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    丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶修飾對(duì)大腸桿菌L-色氨酸合成的影響

    2020-01-14 06:59:08孟帥帥黃欽耿吳松剛劉峰
    生物技術(shù)通報(bào) 2020年1期
    關(guān)鍵詞:工程菌丙氨酸色氨酸

    孟帥帥 黃欽耿 吳松剛 劉峰

    (福建師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 工業(yè)微生物教育部工程研究中心,福州 350117)

    L-色氨酸(L-Trp)作為人和動(dòng)物體所必需的3種芳香族氨基酸之一,廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、飼料和化工領(lǐng)域[1-2]。L-Trp 的生產(chǎn)方法主要包括化學(xué)合成法、轉(zhuǎn)化法及微生物發(fā)酵法。由于化學(xué)合成法和轉(zhuǎn)化法存在工藝復(fù)雜、副產(chǎn)物多、得率較低及成本較為昂貴等缺點(diǎn),如今通常采用微生物直接發(fā)酵法來(lái)實(shí)現(xiàn)L-Trp 的生產(chǎn)。大腸桿菌作為氨基酸發(fā)酵的重要平臺(tái)微生物,在氨基酸發(fā)酵工業(yè)中有著極其重要的地位。大腸桿菌細(xì)胞可直接利用葡萄糖合成L-色氨酸,從葡萄糖出發(fā),經(jīng)過碳中心代謝過程,包括各種磷酸化系統(tǒng)(Phosphotransferase system,PTS)、糖酵解過程(Embden meyerhof parnas,EMP)以及磷酸戊糖途徑(Hexose monophosphate pathway,HMP),合成L-色氨酸的前體物磷酸烯醇式丙酮酸(Phosphoenolpyruvate,PEP)和4-磷酸-赤蘚糖(4-phosphate-D-erythrose,E4P),之后經(jīng)過芳香族氨基酸共有的7 步莽草酸途徑合成分支酸,最后由分支酸經(jīng)芳香族氨基酸的分支代謝途徑合成L-色氨酸[3-4]。其中,丙酮酸不僅作為色氨酸合成重要的前體物,同時(shí)也是細(xì)胞合成L-丙氨酸的直接供體。在發(fā)酵過程中L-丙氨酸大量合成,丙酮酸的消耗勢(shì)必增加,使得前體物DAHP 的合成較少,L-色氨酸的積累也受到影響。

    微生物體內(nèi)L-丙氨酸的生物合成是比較容易實(shí)現(xiàn)的,其含量也較為豐富[5-6]。但是,在氨基酸發(fā)酵生產(chǎn)中L-丙氨酸的大量合成不僅會(huì)造成碳源的過度消耗,過量的積累還會(huì)對(duì)發(fā)酵液中目標(biāo)產(chǎn)物的純化以及回收帶來(lái)困難[7-8]。大腸桿菌和谷氨酸棒桿菌都是產(chǎn)L-Trp 的代表性微生物。在谷氨酸棒桿菌中,研究人員通過敲除合成L-丙氨酸的關(guān)鍵酶來(lái)提高L-纈氨酸以及L-絲氨酸等氨基酸的產(chǎn)量[7-9]。Marienhagen 等[7]分析了谷氨酸棒桿菌中與L-丙氨酸合成相關(guān)的兩種轉(zhuǎn)氨酶:AlaT 和AvtA,通過敲除活性最高的轉(zhuǎn)氨酶AlaT 來(lái)減少L-丙氨酸的含量以及增加L-纈氨酸在胞外的積累。但與谷氨酸棒桿菌相比,大腸桿菌在L-丙氨酸的合成過程中具有更復(fù)雜的丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶,不僅包括已被鑒定的丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶AlaA、AlaC 和纈氨酸-丙酮酸氨基轉(zhuǎn)移酶AvtA 在內(nèi)最主要的3 種丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶,還包括另外8 種潛在的轉(zhuǎn)氨酶可能合成L-丙氨酸[10-12]。目前在大腸桿菌中還鮮見L-丙氨酸合成調(diào)控下的L-色氨酸的相關(guān)研究。

    本研究以大腸桿菌E. coliFS-T0 為出發(fā)菌,利用Red 重組技術(shù)分別修飾不同丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶基因,構(gòu)建系列L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶突變工程菌株,并探究各基因修飾后各工程菌在細(xì)胞生長(zhǎng)、L-丙氨酸含量以及L-色氨酸產(chǎn)量等方面的差異。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株和質(zhì)粒 大腸桿菌E. coliFS-T0 由實(shí)驗(yàn)室前期通過代謝工程手段及多輪化學(xué)誘變獲得的多類芳香族氨酸類似物抗性(5-甲基色氨酸、5-氟色氨酸和對(duì)氟苯丙氨酸抗性)的高產(chǎn)L-色氨酸工程菌株。本研究基因修飾所用質(zhì)粒pKD46、pKD13 和pCP20由工業(yè)微生物教育部工程研究中心保藏,具體菌株見表1。

    表1 本實(shí)驗(yàn)使用的菌株

    1.1.2 引物 根據(jù)GenBank 中大腸桿菌E. colistr.K-12 substr. MG1655 的 基 因alaA、alaC和avtA序列信息,利用Red 重組的方法敲除菌株E. coliFS基因組中alaA、alaC和avtA基因,分別設(shè)計(jì)含同源臂序列的敲除引物,設(shè)計(jì)如下(下劃線部分為目的基因序列,其余為同源臂序列):F1-(5′-AT GTCCCCCATTGAAAAATCCAGCAAATTAGAGAAT GTCGTGTAGGCTG GAGCTGCTTC-3′),R1-(5′-TT ACAGCTGATGATAACCAGAAAGGAAACGCGCG AACT TCTGTCAAACATGAGAATTAA-3′)、F2-(5′-ATGGCTGACACTCGCCCTGAACGTCGCT TTA CGCGCATTGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC-3′),R2-(5′-AGCGAACATGCGTATCAC CATAGTCGCCAAAG CCAATCCCTGTCAAACATGAGAATTAA-3′)以及F3-(5′-ATGACA TTCTCCCTTTTTGGTGACAAATTTACCCGCCACGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC-3′),R3-(5′-TTAGTGACTTTCAGCCCAGGCTCTTTCTATCTC TTCCGCCTGTCAAACATGAGAAT TAA-3′)。同 時(shí) 設(shè)計(jì)鑒定引物如下:F1-F-(5′-ATGTCCCCCATTGAAAAATCCAGC-3′),R1-R-(5′-TTACAGCTGATGATAACCAGAAAGG-3′)、F2-F-(5′-TAAACCGTCGGCACG GAACATCGC-3′),R2-R-(5′-TTAGCTACGGCTGA GCACGC-3′)以及F3-F-(5′-ATGAC ATTCTCCCTTT TTGG-3′),R3-R-(5′-TTAGTGACTTTCAGCCCA GG-3′)。

    1.1.3 主要試劑和儀器 PrimeStar DNA 聚合酶和PCR 試劑:TaKaRa 寶生物公司產(chǎn)品;引物合成、質(zhì)粒小量提取試劑盒、sanPreP 柱式膠回收DNA 試劑盒、胰蛋白胨和酵母粉,瓊脂糖,L-阿拉伯糖等:生工生物工程(上海)股份有限公司產(chǎn)品;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)或進(jìn)口分析純級(jí)別。

    電轉(zhuǎn)儀:Eppendorf 2510,艾本德中國(guó)有限公司;PCR 儀:ABI 產(chǎn)品;高效液相色譜儀:LC-2030C,島津中國(guó);紫外分光光度計(jì):尤尼柯(上海)儀器有限公司。

    1.1.4 培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件 LB 培養(yǎng)基(g/L):酵母粉 5,胰蛋白胨10,NaCl 10,瓊脂粉 20。

    SOC 培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨 20,酵母粉 5,葡萄糖 3.9,NaCl 0.58,KCl 0.185,MgCl20.95。

    發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20,酵母浸膏11,L-苯丙氨酸0.75,L-酪氨酸0.60,硫酸銨3,檸檬酸鈉0.25,硫酸鎂3,磷酸氫二鉀0.65,磷酸二氫鉀0.35,七水硫酸亞鐵0.02,氯化鎂0.05。

    上述培養(yǎng)基pH 值均需調(diào)至7.0,篩選所需的卡那霉素和氨芐青霉素終濃度為50 μg/mL 和100 μg/mL。

    1.2 方法

    1.2.1 PCR 片段的制備 以質(zhì)粒pKD13 為模板、含同源臂的序列為引物進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性 1 min;94℃變性 40 s,57℃退火 1 min,72℃延伸 1.5 min,35 個(gè)循環(huán);72℃延伸 10 min,之后用DpnI 酶對(duì)PCR 產(chǎn)物進(jìn)行處理,膠回收后送至生工生物工程(上海)股份有限公司測(cè)序驗(yàn)證。

    1.2.2 含pKD46 電轉(zhuǎn)化感受態(tài)的制備 將含有pKD46 質(zhì)粒的菌株接種于終濃度為100 μg/mL 的氨芐青霉素LB 培養(yǎng)基中,30℃過夜培養(yǎng)。取0.5 mL至含50 mL LB 培養(yǎng)基中(含100 μg/mL 的氨芐青霉素),30℃,250 r/min 培養(yǎng)至OD600=0.15-0.2,加入終濃度為10 mmol/L 的L-阿拉伯糖誘導(dǎo)劑。待細(xì)胞OD600在0.7 左右時(shí),菌液于4℃預(yù)冷30 min,6000 r/min 離心10 min,棄上清。之后用預(yù)冷的10%的甘油重懸離心洗滌2 次。收集后的細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)或者-80℃保存。

    1.2.3 電轉(zhuǎn)化 取上述PCR 產(chǎn)物10 μL 加至感受態(tài)細(xì)胞中,混合后加至電轉(zhuǎn)杯,于1800 V,25 μF,200 Ω 條件下進(jìn)行點(diǎn)擊。電擊后迅速加入800 μL 的SOC 培養(yǎng)基,37℃,100 r/min 培養(yǎng)約1.5 h 后取200 μL 涂布于含卡那霉素抗性的平板上,篩選含卡那霉素重組子的陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子。

    1.2.4 抗性基因及pCP20 質(zhì)粒的消除 將pCP20 質(zhì)粒電轉(zhuǎn)入含卡那霉素抗性的重組子中,30℃復(fù)蘇1.5 h 后,涂布于含氨芐青霉霉素的平板上,30℃培養(yǎng)。使用驗(yàn)證引物篩選陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,之后將陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子接種于LB 培養(yǎng)基中,30℃培養(yǎng)3 h 后42℃過夜培養(yǎng),取少許菌液劃線分離并對(duì)單菌落就行抗性檢測(cè),從而得到已消除pCP20 的重組菌株。

    1.2.5 搖瓶發(fā)酵培養(yǎng) 種子培養(yǎng):在冷凍管中分別取少許出發(fā)菌株和改造后菌株接種于LB 斜面中,培養(yǎng)約15 h 后,用無(wú)菌生理鹽水洗下接種于裝有50 mL 種子培養(yǎng)液的500 mL 三角瓶中,35℃,250 r/min培養(yǎng)12 h。

    搖瓶發(fā)酵培養(yǎng):將上述培養(yǎng)好的種子液以10%的接種量接種于含30 mL 的發(fā)酵培養(yǎng)基的250 mL 的三角瓶中,37℃,250 r/min 培養(yǎng)約40 h。

    1.2.650 L 罐補(bǔ)料分批發(fā)酵 種子罐培養(yǎng)工藝:將1.2.5 中培養(yǎng)好的種子液以0.5%的接種量接種于裝有10 L 發(fā)酵培養(yǎng)基的30 L 的種子罐中,罐溫35℃,初攪拌300 r/min,溶氧(DO)自然下降后通過攪拌控制在20%-50%,OD600≥10(約13 h),移種。

    發(fā)酵罐培養(yǎng)工藝:以20%的移種量將上述種子罐中的種子液轉(zhuǎn)入含有25 L 發(fā)酵培養(yǎng)基的50 L 發(fā)酵罐中,初攪拌300 r/min,通氣比為1∶0.8,生物量(OD600)在10 之前罐溫控制在35℃(大約6 h),之后升溫至37℃培養(yǎng),全過程通過流加25%的氨水控制pH 在7.0 左右,調(diào)節(jié)攪拌控制溶氧在15%-35%,并在發(fā)酵過程中流加70%的葡萄糖維持發(fā)酵液中葡萄糖濃度在5.0-10.0 g/L。發(fā)酵過程中每隔2 h 取樣檢測(cè)殘?zhí)羌熬w生物量。發(fā)酵結(jié)束前2 h 停止流加葡萄糖,整個(gè)發(fā)酵周期約50 h。

    1.2.7 發(fā)酵產(chǎn)物檢測(cè)分析 利用分光光度計(jì)在600 nm 下測(cè)定菌體濃度;SBA-40D 生物傳感分析儀測(cè)定葡萄糖的含量;氨基酸的含量采用HPLC 法測(cè)定[13-14]。

    2 結(jié)果

    2.1 alaA、alaC和avtA基因缺失株的構(gòu)建

    利用Red 重組技術(shù),以pKD13 質(zhì)粒為模板含同源臂的序列為引物,分別擴(kuò)增出與alaA、alaC和avtA基因同源、中間為卡那霉素抗性且在卡那霉素兩端含F(xiàn)RT 位點(diǎn)的片段。轉(zhuǎn)化后使用驗(yàn)證引物及測(cè)序的方法驗(yàn)證其與目標(biāo)長(zhǎng)度一致,篩選轉(zhuǎn)化后的陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子。

    pCP20 屬溫度敏感型質(zhì)粒,具有氯霉素和氨芐青霉素抗性,同時(shí)在30℃下可產(chǎn)生翻轉(zhuǎn)酶重組酶FLP,F(xiàn)LP 重組酶可與FRT 位點(diǎn)結(jié)合,在FLP 重組酶的作用下FRT 位點(diǎn)自身發(fā)生同源重組,從而消除抗性基因及一個(gè)FRT 位點(diǎn),在溫度升至42℃時(shí)pCP20 質(zhì)粒自行丟失。pCP20 質(zhì)粒消除抗性基因及其丟失后使用驗(yàn)證引物及測(cè)序結(jié)果篩選陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子,結(jié)果經(jīng)DNAMAN 軟件比對(duì)后與實(shí)際序列一致,表明已經(jīng)對(duì)E. coliFS 的alaA、alaC和avtA各基因成功敲除,敲除后菌落PCR 結(jié)果如圖1。

    2.2 搖瓶發(fā)酵過程中各組分變化情況

    為了驗(yàn)證各丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶的修飾對(duì)工程菌生產(chǎn)L-色氨酸的影響,對(duì)出發(fā)菌株及各修飾后的工程菌進(jìn)行搖瓶初步實(shí)驗(yàn)。利用高效液相色譜以及分光光度計(jì)等方法對(duì)各工程菌中各組分變化情況進(jìn)行比較分析。

    結(jié)果(表2)顯示,從最大生物量來(lái)看,除3種丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶全部缺失的工程菌E. coliFS-T7 的生長(zhǎng)受到較強(qiáng)抑制外,其它各工程菌株與出發(fā)菌株的細(xì)胞濃度基本一致,說(shuō)明單獨(dú)或任意兩種丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶的缺失對(duì)于菌體的正常生長(zhǎng)代謝不會(huì)造成明顯影響;在L-丙氨酸的積累和L-色氨酸的合成方面,各丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶缺失工程菌相比于出發(fā)菌株L-丙氨酸的積累均有所降低、L-色氨酸的合成均有所提高,其中L-丙氨酸的積累中工程菌E. coliFS-T4 和E.coliFS-T7 最為明顯,分別減少了91.0%和97.2%,而對(duì)于L-色氨酸的合成工程菌E. coliFS-T4 產(chǎn)量最高,可達(dá)6.08 g/L,相比于原始菌提高了26.7%,而L-丙氨酸積累最少的E. coliFS-T7 工程菌僅能合成5.36 g/L 的色氨酸。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,敲除AlaA 和AlaC 兩種L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶對(duì)工程菌株的生長(zhǎng)和發(fā)酵生產(chǎn)L-色氨酸最為有利。

    圖1 alaA、alaC 和avtA 各基因敲除后菌落PCR 結(jié)果

    表2 各基因敲除菌搖瓶發(fā)酵性能比較

    2.3 工程菌E. coli FS-T4 50L罐的補(bǔ)料分批發(fā)酵

    從搖瓶發(fā)酵試驗(yàn)結(jié)果得知,所修飾的各工程菌中,缺失AlaA 和AlaC 的兩種L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶的工程菌E. coliFS-T4 的產(chǎn)色氨酸能力最高。因此,為了檢驗(yàn)其在高密度發(fā)酵中的產(chǎn)酸能力,以出發(fā)菌株E.coliFS-T0 為對(duì)照,在50 L 罐中對(duì)菌株E. coliFS-T4進(jìn)行補(bǔ)料分批發(fā)酵實(shí)驗(yàn),發(fā)酵過程代謝曲線見圖2。工程菌株E. coliFS-T4 最高可積累L-色氨酸41.9 g/L,糖酸轉(zhuǎn)化率可達(dá)20.5%,分別較出發(fā)菌株提高了13.8%和5.1%。在細(xì)胞生長(zhǎng)和耗糖方面,發(fā)酵0-6 h,溫度控制在35℃,出發(fā)菌株與丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶缺失工程菌均處于發(fā)酵環(huán)境適應(yīng)期,細(xì)胞增長(zhǎng)較慢,但耗糖速率有一定差別,工程菌E. coliFS-T4 的耗糖速率明顯更高;發(fā)酵6 h 后,溫度升至37℃,二者工程菌均進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,菌株E. coliFS-T4 在發(fā)酵12 h 時(shí)開始進(jìn)行補(bǔ)糖,32 h 時(shí)菌濃達(dá)到最大值,最大菌濃OD 可達(dá)90.2,相比于出發(fā)菌株工程菌E.coliFS-T4 補(bǔ)糖時(shí)間和菌株生長(zhǎng)至最大菌濃時(shí)間均提前了4 h,最大菌濃也與出發(fā)菌株基本一致,說(shuō)明AlaA 和AlaC 兩丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶的缺失對(duì)菌株的正常代謝生長(zhǎng)并未有明顯影響。在L-色氨酸生產(chǎn)方面,0-16 h,酸值較低,二者產(chǎn)酸基本一致;發(fā)酵16 h 后,工程菌E. coliFS-T4 L-色氨酸的積累速率明顯加快,在46 h 時(shí)產(chǎn)酸達(dá)到最高值,相比于出發(fā)菌株達(dá)到最大酸值提前了2 h,隨著發(fā)酵時(shí)間的進(jìn)行,二者工程菌L-色氨酸的積累量分別在48 h 和50 h 時(shí)降低,因此,發(fā)酵在50 h 終止。

    圖2 E. coli FS-T4 工程菌株在50 L 罐中的補(bǔ)料分批發(fā)酵

    3 討論

    關(guān)于與L-丙氨酸合成途徑相關(guān)的轉(zhuǎn)氨酶及其敲除后對(duì)其它產(chǎn)物的影響已經(jīng)在谷氨酸棒桿菌中取得一定的研究進(jìn)展[9,15]。在谷氨酸棒桿菌中,合成L-丙氨酸的轉(zhuǎn)氨酶為AlaT 和AvtA。Marienhagen 等[7]分析了谷氨酸棒桿菌中與L-丙氨酸合成相關(guān)的轉(zhuǎn)氨酶在酶學(xué)和細(xì)胞水平及對(duì)產(chǎn)物形成等方面產(chǎn)生的差異,敲除活性最高的轉(zhuǎn)氨酶AlaT 使得胞外L-丙氨酸的積累量減少了80%,同時(shí)增加了L-纈氨酸的產(chǎn)量。Zhu 等[8]對(duì)谷氨酸棒桿菌的丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶全部敲除并引入乙酰羥酸合成酶的減毒突變體,獲得了一株高產(chǎn)的L-絲氨酸生產(chǎn)菌株且副產(chǎn)物L(fēng)-丙氨酸和L-纈氨酸的積累分別降低了87%和60%。盡管在谷氨酸棒桿菌中已經(jīng)證實(shí),減少L-丙氨酸的合成能夠增加諸如L-纈氨酸、L-絲氨酸等氨基酸的合成,但與谷氨酸棒桿菌不同的是大腸桿菌具有更復(fù)雜的L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶酶系[8,10]。在谷氨酸棒桿菌中,谷氨酸棒桿菌缺失某一種(如AlaT)或缺失全部的L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶都可以獲得L-丙氨酸含量大幅減少及目標(biāo)產(chǎn)物產(chǎn)量明顯提高的工程菌株。而與谷氨酸棒桿菌相比,大腸桿菌在缺失任意一種甚至兩種(除缺失ΔAlaAΔAlaC 外)的L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶所獲得的工程菌在L-丙氨酸含量及目標(biāo)產(chǎn)物產(chǎn)量方面并沒有顯著變化。盡管L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶AlaA、AlaC 和AvtA 全部缺失的菌株E. coliFS-T7 發(fā)酵過程中L-丙氨酸含量最低,但其在目標(biāo)產(chǎn)物L(fēng)-色氨酸的產(chǎn)量方面卻表現(xiàn)平平。因此,在大腸桿菌中還鮮見L-丙氨酸合成調(diào)控下的L-色氨酸的相關(guān)研究。

    目前已經(jīng)證實(shí)負(fù)責(zé)L-丙氨酸合成的3 種最主要的L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶分別是AlaA、AlaC 和AvtA,盡管這些酶在任意一種存在的情況下都能實(shí)現(xiàn)最佳生長(zhǎng),但AvtA 與另外兩種酶的活性卻存在顯著差異,其中AlaA 和AlaC 具有更高的通向L-丙氨酸合成的通量效率且二者活性的總和占據(jù)了大腸桿菌中總的L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶活性的90%,缺失其中任何一種的情況下都能夠促進(jìn)另外一種酶的表達(dá)[5,10]。因此,由于AlaA 和AlaC 二者L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶的互補(bǔ)作用,在單獨(dú)敲除其中任何一種時(shí),L-丙氨酸含量并不會(huì)大幅降低。Kim 等[10]研究發(fā)現(xiàn)在大腸桿菌體內(nèi)當(dāng)以丙酮酸作為碳源時(shí)可能還會(huì)存在其它幾種轉(zhuǎn)氨酶可以促進(jìn)L-丙氨酸的合成。本實(shí)驗(yàn)搖瓶結(jié)果也驗(yàn)證了這一點(diǎn),在3 種酶全部缺失的情況下,盡管菌體生長(zhǎng)明顯受到影響且其最大生物量與親本菌株相比大幅下降,但還會(huì)有少量的L-丙氨酸產(chǎn)生(約占3%)。然而盡管如此,搖瓶結(jié)果也表明在缺乏這3種最主要的轉(zhuǎn)氨酶的情況下,工程菌的生長(zhǎng)明顯受到了抑制,其最大生物量也僅為親本菌株一半。因此,AlaA、AlaC 和AvtA 三種酶的存在一起賦予了大腸桿菌L-丙氨酸合成的靈活性。即使對(duì)于AvtA 來(lái)說(shuō),在大腸桿菌體內(nèi)表現(xiàn)出很低的L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶活性且僅能夠積累少量的L-丙氨酸,但相對(duì)于3 種酶全部缺失而表現(xiàn)出巨大生長(zhǎng)缺陷,單獨(dú)存在的AvtA 也能保證與親本菌株相比相似的生長(zhǎng)速率和生物量。

    氨基酸穩(wěn)態(tài)維持并調(diào)節(jié)細(xì)菌微生物群中細(xì)胞氨基酸庫(kù)的平衡,丙氨酸通過可逆轉(zhuǎn)氨反應(yīng)的途徑,從而連接關(guān)鍵的代謝網(wǎng)絡(luò),如發(fā)酵(通過丙酮酸)和氮代謝(通過天冬氨酸和谷氨酸)[5-6,16-17]。在大腸桿菌體內(nèi)合成L-丙氨酸的前體物是丙酮酸,同時(shí)也是細(xì)胞合成L-丙氨酸的直接供體。在發(fā)酵過程中L-丙氨酸的大量合成,丙酮酸的消耗勢(shì)必增加,使得前體物DAHP 的合成較少,L-色氨酸的積累也受到影響。因此,為了保證大腸桿菌工程菌正常生理代謝且最大化降低L-丙氨酸的積累,敲除AlaA 和AlaC 兩種L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶,僅保留AvtA 一種酶。當(dāng)AlaA 和AlaC 兩種酶被同時(shí)敲除后,與親本菌株相比,被修飾后的工程菌在保持其正常生長(zhǎng)代謝不變的情況下,L-丙氨酸的濃度大幅降低且L-色氨酸含量明顯提高,表明L-丙氨酸的合成碳流被重新定向形成L-色氨酸。

    本研究成功構(gòu)建了兩種L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶AlaA和AlaC 缺失的工程菌株E. coliFS-T4,該工程菌并非L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶完全缺失型菌株,因此不需要額外添加L-丙氨酸就能保證菌株的正常生長(zhǎng)代謝且一定程度地提高了目標(biāo)產(chǎn)物L(fēng)-色氨酸的產(chǎn)量,既節(jié)約了成本又避免了培養(yǎng)基的復(fù)雜化,也為后續(xù)工業(yè)化生產(chǎn)L-色氨酸提供了理論基礎(chǔ)及應(yīng)用價(jià)值。丙氨酸作為細(xì)胞內(nèi)氨基酸池的重要氨基供體,L-丙氨酸合成的減少也可能對(duì)其它代謝產(chǎn)物產(chǎn)生一定影響。因此,在后續(xù)的研究工作中,我們將通過轉(zhuǎn)錄組及代謝組學(xué)的手段對(duì)胞內(nèi)相關(guān)酶的轉(zhuǎn)錄及主要產(chǎn)物進(jìn)行分析以探究代謝修飾對(duì)其產(chǎn)生的影響,并以此為理論基礎(chǔ)有針對(duì)性的通過系統(tǒng)生物學(xué)的策略進(jìn)一步提高L-色氨酸的產(chǎn)量。

    4 結(jié)論

    本研究以大腸桿菌工程菌E. coliFS 為出發(fā)菌株,利用Red 重組技術(shù)成功敲除與L-丙氨酸合成相關(guān)的兩個(gè)關(guān)鍵L-丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶基因alaA和alaC,搖瓶結(jié)果顯示L-色氨酸產(chǎn)量可達(dá)6.08 g/L,提高了26.7%;丙氨酸含量0.16 g/L,降低了91.0%;最終菌體生物量與原始菌株基本一致。在50 L 罐中補(bǔ)料分批發(fā)酵試驗(yàn),結(jié)果顯示L-色氨酸產(chǎn)量及糖酸轉(zhuǎn)化率最高可達(dá)41.9 g/L 和20.5%,分別較出發(fā)菌株提高了13.8%和5.1%。L-丙氨酸的積累大幅下降的同時(shí),L-色氨酸的含量大幅提高。

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