高菊逸,吳傳安,楊偉康,羅裕旋,劉勝楠,徐小平
(1.深圳市龍華區(qū)婦幼保健院,廣東 深圳 518110;2.香港大學(xué)深圳醫(yī)院,廣東 深圳 518053)
大腸埃希菌O157:H7是大腸埃希菌中可引起人類發(fā)病最多的血清型之一,可從牛肉或牛奶等食物中被分離到,主要引起人的出血性結(jié)腸炎和溶血性尿毒綜合征,病死率較高[1-4]。因此,該菌在食品安全等方面具有重要的研究價(jià)值。本研究利用微流控芯片技術(shù)建立了一種快速檢測大腸埃希菌O157:H7的技術(shù)平臺(tái),具有耗材成本低、操作簡便、檢測時(shí)間短、靈敏度高等優(yōu)點(diǎn)。
取25μmOCA光學(xué)透明膠,利用計(jì)算機(jī)輔助軟件(Pro/Engineer)設(shè)計(jì)的長160 μm、寬40 μm的流體通道,采用激光雕刻技術(shù)切出設(shè)計(jì)圖形(圖1)。將合適尺寸的環(huán)烯烴聚合物(cycloolefin polymer,COP)與OCA光學(xué)透明膠一同放入O2等離子進(jìn)行清洗(100 mW,1% O2,60 s)后取出,用OCA光學(xué)透明膠將上、下2層COP進(jìn)行不可逆鍵合,放入80 ℃烤箱烘烤10 min。芯片制作完成后,將可食用性染料通入芯片,用于驗(yàn)證芯片的實(shí)用性(圖2)。
圖1 微流控芯片設(shè)計(jì)圖
圖2 微流控芯片實(shí)物圖
通過注射泵控制反應(yīng)通道內(nèi)反應(yīng)液的流動(dòng),采用巰基-馬來酰亞胺基團(tuán)硅烷化偶聯(lián)法,對(duì)反應(yīng)檢測區(qū)進(jìn)行表面修飾和抗體固定[5-7]。具體步驟為:用注射泵往通道中通入5 μL 3-巰基丙基三甲氧基硅烷(3-methyl propyl trimethoxy silane,MPTS)(5%,溶于無水乙醇溶液),5 μL N-(4-馬來酰亞胺丁?;酰╃牾啺罚?-maleimidobutyric acid N-hydroxysuccinimide ester,GMBS)
(2 mg/mL,溶于二甲亞砜溶液),分別在室溫下反應(yīng)1 h和30 min,反應(yīng)后用無水乙醇和磷酸鹽緩沖液(phosphate-buffered saline,PBS)清洗。清洗后,通入5 μL鏈霉親和素溶液(1 mg/mL,溶于PBS),室溫下反應(yīng)1 h。PBS清洗后,通入5 μL生物素標(biāo)記羊抗O157:H7大腸埃希菌菌體抗原抗體(單抗,美國KPL公司)(10 μg/mL,溶于含1%牛血清白蛋白的PBS)(圖3),室溫下反應(yīng)30 min后沖洗備用。
圖3 芯片內(nèi)表面修飾
1.3.1 菌株來源 大腸埃希菌O157:H7菌株(深圳市疾病預(yù)防控制中心),大腸埃希菌(ATCC 25922)、傷寒沙門菌(ATCC 14028)(香港大學(xué)深圳醫(yī)院微生物科),大腸埃希菌O157:H7顯色培養(yǎng)基(法國科瑪嘉公司),EC肉湯培養(yǎng)基(廣東環(huán)凱公司)。
1.3.2 樣本制備 取接種了大腸埃希菌O157:H7并過夜培養(yǎng)后的營養(yǎng)肉湯菌懸液0.2 mL,加入無菌0.9%氯化鈉溶液,調(diào)成濃度為1.6×107CFU/mL的初始菌液(經(jīng)平板菌落計(jì)數(shù)確定濃度),10倍稀釋至1.6×101CFU/mL,每個(gè)濃度各取1 mL菌液于沸水中煮15 min滅活,離心備用。大腸埃希菌(ATCC 25922)和傷寒沙門菌(ATCC 14028)也分別按上述方法進(jìn)行培養(yǎng)并計(jì)數(shù),制成1×107CFU/mL的菌懸液,離心備用。陰性對(duì)照為高壓滅菌的PBS緩沖液,陽性對(duì)照(自制)為經(jīng)熒光染料V3染色的大腸埃希菌O157:H7菌液(濃度為1×106CFU/mL)。
采用注射泵分別以0.5、1.0、3.0、5.0 μL/min的速度往芯片內(nèi)通入陽性對(duì)照液,每隔5 min記錄1次熒光信號(hào)值,直至60 min。當(dāng)進(jìn)樣速度為0.5 μL/min時(shí),芯片反應(yīng)區(qū)內(nèi)的熒光信號(hào)強(qiáng)度可達(dá)到最高,到達(dá)最高值需要1 h;當(dāng)進(jìn)樣速度為1.0 μL/min時(shí),芯片反應(yīng)區(qū)內(nèi)的最高熒光信號(hào)強(qiáng)度比0.5 μL/min時(shí)略低,達(dá)到最高值需要30 min;隨著進(jìn)樣速度的加快,反應(yīng)區(qū)內(nèi)的熒光信號(hào)強(qiáng)度達(dá)到最高值的時(shí)間也逐漸縮短,但熒光信號(hào)最高值也逐漸下降。因此,后續(xù)試驗(yàn)選擇1.0 μL/min和30 min為最佳進(jìn)樣速度和反應(yīng)時(shí)間。見圖4。
圖4 反應(yīng)條件優(yōu)化結(jié)果
采用注射泵將待測樣本及陰、陽性對(duì)照液各30 μL以最佳進(jìn)樣速度從通道通入芯片內(nèi)。反應(yīng)30 min后,以PBS沖洗,再以最佳進(jìn)樣速度從通道通入5 μL異硫氰酸熒光素標(biāo)記羊抗大腸埃希菌O157:H7菌體抗原單克隆抗體(50 μg/mL,溶于含1%牛血清白蛋白的PBS)。反應(yīng)30 min并沖洗后,將芯片置于倒置熒光顯微鏡下觀察檢測區(qū)域內(nèi)的熒光,并用電荷耦合器件(charge coupled device,CCD)拍照記錄(20倍,曝光時(shí)間1.25 s),最后用Image-Pro Plus 5.0軟件分析各檢測區(qū)域的熒光信號(hào)。熒光信號(hào)強(qiáng)度高于陰性對(duì)照熒光值+3s者為陽性,反之為陰性[8],其中陰性對(duì)照熒光值為465~495。
分別取1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102CFU/mL的大腸埃希菌O157:H7菌液,并以0.9%氯化鈉溶液做陰性對(duì)照,以最佳進(jìn)樣速度通入芯片內(nèi)進(jìn)行檢測,采用SPSS 13.0軟件對(duì)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,通過獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)結(jié)果確定新型微流控芯片的最低檢測限,即靈敏度。
分別取1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102CFU/mL的大腸埃希菌(ATCC 25922)及傷寒沙門菌(ATCC 14028)菌液進(jìn)行檢測,觀察檢測結(jié)果,確定特異性。
本研究采用激光雕刻機(jī)為加工儀器、以O(shè)CA光學(xué)透明膠為主要材料制作的微流控芯片,與采用光刻機(jī)制作的微流控芯片相比,具有制作過程簡單、制作速度快、成本低、環(huán)保、節(jié)能等優(yōu)點(diǎn)。芯片的制作只需1 min即可完成,而且采用的儀器價(jià)格低廉、便于攜帶,對(duì)試驗(yàn)環(huán)境、人員要求低,適合院外或床旁檢測。臨床上傳統(tǒng)的細(xì)菌檢測一般需要48~72 h,而這種新型的技術(shù)只需30 min~1 h即可完成檢測,樣本和試劑用量少、不需大型設(shè)備、費(fèi)用低廉。
分別檢測大腸埃希菌O157:H7菌液和對(duì)照液,每個(gè)濃度平行測定3次。微流控芯片檢測區(qū)域內(nèi)的熒光信號(hào)強(qiáng)度隨著大腸埃希菌O157:H7菌液濃度的遞增而逐漸增強(qiáng),形成1個(gè)S形曲線,而陰性對(duì)照組熒光信號(hào)強(qiáng)度保持在極低的水平。以細(xì)菌濃度對(duì)數(shù)值(CFU/mL)為橫坐標(biāo),以熒光信號(hào)對(duì)數(shù)值為縱坐標(biāo),得到濃度反應(yīng)曲線。根據(jù)最低檢測限為熒光信號(hào)強(qiáng)度高于陰性對(duì)照熒光值+3s者的樣本濃度[9],確定本方法對(duì)大腸埃希菌O157:H7的檢測限為1×103CFU/mL。見圖5。
取濃度為1×107CFU/mL 的大腸埃希菌O157:H7、大腸埃希菌(ATCC 25922)和傷寒沙門菌(ATCC 14028)菌液各30 μL,每個(gè)樣本平行測定3次。在通入相同濃度的菌液后,大腸埃希菌O157:H7的熒光信號(hào)強(qiáng)度比通入大腸埃希菌(ATCC 25922)及傷寒沙門菌(ATCC 14028)的熒光信號(hào)強(qiáng)度高出3個(gè)數(shù)量級(jí),熒光信號(hào)對(duì)數(shù)值差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=5.324,P<0.01),表明此方法對(duì)大腸埃希菌O157:H7的檢測具有很高的特異性。見圖5。
圖5 微流控芯片檢測大腸埃希菌O157:H7的靈敏度和特異性
取濃度為1×106CFU/mL的大腸埃希菌O157:H7菌液,分為10份,按上述方法進(jìn)行檢測。結(jié)果顯示,同批檢測的精密度(以相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差表示)為5.2%,表明此方法具有較好的可重復(fù)性。
取100份正常人臨床糞便樣本,挑取少量樣本制成糞便懸液樣本,加入已知濃度的大腸埃希菌O157:H7,配置成含不同濃度大腸埃希菌O157:H7(1×103~1×106CFU/mL)的陽性樣本50份,及不含大腸埃希菌O157:H7的陰性樣本50份。700×g離心15 s后用紗布過濾,每份樣本都同時(shí)以微流控芯片法和培養(yǎng)法進(jìn)行檢測,最后計(jì)算出微流控芯片法的敏感性、特異性及2種方法的符合率。培養(yǎng)法參照《全國腸出血性大腸埃希菌O157:H7感染性腹瀉監(jiān)測方案》[10]進(jìn)行檢測和鑒定。結(jié)果顯示,微流控芯片法檢測糞便樣本中大腸埃希菌O157:H7的敏感性為90%,特異性為100%,二者符合率達(dá)95%。見表1。
表1 2種方法檢測結(jié)果比較 份
微流控芯片技術(shù)是目前生物化學(xué)、藥物、化學(xué)合成及臨床診斷等領(lǐng)域的重要研究內(nèi)容。但隨著研究的不斷深入,微流控芯片技術(shù)的發(fā)展也逐漸暴露出一些問題,如系統(tǒng)操作復(fù)雜、相關(guān)研究力量薄弱、對(duì)技術(shù)人員要求高、制作工藝局限性大等。為了實(shí)現(xiàn)技術(shù)上的突破,本研究團(tuán)隊(duì)前期研究通過雙面黏性薄膜微流控芯片實(shí)現(xiàn)了對(duì)循環(huán)腫瘤細(xì)胞的捕獲,對(duì)乳腺腫瘤細(xì)胞的捕獲率為(92±3)%,證明這種材料制作的微流控芯片在實(shí)際應(yīng)用中是可行的,可大大降低人力和物力成本。本研究采用OCA光學(xué)透明膠和COP研制的新型塑料微流控芯片,進(jìn)一步提高了材料的選用標(biāo)準(zhǔn),可在管道中增加結(jié)構(gòu),提高芯片的檢測范圍,再結(jié)合表面修飾技術(shù)和免疫熒光技術(shù),大大降低了技術(shù)成本,其中表面修飾固定抗體環(huán)節(jié)還利用等離子清洗等工序,使得檢測系統(tǒng)的靈敏度有了更好的保障。
本研究建立的COP微流控芯片系統(tǒng)只需30 min~1 h即可完成檢測,不需大型設(shè)備,樣本和試劑用量少,且低碳、環(huán)保,對(duì)大腸埃希菌O157:H7的檢測限為1×103CFU/mL。經(jīng)模擬實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,此法檢測敏感性為90%,特異性為100%,與李永新等[11]采用微流控芯片-激光誘導(dǎo)熒光快速檢測大腸埃希菌O157:H7的檢測限相近,但本研究的芯片制作過程簡單、速度快、成本低,更適合用于院外及床旁檢測。此外,該微流控芯片不僅可用于檢測同一種病原菌,還可以采用多通道同時(shí)檢測多種病原菌,可作為疾病早期對(duì)病原菌的快速篩查方法,對(duì)臨床快速獲得病原菌信息,制定個(gè)性化治療方案具有重要意義。