高博,胡芳芳,高艷鳳
論著
Vasostatin-1對(duì)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞炎性損傷的影響
高博,胡芳芳,高艷鳳
探討血管生成抑制因子vasostatin-1(VS-1)對(duì)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞的炎性損傷作用及機(jī)制。
采用缺氧復(fù)氧方式制造腎小管上皮細(xì)胞炎性損傷。構(gòu)建慢病毒載體并以脂質(zhì)體法將shVS-1 轉(zhuǎn)染 NRK-52E 細(xì)胞。ELISA 法檢測(cè)細(xì)胞中 LDH 和 IL-1β 含量;Western blot 檢測(cè)細(xì)胞中 VS-1、pro-caspase-1 和 caspase-1 蛋白表達(dá)。
與對(duì)照組相比,缺氧復(fù)氧組細(xì)胞 LDH 和 IL-1β 含量顯著升高,且 VS-1 蛋白表達(dá)顯著升高。成功構(gòu)建沉默 VS-1 的慢病毒載體,且轉(zhuǎn)染缺氧復(fù)氧 NRK-52E 細(xì)胞,可降低細(xì)胞中 LDH 和 IL-1β 含量、降低 caspase-1 蛋白表達(dá),過(guò)表達(dá) VS-1 則具有相反的功能。
沉默 VS-1 可保護(hù)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞的炎性損傷,可能與下調(diào) caspase-1 有關(guān),可為急性腎損傷的臨床治療提供依據(jù)。
Vasostatin-1; 缺氧復(fù)氧; 腎小管上皮細(xì)胞; 炎性損傷; 炎性因子
急性腎損傷又稱(chēng)急性腎衰竭,是一種涉及多種疾病的臨床常見(jiàn)危重病癥[1]。醫(yī)院患者急性腎損傷的發(fā)生率在 1.4% ~ 25.9%,死亡率為 60.3%[2]。炎癥反應(yīng)是引起缺血再灌注腎損傷的重要原因,腎小管上皮細(xì)胞為缺血再灌注腎損傷的重要效應(yīng)細(xì)胞,是腎臟炎癥介質(zhì)的關(guān)鍵[3]。血管生成抑制因子vasostatin-1(VS-1)是在應(yīng)激狀態(tài)下由脊椎和無(wú)脊椎動(dòng)物神經(jīng)、內(nèi)分泌以及彌散性神經(jīng)內(nèi)分泌系統(tǒng)釋放的嗜鉻粒蛋白 A 通過(guò)組織特異性加工程序產(chǎn)生的N 端 1 ~ 76 酶解多肽片段,具有舒張血管、促進(jìn)機(jī)體固有免疫、調(diào)節(jié)細(xì)胞黏附等多種組織非特異性穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)作用[4-6]。各種炎癥因子,如腫瘤壞死因子(TNF)、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子,造成內(nèi)皮細(xì)胞損傷、內(nèi)皮屏障功能紊亂和血管滲漏以吸引炎癥中單核巨噬細(xì)胞聚集、黏附內(nèi)皮、遷入內(nèi)皮下間隙形成泡沫細(xì)胞[7]。VS-1 具有促進(jìn)血管舒張,減少內(nèi)皮細(xì)胞的趨化、增殖、血管滲漏及抑制炎癥細(xì)胞黏附的功能[8]。VS-1 在冠狀動(dòng)脈病變組織中低表達(dá),但在外傷或炎癥應(yīng)激狀態(tài)下表達(dá)明顯升高[9]。但 VS-1 在炎癥狀態(tài)下升高的機(jī)制尚未闡明。VS-1 在慢性結(jié)腸炎和腫瘤新生血管形成中均有報(bào)道[10-11]。大量研究報(bào)道 VS-1 在缺血性心臟疾病的防治中具有很大潛力。但 VS-1 在急性腎損傷中的作用機(jī)制尚未完全清楚。本研究將建立缺氧復(fù)氧(H/R)腎小管上皮細(xì)胞損傷,構(gòu)建沉默 VS-1 的慢病毒載體和沉默 VS-1 的缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞,觀察沉默 VS-1 對(duì)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷和炎癥因子 caspase-1 的影響,揭示沉默 VS-1 可保護(hù)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞的損傷,可能與下調(diào) caspase-1 有關(guān),為急性腎損傷的臨床診斷治療提供理論依據(jù)。
大鼠腎小管上皮細(xì)胞 NRK-52E 購(gòu)自 ATCC 細(xì)胞庫(kù);DMEM 培養(yǎng)基、DH5α 感受態(tài)細(xì)胞、HQ 高純度質(zhì)粒抽提試劑盒、LipofectamineTM2000、PUC-T 載體連接試劑盒、R I、I 內(nèi)切酶均購(gòu)自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司;PVDF 膜購(gòu)于德國(guó)羅氏診斷有限公司;乳酸脫氫酶(LDH)檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;IL-1β 檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海酶聯(lián)生物科技有限公司;凝膠成像分析儀購(gòu)自日本柯達(dá)公司;半干轉(zhuǎn)膜儀購(gòu)自美國(guó) Bio-Rad 公司。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 采用含 10% 胎牛血清的 DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)大鼠腎小管上皮細(xì)胞NRK-52E,置于 37 ℃、5% CO2和 95% 空氣的恒溫培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。
1.2.2 缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞模型 當(dāng)細(xì)胞長(zhǎng)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期時(shí),用無(wú)血清的 DMEM 培養(yǎng)基處理細(xì)胞 24 h,培養(yǎng)液用不含血清和抗生素的磷酸鹽緩沖液、換用 1% O2+ 94% N2+ 5% CO2混合氣體的37 ℃缺氧箱中缺氧培養(yǎng) 4 h。然后復(fù)氧培養(yǎng),如 1.2.1 培養(yǎng)方法培養(yǎng) 3、6、12 和 24 h,收集細(xì)胞及培養(yǎng)液上清。
1.2.3 構(gòu)建沉默 VS-1 的慢病毒載體 shVS-1 核苷酸序列由美國(guó) Invitrogen 公司合成,然后將 shVS-1 插入到表達(dá)載體 PUC-T,4 ℃連接過(guò)夜,瞬時(shí)轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞 DH5α,然后搖菌培養(yǎng),涂板過(guò)夜培養(yǎng)。挑取單克隆株擴(kuò)大培養(yǎng),用 HQ 高純度質(zhì)粒抽提試劑盒提取質(zhì)粒。構(gòu)建質(zhì)粒 shVS-1,最后將其轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞 DH5α 中。在轉(zhuǎn)化平板中挑取克隆株并驗(yàn)證其是否與插入基因片段一致。
1.2.4 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將構(gòu)建載體 shVS-1、Scrambled 和 pcDNA、pcDNA-VS-1 用LipofectamineTM2000 轉(zhuǎn)染到常規(guī)培養(yǎng)的 NRK-52E 細(xì)胞。然后進(jìn)行缺氧復(fù)氧培養(yǎng) 12 h。轉(zhuǎn)染-制造細(xì)胞損傷成功后用于酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)、Western blot 實(shí)驗(yàn)。
1.2.5 酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn) 按照檢測(cè)試劑盒的技術(shù)手冊(cè)檢測(cè)細(xì)胞中 LDH 和 IL-1β 含量。
1.2.6 Western blot 實(shí)驗(yàn) 取適量缺氧復(fù)氧處理 12 h 的 NRK-52E 細(xì)胞和轉(zhuǎn)染細(xì)胞,RIPA 裂解液裂解后,提取總蛋白,BCA 法蛋白定量后變性,按照 Western blot 實(shí)驗(yàn)步驟進(jìn)行操作。以目的條帶灰度值與內(nèi)參 GAPDH 灰度值的比值表示目的蛋白 VS-1、pro-caspase-1、caspase-1 的表達(dá)情況。
缺氧復(fù)氧處理大鼠腎小管上皮細(xì)胞 NRK-52E 3、6、12 和 24 h,和對(duì)照組相比,LDH 含量均顯著升高(圖 1A),IL-1β 含量均顯著升高(圖 1B),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(< 0.05)。最佳致 NRK-52E 細(xì)胞損傷時(shí)間為 12 h。
圖 1 缺氧復(fù)氧處理不同時(shí)間的腎小管上皮細(xì)胞 NRK-52E 的炎性損傷(A:LDH 的含量;B:IL-1β 的含量;*P < 0.05)
Figure 1 Inflammatory injury of renal tubular epithelial cells NRK-52E at different time after hypoxia reoxygenation (A: LDH content; B: IL-1β content;*< 0.05)
圖 2 缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞中 VS-1 蛋白表達(dá)升高(*P < 0.05)
Figure 2 Increased expression of VS-1 protein in hypoxic reoxygenated renal tubular epithelial cells (*< 0.05)
運(yùn)用 Western blot 檢測(cè)缺氧復(fù)氧處理 12 h 的 NRK-52E 細(xì)胞中 VS-1 的蛋白表達(dá),與對(duì)照組相比,VS-1 的蛋白表達(dá)量顯著升高(圖 2,< 0.05)。
如圖 3 所示,與 Scrambled 慢病毒載體相比,shVS-1 慢病毒載體中 VS-1 的蛋白表達(dá)顯著降低,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(< 0.05)。可見(jiàn),成功構(gòu)建沉默 VS-1 的慢病毒載體。
shVS-1 組與 Scrambled 組相比,腎小管上皮細(xì)胞中 LDH 含量顯著降低(圖 4A),IL-1β 含量顯著降低(圖 4B),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(< 0.05)??梢?jiàn),沉默 VS-1 可減輕缺氧復(fù)氧對(duì)腎小管上皮細(xì)胞的炎性損傷。
如圖 5 所示,轉(zhuǎn)染 shVS-1 組細(xì)胞與轉(zhuǎn)染 Scrambled 組相比,VS-1 蛋白表達(dá)顯著降低(< 0.05)。
如圖 6 所示,shVS-1 組細(xì)胞與 Scrambled 組相比,caspase-1 蛋白表達(dá)顯著降低(< 0.05),pro-caspase-1 蛋白表達(dá)差異不顯著(> 0.05)。
圖 3 沉默 VS-1 對(duì)慢病毒載體中 VS-1 蛋白表達(dá)的影響(*P < 0.05)
Figure 3 Effect of silencing VS-1 on VS-1 protein expression in lentiviral vectors (*< 0.05)
圖 4 沉默 VS-1 減輕缺氧復(fù)氧對(duì)腎小管上皮細(xì)胞的炎性損傷(A:對(duì) LDH含量的影響;B:對(duì) IL-1β 含量的影響;*P < 0.05)
Figure 4 Silencing VS-1 attenuated inflammatory injury to renal tubular epithelial cells by hypoxia reoxygenation (A: Effect on LDH content; B: Effect on IL-1β content;*< 0.05)
圖 5 沉默 VS-1 抑制缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞 VS-1 蛋白表達(dá)(*P < 0.05)
Figure 5 Silencing VS-1 inhibited VS-1 protein expression in hypoxic reoxygenation renal tubular epithelial cells (*< 0.05)
圖 6 沉默 VS-1 下調(diào)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞caspase-1(*P < 0.05)
Figure 6 Silencing VS-1 down-regulated caspase-1 in hypoxic reoxygenation renal tubular epithelial cells (*< 0.05)
圖 7 VS-1 過(guò)表達(dá)對(duì)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷的影響(A:免疫印跡圖;B:VS-1 蛋白相對(duì)表達(dá)量;C:對(duì)pro-caspase-1、caspase-1 蛋白表達(dá)的影響;D:對(duì) LDH含量的影響;E:對(duì) IL-1β含量的影響;*P < 0.05)
Figure 7 Effects of VS-1 overexpression on oxygenation of renal tubular epithelial cells (A: Immunoblot; B: Relative expression of VS-1 protein; C: Effect on pro-caspase-1, caspase-1 protein expression; D: Effect on LDH content; E: Effect on IL-1β content;*< 0.05)
結(jié)果如圖 7 所示,與 pcDNA 組相比,pcDNA-VS-1 組細(xì)胞中 VS-1 的表達(dá)水平明顯升高,caspase-1 蛋白表達(dá)顯著升高,LDH、IL-1β 含量均顯著升高(< 0.05)。
Vasostatin 類(lèi)多肽在心血管循環(huán)系統(tǒng)中起到平衡調(diào)節(jié)作用,具有保護(hù)血管系統(tǒng)抵抗強(qiáng)烈興奮和應(yīng)激刺激的作用[12]。VS-1 在心肌細(xì)胞缺血再灌注損傷中的研究非常普遍,VS-1 的復(fù)性肌力作用、抗心肌缺血再灌注損傷及抗心律失常作用已得到認(rèn)可[13-14]。目前關(guān)于 VS-1 與細(xì)胞炎癥因子的研究甚少。童玉娜[15]在缺氧復(fù)氧誘導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞炎癥反應(yīng)的研究中闡明,缺氧復(fù)氧可上調(diào)腎小管上皮細(xì)胞中 IL-1β 和 caspase-1 表達(dá),且成熟的 IL-1β 表達(dá)與 caspase-1 的表達(dá)相一致。本研究建立缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷,運(yùn)用 Western blot 檢測(cè) VS-1 蛋白表達(dá)發(fā)現(xiàn),在缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞中 VS-1 高表達(dá)且可上調(diào) LDH 和 IL-1β。這些發(fā)現(xiàn)表明 VS-1 的表達(dá)與腎小管上皮細(xì)胞損傷分泌的炎性因子呈劑量依賴(lài)性。
VS-1 在不同生物中的作用機(jī)制是具有種屬特異性的,其對(duì)蛙和鰻魚(yú)心臟鈣/鈉通道的依賴(lài)性不同[16-18]。王錚[19]在心肌缺血再灌注損傷的研究中,通過(guò)構(gòu)建腺病毒重組的 VS-1 基因,并轉(zhuǎn)染大鼠心肌細(xì)胞和大鼠血管內(nèi)皮細(xì)胞,運(yùn)用 MTT 法檢測(cè)細(xì)胞活力,Annexin-V-FITC 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡,揭示了 VS-1 在心肌細(xì)胞和血管內(nèi)皮細(xì)胞中具有顯著的抗缺氧復(fù)氧損傷作用。Liu 等[20]研究闡明,過(guò)表達(dá) VS-1 可保護(hù)缺氧復(fù)氧心肌細(xì)胞-血管內(nèi)皮細(xì)胞的損傷。
本研究構(gòu)建慢病毒介導(dǎo)的沉默 VS-1 的缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷,運(yùn)用 ELISA 法檢測(cè) LDH 和 IL-1β 含量發(fā)現(xiàn),沉默 VS-1 可下調(diào) LDH 和 IL-1β,可保護(hù)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷,過(guò)表達(dá) VS-1 則具有相反的作用,揭示了 VS-1 在急性腎損傷中的作用。VS-1 在缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷中的作用與心肌缺血再灌注損傷中的作用相反。
IL-1β 是炎癥反應(yīng)早期產(chǎn)生的多潛能細(xì)胞因子,可誘導(dǎo) TNFα、IL-6、IL-8 等細(xì)胞因子的產(chǎn)生,是引起腎小管上皮細(xì)胞炎性損傷和凋亡的重要效應(yīng)分子[21]。Caspase-1 是 IL-1β 轉(zhuǎn)化酶,其為哺乳動(dòng)物體內(nèi)剪切促炎因子 IL-1β 的特異蛋白酶,可將 pro-IL-1β 剪切為成熟的 IL-1β[22-23]。Gasman 等[24]研究運(yùn)用 ELISA 法檢測(cè)腸源和胰源內(nèi)分泌腫瘤患者血清和正常人血清中 CgA 和 VS-1 的表達(dá),揭示促生長(zhǎng)抑制素治療可上調(diào)患者血清中的 CgA 但不影響 VS-1 的表達(dá)水平,提示 VS-1 可作為腸源和胰源內(nèi)分泌腫瘤的診斷標(biāo)記物。Rumio 等[10]在研究慢性結(jié)腸炎時(shí),建立 DSS 誘導(dǎo)的鼠急性和慢性結(jié)腸炎模型,LPS 誘導(dǎo)的腸黏膜上皮細(xì)胞損傷,運(yùn)用 ELISA 法檢測(cè) VS-1、IL-8、CK 的含量,發(fā)現(xiàn) VS-1 抑制損傷細(xì)胞分泌TNFα、干擾素 c,且在動(dòng)物模型中具有保護(hù)作用,揭示 VS-1 在動(dòng)物體內(nèi)具有治療作用,該機(jī)制可能與抑制腸道的滲透力,對(duì)損傷腸黏膜的修復(fù)和抑制 IL-8/KC 及其他炎性因子的產(chǎn)生有關(guān)。本研究在前人的基礎(chǔ)上建立沉默 VS-1 的慢病毒介導(dǎo)的缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞損傷模型,運(yùn)用 Western blot 法檢測(cè)細(xì)胞中 caspase-1、pro-caspase-1 的蛋白表達(dá),揭示沉默VS-1 可抑制缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞中 caspase-1的蛋白表達(dá),提示沉默 VS-1 可抑制炎癥因子的分泌。這將為 VS-1 在不同種屬、不同組織中的特異性研究提供參考依據(jù)。
總之,沉默 VS-1 可保護(hù)缺氧復(fù)氧腎小管上皮細(xì)胞的炎性損傷,其可能與下調(diào) caspase-1 有關(guān),可作為臨床治療急性腎損傷的理論依據(jù)。
[1] Wu S, Ding XQ, Fang Y. Research development of micro RNA involving in acute kidney injury. Chin J Clin Med, 2015, (5):703-706. (in Chinese)
吳聲, 丁小強(qiáng), 方藝. microRNA參與急性腎損傷的研究進(jìn)展. 中國(guó)臨床醫(yī)學(xué), 2015, (5):703-706.
[2] Lang XB, Yang Y, Chen JH. Epidemiology of acute kidney injury in hospitalized patients in China. J Zhejiang Univ (Med Sci), 2016, 45(2): 208-213. (in Chinese)
郎夏冰, 楊毅, 陳江華. 中國(guó)住院患者急性腎損傷流行病學(xué)調(diào)查現(xiàn)狀. 浙江大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2016, 45(2):208-213.
[3] Wang Y, Li ZH, Deng X, et al. Protective mechanism of ischemic preconditioning on apoptosis induced by kidney ischemia - reperfusion. Chin J Practi Pediatr, 2016, 31(5):354-358. (in Chinese)
王穎, 李志輝, 鄧旭, 等. 缺血預(yù)處理對(duì)大鼠缺血再灌注腎損傷誘發(fā)凋亡的保護(hù)機(jī)制. 中華實(shí)用兒科臨床雜志, 2016, 31(5):354-358.
[4] Wang Z, Xiao MD. Homeostatic effects of vasoslatin-1 in cardiovnscular system. Int J Cardiovasc Dis, 2008, 35(5):272-275. (in Chinese)
王錚, 蕭明弟. Vasostatin-1在心血管系統(tǒng)的穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)作用. 國(guó)際心血管病雜志, 2008, 35(5):272-275.
[5] Corti A, Ferrero E. Chromogranin A and the endothelial barrier function. Curr Med Chem, 2016, 19(24):4051-4058.
[6] Wallez Y, Huber P. Endothelial adherens and tight junctions in vascular homeostasis, inflammation and angiogenesis. Biochim Biophys Acta, 2008, 1778(3):794-809.
[7] Wang Q, Zhou XY, Li B, et al. Effects of serum containing atorvastatin on TNF-α-induced human umbilical vein endothelial growth factor. Chin J Integr Med Cardio Cerebrovasc Dis, 2016, 14(18):2113-2114. (in Chinese)
王群, 周喜燕, 李彬, 等. 含阿托伐他汀大鼠血清對(duì)TNF-α損傷人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子的影響. 中西醫(yī)結(jié)合心腦血管病雜志, 2016, 14(18):2113-2114.
[8] Helle KB. Regulatory peptides from chromogranin A and secretograin II: putative modulators of cells and tissues invoved in inflammatory conditions. Regul Pept, 2010, 165(1):45-51.
[9] Chen SM. Expression of heme oxygenase-1 in peripheral blood mononuclear cells of patients with coronary heart disease. Shantou: Shantou University, 2005. (in Chinese)
陳宋明. 血紅素氧化酶-1在冠心病患者外周血單個(gè)核細(xì)胞中的表達(dá). 汕頭: 汕頭大學(xué), 2005.
[10] Rumio C, Dusio GF, Colombo B, et al. The N-terminal fragment of chromogranin A, vasostatin-1 protects mice from acute or chronic colitis upon oral administration. Dig Dis Sci, 2012, 57(5):1227-1237.
[11] Veschini L, Crippa L, Dondossola E, et al. The vasostatin-1 fragment of chromogranin A preserves a quiescent phenotype in hypoxia-driven endothelial cells and regulates tumor neovascularization. FASEB J, 2011, 25(11):3906-3914.
[12] Chen CY, Bai M, Zhang Z. Development of chromogranin A in the cardiovascular area. J Clin Cardiol, 2016, 32(1):82-85. (in Chinese)
陳長(zhǎng)源, 白明, 張鉦. 嗜鉻粒蛋白A衍生多肽在心血管領(lǐng)域研究進(jìn)展. 臨床心血管病雜志, 2016, 32(1):82-85.
[13] Zheng G. Prospect on the clinical application of vasostatin-1 in the diagnosis and treatment of cardiovascular disease. World Clin Med, 2013, 34(10):619-622. (in Chinese)
鄭剛. 多肽vasostatin-1在心血管疾病診治中的應(yīng)用前景. 世界臨床藥物, 2013, 34(10):619-622.
[14] Stavrakis S, Scherlag BJ, Fan Y, et al. Antiarrhythmic effects of vasostatin-1 in a canine model of atrial fibrillation. J Cardiovasc Electrophysiol, 2012, 23(7):771-777.
[15] Tong YN. Role and mechanism of endoplasmic reticulum-derived transcription factor CHOP in inflammatory response induced by hypoxia-reoxygenation in renal tubular epithelial cells. Chongqing: Third Military Medical University, 2011. (in Chinese)
童玉娜. 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)源性轉(zhuǎn)錄因子CHOP在缺氧復(fù)氧誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞炎癥反應(yīng)中的作用和機(jī)制研究. 重慶: 第三軍醫(yī)大學(xué), 2011.
[16] Llach A, Huang J, Sederat F, et al. Effect of beta-adrenergic stimulation on the relationship between membrane potential, intracellular [Ca2+] and sarcoplasmic reticulum Ca2+ uptake in rainbow trout atrial myocytes. J Exp Biol, 2004, 207(Pt 8):1369-1377.
[17] Vornanen M, Shiels HA, Farrell AP, et al. Plasticity of excitation-contraction coupling in fish cardiac myocytes. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol, 2002, 132(4):827-846.
[18] Morad M, Cleemann L. Role of calcium channel in development oftension in heart muscle. J Mol Cell Cardiol, 1987, 19(6):527-553.
[19] Wang Z. Experimental study of transfection of Vasostatin-1 gene against myocardial ischemia/reperfusion injury. Shanghai: Shanghai Jiaotong University, 2009. (in Chinese)
王錚. Vasostatin-1基因轉(zhuǎn)染抗心肌缺血/再灌注損傷的實(shí)驗(yàn)研究. 上海: 上海交通大學(xué), 2009.
[20] Liu J, Yang D, Shi S, et al. Overexpression of vasostatin-1 protects hypoxia/reoxygenation injuries in cardiomyocytes-endothelial cells transwell co-culture system. Cell Biol Int, 2014, 38(1):26-31.
[21] Haq M, Norman J, Saba SR, et al. Role of IL-1 in renal ischemic reperfusion injury. J Am Soc Nephrol, 1998, 9(4):614-619.
[22] Saha N, Moldovan F, Tardif G, et al. Interleukin-1beta-converting enzyme/caspase-1 in human osteoarthritic tissues: localization and role in the maturation of interleukin-1beta and interleukin-18. Arthritis Rheum, 1999, 42(8):1577-1587.
[23] Li P, Allen H, Banerjee S, et al. Mice deficient in IL-1 beta-converting enzyme are defective in production of mature IL-1 beta and resistant to endotoxic shock. Cell, 1995, 80(3):401-411.
[24] Gasman S, Corsello A, Di FL, et al. Vasostatin-1: A novel circulating biomarker for ileal and pancreatic neuroendocrine neoplasms. PLoS One, 2018, 13(5):e0196858.
Effect of vasostatin-1 on inflammatory damage of hypoxic reoxygenation in renal tubular epithelial cells
GAO Bo, HU Fang-fang, GAO Yan-feng
To study the inflammatory injury mechanism of vasostatin-1 (VS-1) in renal tubular epithelial cells by hypoxic reoxygenation.
Inflammatory injury of kidney tubular epithelial cells was established by hypoxia reoxygenation. The lentiviral vector of shVS-1 was transfected into NRK-52E cells by liposome method. LDH and IL-1β levels in cells were detected by ELISA. The protein expression of VS-1, pro-caspase-1 and caspase-1 in cells were detected by Western blot.
Compared with the control group, the levels of LDH and IL-1β in the hypoxia reoxygenation group were significantly increased, and the protein expression of VS-1 was significantly increased. The lentiviral vector was successfully constructed. Transfection of silencing VS-1 lentiviral vector into NRK-52E cells with hypoxic reoxygenation could decrease LDH and IL-1β levels and downregulate caspase-1 expression, but overexpression of VS-1 possessed the opposite function.
Silencing VS-1 could protect the kidney tubular epithelial cells with hypoxic reoxygenation from inflammatory injury, which may be related to the down-regulation of caspase-1, which will provide a basis for clinical treatment of acute kidney injury.
Vasostatin-1; Hypoxia reoxygenation; Renal tubular epithelial cells; Inflammatory injury; Inflammatory factors
GAO Bo, Email: dongji991@163.com
Author Affiliation: Department of Nephrology, The People's Hospital of Anyang City, Henan 455000, China
10.3969/j.issn.1673-713X.2019.06.010
455000 河南,安陽(yáng)市人民醫(yī)院腎內(nèi)科
高博,Email:dongji991@163.com
2019-07-05