3%。超聲波提取法比堿提酸沉法,提取率提高了20%以上。
用凝膠柱純化猴頭菇菌絲蛋白,雖提高了蛋白質(zhì)純度,但也損失了大量的不溶性蛋白質(zhì)(得率在10%左右),因此還要加強(qiáng)蛋白質(zhì)溶解性方面以及蛋白質(zhì)純化方法的研究。
經(jīng)SDS-PAGE分析猴頭菇菌絲體蛋白亞基分子質(zhì)量分析,猴頭菇菌絲體蛋白分子量為24~90 kD。
試驗(yàn)表明,超聲波提取方法提取猴頭菇菌絲體蛋白操作簡便,提取效果好,可用于工業(yè)化生產(chǎn)。