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    脊髓活性氧激活自噬參與調(diào)節(jié)2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛*

    2020-02-10 08:20:10陳佳麗張茂表陸嘉輝賈改麗
    關(guān)鍵詞:神經(jīng)病脊髓理性

    陳佳麗 張茂表 陸嘉輝 賈改麗 李 軍 曹 紅

    (溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院麻醉科;溫州醫(yī)科大學(xué)疼痛醫(yī)學(xué)研究所,溫州 325027)

    糖尿病是一種常見的慢性疾病,全球有超過4.25億成人患病,約90%的糖尿病病人是2型糖尿病[1],而糖尿病神經(jīng)病理性疼痛(diabetic neuropathic pain, DNP)是糖尿病最常見的慢性并發(fā)癥之一,大約1/3以上的糖尿病人會(huì)并發(fā)DNP,嚴(yán)重影響病人的正常生活,且現(xiàn)有藥物治療效果不佳[2]。臨床上主要表現(xiàn)為自發(fā)痛、感覺異常、痛覺過敏以及異常性疼痛[3],然而其病理生理機(jī)制尚未闡明。近年研究表明,長(zhǎng)期高血糖導(dǎo)致的神經(jīng)受損異常放電、交感神經(jīng)激活和氧化應(yīng)激性代謝紊亂是DNP的主要發(fā)病機(jī)制[4]?;钚匝?reactive oxygen species,ROS)是一系列具有高度活性的氧自由基的總稱,研究發(fā)現(xiàn),包括神經(jīng)病理性疼痛和炎性疼痛在內(nèi)的持續(xù)性疼痛與ROS的過度表達(dá)有關(guān)[5]。自噬是一種溶酶體依賴性的自我消化過程,回收利用損傷或功能不足的蛋白質(zhì)或細(xì)胞器,比如受損的線粒體[6]。在神經(jīng)病理性疼痛模型中,脊髓神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞中自噬活動(dòng)都有明顯改變,自噬在慢性疼痛中起到重要作用[7]。而研究表明ROS作為信號(hào)分子參與自噬的調(diào)節(jié)[8],但ROS與自噬在2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛中的作用尚未見報(bào)道,本實(shí)驗(yàn)我們擬觀察ROS對(duì)脊髓自噬的影響,探討脊髓ROS介導(dǎo)自噬與大鼠2型DNP的關(guān)系。本研究將首次闡明DNP中兩種重要致病因素ROS與自噬之間的關(guān)系,為臨床上治療DNP提供可行的新思路。

    方 法

    1.主要試劑及儀器

    鏈脲佐菌素 (streptozocin, STZ),N-叔丁基-α-苯基硝酮(N-tert-Butyl-α-phenylnitrone, PBN)和二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide, DMSO)均購(gòu)自Sigma;ROS檢測(cè)盒購(gòu)自南京建成生物公司;Beclin 1抗體、LC3和p62抗體均購(gòu)自Abcam;β-actin抗體購(gòu)自北京中杉金橋公司;2390型Electronic von Frey觸覺測(cè)痛儀及II Tc336型甩尾足底測(cè)試儀購(gòu)自IITC;電泳轉(zhuǎn)膜儀購(gòu)自Bio-Rad;熒光顯微鏡購(gòu)自Leica。

    2.動(dòng)物模型制備及分組

    清潔級(jí)雄性SD大鼠,120~150 g,由溫州醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。大鼠飼養(yǎng)于12 h/12 h晝夜交替,溫度23℃~25℃,自由攝食攝水的環(huán)境中。適應(yīng)環(huán)境3 d后,將其隨機(jī)分為兩組:正常對(duì)照組(C組,n= 10)和高脂高糖喂養(yǎng)組(DA組,n= 80),正常對(duì)照組始終給予正常飼料喂養(yǎng),高脂高糖組喂養(yǎng)高脂高糖飼料(67%普通飼料+ 10%豬油+ 20%蔗糖+ 2%膽固醇+ 1%膽酸鈉)喂養(yǎng)8周誘導(dǎo)胰島素抵抗,于第0周、第8周分別測(cè)體重、血糖,并在第8周時(shí)取大鼠尾靜脈血用ELISA法測(cè)血清胰島素水平,計(jì)算胰島素敏感性(ISI, 1÷空腹血糖×血清胰島素)。測(cè)量第8周時(shí)大鼠的機(jī)械縮足反應(yīng)閾值(mechanical withdrawal threshold,MWT)和熱縮足潛伏期(thermal withdrawal latency,TWL),設(shè)為基礎(chǔ)值。高脂高糖喂養(yǎng)8周后,大鼠誘導(dǎo)出胰島素抵抗,禁食不禁飲12 h,腹腔單次注射STZ (35 mg/kg)。3 d后測(cè)量大鼠尾靜脈血糖,血糖穩(wěn)定且≥16.7 mmol/L為2型糖尿病制備成功,14 d后測(cè)量大鼠痛閾值,MWT和TWL均下降至基礎(chǔ)值的85%以下為2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛組,而MWT和TWL均高于85%基礎(chǔ)值的歸為2型糖尿病不痛組(PL組)。采用隨機(jī)數(shù)字表法,將2型DNP大鼠分為3組:DNP組,DNP + PBN組(DNP +ROS清除劑組),SC組(溶劑對(duì)照組),每組10只。PBN的給藥方式為腹腔注射,100 mg/kg,溶解于DMSO,在STZ注射14 d,模型制備成功后,每天1次,連續(xù)給藥14 d,DNP組不做任何處理,SC組給予同體積的DMSO。

    3.方法

    (1)ELISA—胰島素和胰島素敏感指數(shù)測(cè)量:在喂養(yǎng)8周后,禁食不禁飲12 h后,取正常對(duì)照組和高脂高糖組大鼠尾靜脈血,用ELISA測(cè)試盒檢測(cè)大鼠胰島素濃度,并通過計(jì)算公式(1÷空腹血糖×血清胰島素)計(jì)算得出胰島素敏感指數(shù),此計(jì)算所得數(shù)值為非正態(tài)分布,故采用其自然對(duì)數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    (2)行為學(xué)測(cè)定:喂養(yǎng)8周后測(cè)量大鼠的機(jī)械縮足反應(yīng)閾值和熱縮足反應(yīng),設(shè)為其基礎(chǔ)值,在STZ注射14 d后和給藥3、7、14 d后分別測(cè)量大鼠的機(jī)械縮足反應(yīng)閾值和熱縮足反應(yīng)。

    機(jī)械縮足反應(yīng)閾值的測(cè)定:將大鼠置于金屬絲網(wǎng)底籠(22 cm×22 cm×22 cm)中并適應(yīng)30 min,玻璃箱被置于高于實(shí)驗(yàn)臺(tái)面50 cm。用IITC 2390型Electronic von Frey觸覺測(cè)痛儀垂直刺激后爪的足底表面,單次刺激時(shí)間≤1 s,刺激間隔10 s。記錄大鼠抬起其后爪的刺激強(qiáng)度,測(cè)量5次,每次間隔5 min,并將平均值用作MWT。

    熱縮足潛伏期的測(cè)定:將大鼠置于透明的方形有機(jī)玻璃盒(3 mm厚,20 cm×15 cm×30 cm)中并適應(yīng)30 min。將后爪的中心暴露于由IITC 336型足底/甩尾測(cè)試儀設(shè)定的熱刺激。動(dòng)物的反應(yīng)時(shí)間從輻射熱測(cè)量開始直到大鼠縮足或舔足并記錄為TWL,雙足各測(cè)定5次,每次間隔5 min,并將平均值用作TWL。

    (3)標(biāo)本取材和處理:給藥后第3 d、7 d、14 d取各組大鼠L4-L6脊髓腰膨大,并放入超低溫冰箱中備用于Western blot實(shí)驗(yàn)。另取5只大鼠麻醉后經(jīng)心臟灌注先生理鹽水后4%多聚甲醛,取L4-L6脊髓腰膨大,固定脫水后用OCT包埋,切片,用作免疫熒光實(shí)驗(yàn)。

    (4)Western blot:將組織標(biāo)本按重量體積比1:10加入裂解液,充分研磨,超聲離心后取上清液,后用BCA法測(cè)定蛋白濃度。按照30 μg、10 μl每孔上樣,經(jīng)12% SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,轉(zhuǎn)移到0.45 μm PVDF膜上,10%脫脂牛奶常溫?fù)u床2 h,以封閉非特異性蛋白位點(diǎn),再分別加入Beclin 1抗 體 (1:2 000)、LC3抗體 (1:1 000)、p62抗體(1:20 000)和β-actin抗體(1:3 000)中,4℃孵育過夜,次日取出條帶用TBST洗膜3次,每次10 min,加入堿性磷酸酶標(biāo)記的IgG抗體,室溫下孵育2 h后用TBST洗膜3次,每次10 min,ECL曝光。條帶采用Quantity One進(jìn)行分析,以目的蛋白/β-actin的灰度值作為目的蛋白表達(dá)的相對(duì)強(qiáng)度。

    (5)免疫熒光染色使用冰凍切片機(jī)將已灌注包埋好的組織切成6 μm厚的切片,室溫下復(fù)溫30 min,PBS洗片3次,每次10 min,隨后在室溫下用含0.2%Triton X-100的PBS溶液滲透30 min,用免疫熒光封閉液(碧云天)37℃下封閉15 min,再分別加入Beclin 1抗體(1:200)、NeuN抗體(1:200)、IBA抗體(1:200)、GFAP抗體(1:200),4℃過夜,次日用PBS洗片(如前),加入熒光標(biāo)記二抗,37℃孵育1 h后PBS洗片(同前),DAPI染核,封片,熒光顯微鏡觀看組織形態(tài)。

    (6)ROS含量檢測(cè):根據(jù)ROS檢測(cè)試劑盒說明操作,測(cè)量脊髓腰膨大中的ROS含量。熒光探針2,7-二氯熒光素二乙酸酯(DCFH-DA)用于檢測(cè)ROS,其自身非熒光,在ROS的存在下被氧化成發(fā)熒光的DCF。取100 mg脊髓腰膨大組織,用機(jī)械法制備成單細(xì)胞懸液,用PBS洗滌2次,加入10 μM DCFH-DA 37℃孵育30 min,用PBS洗滌后,使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)ROS含量,通過CytExpert分析軟件統(tǒng)計(jì)處理。

    4.統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行分析,正態(tài)分布的計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(D)表示,組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間兩兩比較采用最小顯著性差異法(LSD法),P< 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1.各組大鼠體重、血糖、胰島素敏感指數(shù)的變化情況

    與正常對(duì)照組(C組)比較,高脂高糖組(DA組)大鼠的體重在第8周時(shí)明顯升高(P< 0.05),注射STZ 14 d后體重下降明顯(P< 0.05),而空腹血糖在第8周時(shí)無(wú)明顯變化,注射STZ 3 d后血糖明顯升高(P< 0.05,見表1)。第8周時(shí),高脂高糖組(DA組)大鼠的胰島素水平較正常對(duì)照組(C組)明顯升高(P< 0.05),胰島素敏感指數(shù)下降(P< 0.05),產(chǎn)生胰島素抵抗(見表2)。

    2.各組大鼠MWT和TWL的變化

    與C組比較,PL組大鼠MWT和TWL均無(wú)明顯改變,兩組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;而DNP組和SC組與C組比較,MWT明顯降低(P< 0.05),TWL縮短(P< 0.05);當(dāng)腹腔內(nèi)注射ROS清除劑PBN后,與DNP組比較,DNP + PBN組在給藥后第3 d、7 d、14 d MWT升高(P< 0.05),TWL明顯延長(zhǎng)(P< 0.05)。DNP組和SC組兩組之間MWT和TWL差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(見圖1)。在注射STZ 17 d、21 d、28 d后DNP組中ROS含量明顯升高(P< 0.05),說明2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛大鼠的ROS相關(guān)氧化應(yīng)激活性增強(qiáng) (見圖2)。

    表1 C組和DA組體重、血糖的比較 (n = 10,D)Table 1 Comparison of weight and blood glucose between group C and group DA (n = 10,D)

    表1 C組和DA組體重、血糖的比較 (n = 10,D)Table 1 Comparison of weight and blood glucose between group C and group DA (n = 10,D)

    *P < 0.05,與C組比較,compared with group C.

    體重Weight (g) 血糖Blood glucose (mmol/L)0 week 8 weeks 14 d after STZ 0 week 8 weeks 3 d after STZ C 138±7 365±10 434±18 3.5±0.4 3.6±0.5 4.4±0.7 DA 134±11 427±23* 320±26* 3.7±0.9 4.0±0.7 29.3±3.8*組別Group

    表2 C組和DA組胰島素水平、胰島素敏感指數(shù)的比較 (n = 10,D)Table 2 Comparison of insulin levels and insulin sensitivity index (ISI) between group C and group DA (n = 10,D)

    表2 C組和DA組胰島素水平、胰島素敏感指數(shù)的比較 (n = 10,D)Table 2 Comparison of insulin levels and insulin sensitivity index (ISI) between group C and group DA (n = 10,D)

    *P < 0.05,與C組比較,compared with group C.

    胰島素水平Insulin levels (mU/L) 胰島素敏感指數(shù)ISI 0 week 8 weeks 0 week 8 weeks C 16.5±1.4 16.9±2.3 -4.13±0.29 -4.38±0.21 DA 16.8±0.8 46.1±5.0* -4.19±0.18 -7.21±0.22*組別Group

    圖1 各組大鼠MWT和TWL的變化 (n = 10,D)Fig.1 Changes of MWT and TWL in each group of rats (n = 10,D)

    3.DNP中發(fā)生的自噬可被PBN抑制

    DNP大鼠給予PBN后第3 d、7 d、14 d,Western blot檢測(cè)脊髓腰膨大中的蛋白表達(dá)量,與C組比較,PL組的脊髓中Beclin 1和p62表達(dá)無(wú)明顯改變,而LC3-II表達(dá)上調(diào)(P< 0.05),說明自噬體合成增加;與PL組比較,DNP組和SC組的脊髓中LC3-II和Beclin 1表達(dá)均明顯上調(diào)(P< 0.05),而p62表達(dá)量明顯下降(P< 0.05),說明DNP組大鼠脊髓自噬功能激活;與DNP組比較,使用了ROS清除劑PBN后,脊髓中的LC3-II和Beclin 1表達(dá)均明顯下降(P< 0.05),而p62表達(dá)量升高(P< 0.05);DNP組和SC組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(見圖3)。免疫熒光染色顯示在脊髓背角中自噬的標(biāo)記蛋白Beclin 1主要與小膠質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)記蛋白(IBA)和星形膠質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)記蛋白(GFAP)共定位,表明自噬可能主要發(fā)生在脊髓背角的小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞中(見圖4)。

    圖2 流式細(xì)胞儀檢測(cè)大鼠脊髓中ROS的含量 (n = 4,D)Fig.2 The production of ROS in spinal cord detected by flow cytometry (n = 4,D)

    討 論

    活性氧(ROS)作為一部分正常細(xì)胞代謝所產(chǎn)生的具有活性的含氧化合物,主要包括超氧陰離子、羥自由基、過氧化氫等。中樞神經(jīng)系統(tǒng)中ROS的主要來(lái)源是線粒體內(nèi)膜中的電子傳遞鏈,在生理狀態(tài)下的低濃度ROS對(duì)于機(jī)體防御功能是必要的,但過量的ROS會(huì)導(dǎo)致脂質(zhì)過氧化、蛋白質(zhì)氧化、核酸氧化[9]。既往研究表明,ROS參與多種疾病的病理生理過程,包括哮喘、動(dòng)脈粥樣硬化、阿爾茲海默病等,近期研究顯示ROS在各種疼痛疾病模型中起著關(guān)鍵性作用,包括炎性疼痛和神經(jīng)病理性疼痛。使用ROS清除劑如PBN[10]、維生素E[11]、Tempol[12]等,可以有效緩解神經(jīng)病理性疼痛模型大鼠的疼痛行為。本研究結(jié)果表明,與正常大鼠或糖尿病無(wú)痛大鼠比較,在造模成功后第3 d、7 d、14 d 糖尿病神經(jīng)病理性疼痛大鼠脊髓中ROS含量明顯增加,使用ROS清除劑PBN后,糖尿病神經(jīng)病理性疼痛大鼠的疼痛行為顯著緩解,提示脊髓中ROS含量增加參與了2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛發(fā)生維持的機(jī)制。

    自噬是真核細(xì)胞通過溶酶體系統(tǒng)降解自身成分的一種高度保守的分解代謝途徑,在多種應(yīng)激狀態(tài)下,對(duì)于清除氧化或受損的細(xì)胞器或蛋白質(zhì)以及維持新陳代謝和分子合成具有非常重要的作用[13]。文獻(xiàn)報(bào)道自噬激動(dòng)劑雷帕霉素可以產(chǎn)生長(zhǎng)時(shí)程的鎮(zhèn)痛和抗炎效果,且激活自噬可以促進(jìn)神經(jīng)再生和髓鞘形成,防止慢性疼痛的形成,而自噬阻滯劑3-MA會(huì)使神經(jīng)病理性疼痛得到明顯的加重和延長(zhǎng)[7]。研究證明,活性氧的產(chǎn)生、低氧刺激、病毒感染等可刺激自噬的發(fā)生,而ROS可以通過Atg4、過氧化物酶、線粒體電子傳遞鏈(mETC)等不同機(jī)制來(lái)誘發(fā)自噬[8,14,15]。

    LC3(微管相關(guān)蛋白-3)是經(jīng)典的自噬指標(biāo),以LC3 I和LC3 II兩種形式存在,其中LC3 I是非活化形式,主要存在于胞質(zhì)中;LC3 II一直定位于自噬體膜上直至被溶酶體酶降解,因此是目前反映細(xì)胞內(nèi)自噬水平的特異性標(biāo)記蛋白[16]。Beclin 1是自噬相關(guān)蛋白之一,在自噬泡起始合成步驟中起關(guān)鍵作用,并且是BECN1/VPS34/VPS15復(fù)合物(也稱為PI3KC III)的組分[17]。由于自噬是一個(gè)動(dòng)態(tài)變化的過程,因此自噬小體的增加并不能說明自噬的水平,還需要檢測(cè)自噬降解水平的標(biāo)記物p62。根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,自噬降解水平增加,p62減少[18]。觀察各組大鼠自噬標(biāo)記物的表達(dá)量變化,本實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn)DNP組大鼠Beclin 1、LC3 II/LC3 I蛋白含量增加,p62表達(dá)量減少,說明自噬功能增強(qiáng),而使用ROS清除劑后,自噬功能減弱,行為學(xué)分析上DNP組在使用PBN后MWT明顯升高,TWL延長(zhǎng)。這說明過多的ROS可以通過激活自噬來(lái)清除氧化的蛋白和損傷的細(xì)胞器從而利于細(xì)胞存活。由此我們可以得出一個(gè)結(jié)論,即在2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛中,ROS過多是導(dǎo)致DNP發(fā)生的原因,而過多的ROS會(huì)激活自噬,自噬是一種保護(hù)機(jī)制。本文首次闡明了2型DNP中ROS與自噬之間的關(guān)系,然而自噬在本模型中具體的調(diào)控機(jī)制尚未闡明,有待進(jìn)一步研究。

    圖3 Western blot法檢測(cè)大鼠脊髓中LC3-I, LC3-II, Beclin 1和p62的表達(dá) (n = 4,D)Fig.3 The expression of LC3-I, LC3-II, Beclin 1 and p62 in spinal cord by Western blot (n = 4D)

    綜上所述,在2型糖尿病神經(jīng)病理性疼痛中脊髓ROS增多后激活自噬,這有助于發(fā)現(xiàn)新的治療靶點(diǎn)。

    圖4 免疫熒光染色顯示Beclin 1主要定位于脊髓背角小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞上 Scale bar = 50 μmFig.4 Immunofluorescence staining showed that the major Beclin 1 (red) co-localizes with microglia (IBA, green) and astrocyte(GFAP, green).Scale bar = 50 μm

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