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    蒸汽爆破預(yù)處理對(duì)樟芝液體培養(yǎng)的影響

    2019-12-13 05:39:14沈宇健景思佳
    浙江林業(yè)科技 2019年4期
    關(guān)鍵詞:樟芝菌絲體木質(zhì)素

    沈宇健,張 蕾,景思佳,劉 洋,張 帆

    (1.浙江科技學(xué)院 生物與化學(xué)工程學(xué)院生物工程系,浙江 杭州 310023;2.浙江省農(nóng)業(yè)生物資源生化制造協(xié)同創(chuàng)新中心,浙江 杭州 310023;3.浙江省農(nóng)產(chǎn)品化學(xué)與生物加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江 杭州 310023;4.杭州市園林科學(xué)研究院,浙江 杭州 310013)

    樟芝Ganoderma camphoratum是臺(tái)灣地區(qū)特有珍貴食(藥)真菌。近年已證實(shí)的具有保肝、抗氧化、抗發(fā)炎、抗腫瘤、抗血小板凝集等作用[1-10],其中主要生物活性成分有三萜類(lèi)化合物,多糖、腺苷等[11]。但樟芝的自然生長(zhǎng)條件苛刻,生長(zhǎng)極為緩慢,再加上野生牛樟樹(shù)Cinnamomum kanehirai老樹(shù)更是罕見(jiàn),導(dǎo)致其自然資源嚴(yán)重短缺,價(jià)格一路飆升,因此人工培養(yǎng)樟芝是未來(lái)發(fā)展的方向,只是不同的培養(yǎng)方法都有缺陷[12]。目前認(rèn)為椴木培養(yǎng)法所獲得的樟芝子實(shí)體功效最佳,該方法用樟芝原特有宿主牛樟樹(shù)椴木為培養(yǎng)基,可獲得與野生子實(shí)體相同的生物活性成分,尤其是三萜類(lèi)化合物,但其存在培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)達(dá)1~ 3 a、培養(yǎng)成本較高,且發(fā)展樟芝的椴木培養(yǎng)法成為了牛樟樹(shù)被盜伐的主要原因,也讓原本就稀少的牛樟樹(shù)到了瀕臨絕種的地步[13-14]。雖然樟芝仍無(wú)法以椴木方式大量栽培子實(shí)體,但已可用固體及液體菌種培養(yǎng)方式進(jìn)行工業(yè)化生產(chǎn)樟芝菌絲體。固體菌種培養(yǎng)法獲得的子實(shí)體具有與野生樟芝更為接近的生物活性,培養(yǎng)時(shí)間約3 個(gè)月[15],但是此方法面臨不能去除木屑及其他不可食用部分、產(chǎn)量少,且周期長(zhǎng),不太適宜工業(yè)化生產(chǎn)。液體培養(yǎng)具有生長(zhǎng)周期短、成本低、易于大規(guī)模生產(chǎn)的優(yōu)點(diǎn),但仍然存在生物活性含量較低的問(wèn)題,所以有關(guān)如何提高樟芝液體培養(yǎng)生物活性產(chǎn)物的研究報(bào)道就一直層現(xiàn)疊出。

    本實(shí)驗(yàn)前期通過(guò)添加牛樟樹(shù)C.kanehirai,黃樟C.porrectum,華南桂C.austrosinense,樟C.camphora,山橿Lindera reflexa,香桂C.subavenium,銀木C.septentrionale,猴樟C.bodinieri,蘭嶼肉桂C.kotoense,浙江桂C.chekiangense,天竺桂C.japonicum,新木姜子Neolitsea aurata共12 種樟科Lauraceae 植物的提取物對(duì)樟芝液體培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果表明猴樟水提物對(duì)樟芝液體培養(yǎng)具有很好的促進(jìn)作用。但提取主要分布在樟科植物纖維內(nèi)側(cè)的活性成分,就必須克服表皮、纖維層,以及細(xì)胞壁的傳質(zhì)阻力,特別是結(jié)構(gòu)致密的細(xì)胞壁,是提取活性成分的主要障礙,現(xiàn)行的化學(xué)浸提等方法的效率不高且容易對(duì)人體有害[16]。因此迫切需要一種預(yù)處理方法,即可提高得率、縮短時(shí)間、且成本低對(duì)環(huán)境無(wú)害。經(jīng)濟(jì)、環(huán)保、處理時(shí)間短且易于大規(guī)模生產(chǎn)的蒸汽爆破[17-20](以下簡(jiǎn)稱(chēng)汽爆)預(yù)處理法是近年來(lái)逐漸發(fā)展起來(lái)的一種方法,使用一定壓力的水蒸氣、空氣等介質(zhì)對(duì)植物進(jìn)行爆破,此技術(shù)已廣泛應(yīng)用于制漿工業(yè)、動(dòng)物飼料的生產(chǎn),根據(jù)徐紅關(guān)于蒸汽爆破預(yù)處理紅柳Tamarix ramosissima的酶解發(fā)酵性能研究[18],降低蒸汽壓力而延長(zhǎng)維壓時(shí)間對(duì)提取效果更好,因此汽爆技術(shù)在對(duì)樟科植物的預(yù)處理中具有一定的可行性。本實(shí)驗(yàn)在汽爆壓力為2.00 MPa 的條件下,選擇7 個(gè)維壓時(shí)間來(lái)分析汽爆對(duì)于猴樟樹(shù)枝水提物的影響,以期優(yōu)化樟芝液體培養(yǎng)的工藝。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌種 樟芝,2012 年從臺(tái)灣自然科學(xué)博物館引進(jìn),在浙江省農(nóng)產(chǎn)品化學(xué)與生物加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室采用超低溫保藏法-80℃低溫保藏。

    1.1.2 植物材料 2016 年10 月和2017 年10 月分別在杭州植物園采集樹(shù)齡10 a 以上的猴樟樹(shù)枝,由于樟芝僅生長(zhǎng)在牛樟樹(shù)腐朽之心材內(nèi)壁或枯死倒地的牛樟木之陰暗潮濕面,故使用高枝剪剪取同一株樹(shù)的老枝,使用粉碎儀進(jìn)行粉碎至小碎片,粉碎后的總樹(shù)枝量在720.00 g 以上。

    1.1.3 試劑 馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA)、馬鈴薯葡萄糖肉湯培養(yǎng)基(PDB)、樟腦油、95%乙醇、齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品、葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品、高氯酸、冰醋酸、香蘭素、香草醛、二氯甲烷、濃硫酸、蒽酮,均購(gòu)自浙江常青化工有限公司,其中試劑類(lèi)為國(guó)產(chǎn)分析純或化學(xué)純。

    1.1.4 試劑配制 0.80 mol·L-1重鉻酸鉀標(biāo)準(zhǔn)溶液:基準(zhǔn)重鉻酸鉀39.25 g·L-1;0.20 mol·L-1硫酸亞鐵溶液:硫酸亞鐵56.00 g·L-1,濃硫酸15.00 mL;鄰啡羅啉指示劑:鄰二氮菲11.46 g·L-1,硫酸亞鐵6.95 g·L-1;1.00%醋酸溶液:36.00%乙酸1.00 mL;72.00%硫酸溶液:98.00%硫酸652.00 mL;10.00%氯化鋇溶液:氯化鋇100.00 g·L-1;10.00%硫酸溶液:98.00%硫酸593.40 mL;20.00%碘化鉀溶液:碘化鉀200.00 g·L-1;1.00%淀粉溶液:淀粉10.00 g·L-1;0.20 mol·L-1硫代硫酸鈉溶液:硫代硫酸鈉49.60 g·L-1,碳酸鈉0.50 g;0.10 mol·L-1硫代硫酸鈉溶液:硫代硫酸鈉24.80 g·L-1,碳酸鈉0.50 g;以上試劑配制的溶液均為去離子水。乙醇、乙醚混合液:乙醚 1.00 mL,乙醇 20.00 mL;醋酸、硝酸混合液:醋酸5.00 mL,硝酸5.00 mL。

    1.1.5 培養(yǎng)基 菌種活化培養(yǎng)基:PDA 39.00 g·L-1,葡萄糖10.00 g·L-1,瓊脂10.00 g·L-1,pH 自然;液體一級(jí)培養(yǎng)基:PDB 24.00 g·L-1,葡萄糖10.00 g·L-1,pH 自然;液體二級(jí)培養(yǎng)基:PDB 24.00 g·L-1,葡萄糖10.00 g·L-1,pH 自然。

    1.1.6 主要儀器 QBS-80 汽爆試驗(yàn)臺(tái),鶴壁正道生物能源有限公司;紫外分光光度計(jì)UV-5500PC,上海元析儀器有限公司;EYELA 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海愛(ài)朗儀器有限公司;真空冷凍干燥儀,寧波新芝生物科技股份有限公司;高效液相色譜儀,美國(guó)waters 公司;無(wú)菌操作臺(tái),蘇州佳寶凈化工程設(shè)計(jì)有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 汽爆處理 將粉碎并放置于烘箱50℃烘干至恒質(zhì)量后的猴樟樹(shù)枝進(jìn)行汽爆,每次投料量為90.00 g 左右,加熱介質(zhì)為150~ 180℃飽和水蒸汽,汽爆壓力為2.00 MPa,按120,180,240,300,360,420,480 s 共7 個(gè)維壓時(shí)間分7 個(gè)實(shí)驗(yàn)組,汽爆后,再放置于烘箱50℃烘干,干燥保存,對(duì)照組為同樣放置于烘箱50℃烘干至恒質(zhì)量但未汽爆的猴樟,共8 個(gè)組。

    1.2.2 樹(shù)枝提取物制備 將8 個(gè)組的猴樟,各取16.00 g 分別加入400.00 mL 的去離子水中,100℃水浴1 h,過(guò)濾,再將濾渣加入400.00 mL 的去離子水,100℃水浴1 h,過(guò)濾后將2 次濾液合并,真空冷凍干燥后,保存在4℃的冰箱內(nèi)備用。

    1.2.3 掃描電鏡 8 個(gè)組各取一小片烘干后的猴樟,用黑色導(dǎo)電膠固定于玻片上,放入儀器進(jìn)行掃描。

    1.2.4 碳元素的測(cè)定 8 個(gè)組各取0.010 g 的樣品放入硬管,加5.00 mL 重鉻酸鉀標(biāo)準(zhǔn)溶液和5.00 mL 濃硫酸并轉(zhuǎn)移至試管。油浴加熱,油浴溫度為170~ 180℃,保持溶液沸騰5 min。取出并冷卻后進(jìn)行滴定,指示劑為鄰啡羅啉,滴定液為硫酸亞鐵溶液,滴定終點(diǎn)為溶液從橙黃變到棕紅色時(shí)。同時(shí)以加0.10~ 0.50 g 的石英砂作為空白對(duì)照進(jìn)行空白滴定,記錄硫酸亞鐵的用量(V0),并以重量法測(cè)定樣品水分,根據(jù)公式(1)計(jì)算出含碳量。每組樣品設(shè)3 個(gè)重復(fù)。

    式中,0.800 0 為1/6 重鉻酸鉀標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度,mol·L-1;0.003 為1/4 碳原子的摩爾質(zhì)量,g·mol-1;1.1 為氧化校正系數(shù);V0為空白滴定用去硫酸亞鐵溶液的體積,mL;V為滴定試樣用去硫酸亞鐵溶液的體積,mL;m為風(fēng)干試樣質(zhì)量,g;K為將風(fēng)干試樣換算成烘干試樣的水分換算系數(shù)。

    1.2.5 氮元素的測(cè)定 8 個(gè)組各稱(chēng)取1.00~ 2.00 g 的樣品,放入裝有10.00 mL 硝酸、20.00 mL 濃硫酸的消化管,加入0.20 g 硫酸銅和6.00 g 硫酸鉀,進(jìn)行消化并升溫:140℃維持30 min,320℃維持10 min,420℃維持40 min。然后使用凱氏測(cè)氮儀測(cè)定含氮量[21]。每組樣品設(shè)3 個(gè)重復(fù)。

    1.2.6 木質(zhì)素的測(cè)定 8 個(gè)組各稱(chēng)取 0.050 g 的樣品于離心管中,加入1%的醋酸溶液10.00 mL,離心15 min。加3.00~ 4.00 mL 乙醇、乙醚混合液,浸泡3 min,棄去上清液,浸洗3 次。沉淀于100℃水浴蒸干,加入72%硫酸3.00 mL,靜置16 h。加入10.00 mL 蒸餾水,100℃水浴5 min,冷卻。加入5.00 mL 蒸餾水和10%的氯化鋇溶液0.50 mL,離心15 min。沉淀用蒸餾水沖洗2 次,加入10%的硫酸10.00 mL 和0.025 mol·L-1的重鉻酸鉀溶液10.00 mL,100℃水浴15 min,并攪拌。冷卻并進(jìn)行滴定,指示劑為5.00 mL 20%的碘化鉀溶液,滴定液為0.20 mol·L-1硫代硫酸鈉,滴定終點(diǎn)為溶液變?yōu)樽丶t色時(shí)。滴定結(jié)束后,再加入1.00 mL 1%的淀粉溶液作為指示劑,滴定液仍為0.20 mol·L-1硫代硫酸鈉,滴定終點(diǎn)為溶液從藍(lán)色變?yōu)榱辆G色時(shí)。同時(shí)以未加樣品,加入10%的硫酸10.00 mL 和0.025 mol·L-1的重鉻酸鉀溶液10.00 mL 作為空白對(duì)照進(jìn)行空白滴定作為驗(yàn)證。根據(jù)公式(2)計(jì)算木質(zhì)素含量。每組樣品設(shè)3 個(gè)重復(fù)。

    式中,K為硫代硫酸鈉的濃度,mol·L-1;a為空白滴定所消耗硫代硫酸鈉的體積,mL;b為溶液所消耗硫代硫酸鈉的體積,mL;N為所取鋸末的質(zhì)量,g;48 為1 mol C6H10O5相當(dāng)于硫代硫酸鈉(一定濃度)的滴定度。

    1.2.7 纖維素的測(cè)定 8 個(gè)組各稱(chēng)取0.10 g 的樣品于試管中,加入5.00 mL 醋酸、硝酸混合液,100℃水浴30 min,轉(zhuǎn)移至離心管,加去離子水,冷卻并離心15 min,棄去上清液,離心3 次,烘干。取烘干樣加入0.50 mol·L-1的重鉻酸鉀溶液10.00 mL 和濃硫酸8.00 mL,搖勻,100℃水浴15 min,冷卻并進(jìn)行滴定,指示劑為20%的碘化鉀溶液5.00 mL,滴定液為0.10 mol·L-1硫代硫酸鈉,滴定終點(diǎn)為溶液變?yōu)樗{(lán)色,且半分鐘內(nèi)不褪色,再以未加樣品作為空白對(duì)照進(jìn)行空白滴定。根據(jù)公式(3)計(jì)算纖維素含量。每組樣品設(shè)3 個(gè)重復(fù)。

    式中,K為硫代硫酸鈉濃度,mol·L-1;a為空白滴定所耗硫代硫酸鈉體積,mL;b為溶液滴定所耗硫代硫酸鈉體積,mL;N為樣品的質(zhì)量,g。

    1.2.8 菌株培養(yǎng)

    1.2.8.1 活化菌株 對(duì)低溫保存的菌株采用菌種活化培養(yǎng)基的方式進(jìn)行活化。把配制好的菌種活化培養(yǎng)基放入滅菌鍋內(nèi),在121℃,0.10 MPa 的條件下滅菌20 min,取出培養(yǎng)基并冷卻至室溫,在無(wú)菌條件下,將菌株接入培養(yǎng)基,置于人工智能氣候箱,28℃避光培養(yǎng)15 d,于-4℃冰箱冷藏保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.8.2 液體一級(jí)培養(yǎng) 分別將配制好的100.00 mL 液體一級(jí)培養(yǎng)基放入250.00 mL 的錐形瓶中,分別添加8 個(gè)組的猴樟水提物各40.00 mg,在121℃,0.1 MPa 的條件下滅菌20 min,取出培養(yǎng)基并冷卻至室溫;在無(wú)菌條件下接入活化好的菌種,轉(zhuǎn)接量為每瓶2 粒(2×1 cm2),并封口。置于搖床(120 r·min-1,28℃)震蕩培養(yǎng)4d,促進(jìn)菌絲體的生長(zhǎng)。每組樣品設(shè)3 個(gè)重復(fù)。

    1.2.8.3 液體二級(jí)培養(yǎng) 分別將配制好的100.00 mL 液體二級(jí)培養(yǎng)基放入250.00 mL 的錐形瓶中,并在二級(jí)培養(yǎng)基中分別添加8 個(gè)組的猴樟水提物各40.00 mg,在121℃,0.10 MPa 的條件下滅菌20 min,取出培養(yǎng)基并冷卻至室溫;在無(wú)菌條件下接入培養(yǎng)4 天后的一級(jí)培養(yǎng)液,轉(zhuǎn)接量為二級(jí)培養(yǎng)基的10%,置于搖床(120 r·min-1,28℃)震蕩培養(yǎng)4 d,進(jìn)行菌絲體的擴(kuò)大培養(yǎng)。每個(gè)樣品設(shè)3 個(gè)重復(fù)。

    1.2.9 生物量的測(cè)定 取二級(jí)液體培養(yǎng)基中的發(fā)酵液,用3 層200 目的尼龍網(wǎng)過(guò)濾,得到菌絲體,用蒸餾水沖洗菌絲體3 次后,置于真空冷凍干燥機(jī)中冷凍干燥后,研磨成粉,分別測(cè)定樟芝菌絲體粉末的干重,保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.10 總?cè)坪繙y(cè)定 取實(shí)驗(yàn)組培養(yǎng)基與對(duì)照組培養(yǎng)基上生長(zhǎng)并過(guò)濾冷凍干燥后的樟芝菌絲體,研磨成粉,測(cè)定總?cè)频暮?。參照陸震鳴等[22]的方法,以齊墩果酸為標(biāo)準(zhǔn)品,采用香草醛-冰乙酸顯色法測(cè)定。測(cè)定前,采用紫外分光光度計(jì)于400~ 700 nm 波長(zhǎng)處進(jìn)行全波長(zhǎng)掃描,結(jié)果顯示在550 nm 處具有最大吸光值,所以該反應(yīng)的吸收波長(zhǎng)設(shè)定為550 nm。

    齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品溶液:精確稱(chēng)取齊墩果酸10.00 mg,置于50.00 mL 容量瓶,加二氯甲烷定容至刻度,配制成濃度為0.20 mg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)溶液。

    齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制:精確量取濃度為0.20 mg·mL-1的齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品溶液0.00,0.10,0.20,0.50,1.00,1.50 mL,分別放入具塞磨口試管中,加熱去除溶劑,然后各加入0.30 mL 的5%香草醛—冰醋酸溶液和1.00 mL 高氯酸,加塞。于60℃恒溫水浴20 min,取出后立即用冰水冷卻,再分別加入5.00 mL 冰醋酸,在漩渦混合器混合均勻,在550 nm 處測(cè)定吸光度值。以吸光度值為縱坐標(biāo),齊墩果酸濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。

    樣品溶液及總?cè)茰y(cè)定:取樟芝菌絲體粉末0.10 g 于10.00 mL 的蒸餾水中,于100℃水浴回流2 h,冷卻后以1:4 的比例加入無(wú)水乙醇,置于4℃沉淀過(guò)夜,抽濾,取其濾液各1.00 mL,置于3 個(gè)磨口試管中,加熱蒸干溶劑,按照繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的方法測(cè)定吸光度值,計(jì)算不同培養(yǎng)基樟芝菌絲體中總?cè)坪?。根?jù)下式計(jì)算總?cè)频寐剩?/p>

    式中,X為樣品中總?cè)祁?lèi)含量,g·100g-1;M1為樣品的質(zhì)量,g;M2為通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)算得的測(cè)定用樣液三萜類(lèi)含量,mg;V1為待測(cè)液定容的體積,mL;V2為待測(cè)用的樣液體積,mL。

    1.2.11 多糖含量測(cè)定 取實(shí)驗(yàn)組培養(yǎng)基與對(duì)照組培養(yǎng)基上生長(zhǎng)并過(guò)濾冷凍干燥后的樟芝菌絲體,研磨成粉,測(cè)定多糖含量。參照《中國(guó)藥典》的多糖測(cè)定方法[23],以無(wú)水葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品,采用苯酚—硫酸法測(cè)定。測(cè)定前,采用紫外分光光度計(jì)于400~ 800 nm 波長(zhǎng)處進(jìn)行全波長(zhǎng)掃描,結(jié)果顯示在620 nm 處具有最大吸光值,所以該反應(yīng)的吸收波長(zhǎng)設(shè)定為620 nm 。

    葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液:精確稱(chēng)取105℃干燥至恒重的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品100.00 mg 定容于1 000.00 mL,配制成濃度為0.10 mg·mL-1的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液。

    葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制:精確吸取0.10%葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液0.00,0.10,0.20,0.30,0.40,0.50,0.60 mL,分別放入具塞磨口試管中,分別加水至1.00 mL,各加5.00 mL 蒽酮試劑,震蕩混勻,水浴20 min,取出冷卻至室溫,在620 nm 處測(cè)定吸光度值,以吸光度值為縱坐標(biāo),葡萄糖濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。

    樣品溶液及胞內(nèi)多糖測(cè)定:取樟芝菌絲體粉末0.20 g 于20.00 mL 的蒸餾水中,80℃水浴加熱2 h,冷卻,然后加入1:4 體積的無(wú)水乙醇混勻,置于4℃沉淀過(guò)夜,離心分離沉淀、過(guò)濾,除去濾渣,得樟芝粗多糖樣品溶液,按照繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的方法測(cè)定吸光度值,計(jì)算多糖含量。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    采用Excel 2007 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,DPS 統(tǒng)計(jì)分析軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行樣本檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)分析,以P<0.05 為差異顯著,以P<0.01 為差異極顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同維壓時(shí)間猴樟組織結(jié)構(gòu)的研究

    汽爆預(yù)處理可以有效的改變猴樟木質(zhì)纖維的天然結(jié)構(gòu),隨著汽爆時(shí)間的延長(zhǎng),反應(yīng)的激烈程度不斷增加,導(dǎo)致猴樟的顏色由原來(lái)的褐色逐漸過(guò)渡到黑色,外形也由原來(lái)的塊狀過(guò)渡到纖維狀。根據(jù)文獻(xiàn)記載[24],纖維素完全降解的溫度約360℃,木質(zhì)素的降解溫度在280~500℃。雖然本實(shí)驗(yàn)汽爆過(guò)程的蒸汽溫度在 150~ 180℃之間,并沒(méi)有到讓纖維素和木質(zhì)素可以完全降解的程度,但不同的維壓時(shí)間也會(huì)讓纖維素、木質(zhì)素發(fā)生不同程度的降解。

    圖1 為不同汽爆時(shí)間猴樟組織結(jié)構(gòu)在掃描電鏡下的圖片(×1 000 倍)。從圖1 中可以看出不同汽爆時(shí)間預(yù)處理過(guò)的猴樟有明顯的不同。圖1(A)為未汽爆過(guò)的樣品,標(biāo)明粗糙,纖維束結(jié)合緊密;圖1(B)為汽爆120 s,組織變得松散,纖維表面開(kāi)始出現(xiàn)裂紋;圖1(C)為汽爆180 s 后,組織的空腔開(kāi)始增大,纖維表面出現(xiàn)更多的裂紋和裂片;圖1(D)為汽爆240 s 后,纖維束間發(fā)生分離,表面的孔增多;圖1(E)汽爆300 s 后,可以明顯看到纖維的斷裂;圖1(F)汽爆360 s 后、(G)為汽爆420 s 后,樣品表面出現(xiàn)微孔;圖1(H)汽爆480 s 后,結(jié)合在纖維束周?chē)募?xì)小纖維消失,表面出現(xiàn)更多微孔。文獻(xiàn)顯示對(duì)植物的提取過(guò)程中傳質(zhì)過(guò)程是關(guān)鍵的限速步驟。汽爆預(yù)處理后,猴樟樹(shù)枝破碎成更小的碎塊,且表面造成很多微孔,可以增加提取效率[20]。

    圖1 不同汽爆時(shí)間猴樟的掃描電鏡圖Figure 1 Pictures by scanning electron microscope of C.bodinieri after different duration of steam explosion

    2.2 不同維壓時(shí)間對(duì)猴樟纖維素、木質(zhì)素含量的影響

    一般植物纖維素占40%~ 50%,木質(zhì)素占20%~ 30%,均是構(gòu)成植物細(xì)胞壁的主要成分。纖維素是一種不溶于水及一般有機(jī)溶劑的大分子多糖,被木質(zhì)素包裹,占植物界碳含量的50%以上;木質(zhì)素是包圍于管胞、導(dǎo)管及木纖維素等纖維束細(xì)胞及厚壁細(xì)胞外的物質(zhì),具有某些側(cè)鏈的苯環(huán)結(jié)構(gòu),很難分解。因此,纖維素、木質(zhì)素阻礙了植物的提取。汽爆是依靠一定壓力的飽和蒸汽對(duì)汽爆缸里的物料進(jìn)行加熱和滲透,再突然將物料置于一定的大氣壓力下,從而完成纖維素和木質(zhì)素有選擇性的分離,所以汽爆的維壓時(shí)間對(duì)其處理的效果起到?jīng)Q定性的作用。圖2 是蒸汽壓力在2.00 MPa 時(shí),不同的維壓時(shí)間對(duì)纖維素和木質(zhì)素的影響,從圖2 可見(jiàn)由于維壓時(shí)間越長(zhǎng)汽爆的強(qiáng)度就越大,對(duì)猴樟的纖維素和木質(zhì)素的破壞力就越大。

    纖維素在120 s 的時(shí)候與未汽爆呈現(xiàn)的是下降的趨勢(shì),這可能是一下汽爆之后,壓力和溫度的同時(shí)作用,造成纖維性的降解,在120~180 s 的時(shí)候纖維素含量開(kāi)始增加,維壓時(shí)間在240 s 時(shí),纖維素含量基本維持不變,在300~480 s 時(shí)間段內(nèi),纖維素含量持續(xù)呈上升趨勢(shì),最高在480 s 時(shí)達(dá)到58.20 %。而隨著維壓時(shí)間的增加,猴樟中的木質(zhì)素含量持續(xù)呈上升趨勢(shì)。造成這一現(xiàn)象的原因估計(jì)是猴樟本身的特殊性,猴樟是慢生樹(shù)種,質(zhì)地堅(jiān)實(shí)、紋理細(xì)密,木質(zhì)素含量較高,且木質(zhì)素的降解溫度在280~ 500℃,短時(shí)間的維壓時(shí)間,不能有效的破壞木質(zhì)素。對(duì)猴樟進(jìn)行汽爆預(yù)處理有效提高了纖維素的有效含量,同時(shí)也有效破壞了猴樟的木質(zhì)天然結(jié)構(gòu),增加了猴樟作為提取物料的比表面積,以利于后續(xù)的提取。

    圖2 不同維壓時(shí)間對(duì)猴樟纖維素和木質(zhì)素的影響Figure 2 Effect of different duration of steam explosion on cellulose and lignin of C.bodinieri

    2.3 不同維壓時(shí)間對(duì)猴樟碳、氮含量的影響

    表1 是在不同維壓時(shí)間內(nèi)碳、氮含量以及碳氮比。從表1 中可以看出隨著維壓時(shí)間的增加,碳、氮含量總體趨勢(shì)是呈上升的,這也和圖2 中纖維素和木質(zhì)素含量的情況一致,汽爆預(yù)處理破壞了細(xì)胞壁的結(jié)構(gòu),且維壓時(shí)間越長(zhǎng)破壞的程度就越大,更減少木質(zhì)素對(duì)纖維素的包裹作用。

    碳源、氮源在生物的生長(zhǎng)過(guò)程中起著非常重要的作用,研究表明,過(guò)高或過(guò)低的碳氮比均不利于細(xì)胞的生長(zhǎng),濃度過(guò)高,不利于產(chǎn)物的積累。在未汽爆前,猴樟樹(shù)枝的碳氮比為89,汽爆后由于細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的破壞,引起細(xì)胞內(nèi)含物的溢出,氮含量隨之上升,使得碳氮比持續(xù)下降,在300 s 時(shí)下降到真菌培養(yǎng)基的理想水平25,而到480 s 時(shí)已降到16,因此,后續(xù)可用汽爆預(yù)處理后的猴樟樹(shù)枝作為固體培養(yǎng)基培養(yǎng)樟芝。

    表1 不同維壓時(shí)間對(duì)猴樟碳、氮含量以及碳氮比的影響Table 1 Effect of different duration of steam explosion on carbon,nitrogen content and carbon-nitrogen ratio of C.bodinieri

    2.4 不同維壓時(shí)間的猴樟水提物對(duì)樟芝液體培養(yǎng)總?cè)?、總多糖含量的影?/h3>

    從圖3 中可見(jiàn),與對(duì)照猴樟水提物培養(yǎng)的菌絲體相比,在液體培養(yǎng)基中添加汽爆預(yù)處理的猴樟水提物培養(yǎng)的菌絲體,均呈現(xiàn)出不同程度促進(jìn)總?cè)坪康淖饔?,其中維壓時(shí)間在120~ 300 s,菌絲體總?cè)坪砍掷m(xù)上升,并在300 s 達(dá)到最高值2.90%,比對(duì)照組提高了16.80%,而維壓時(shí)間在360~ 480 s,總?cè)坪砍掷m(xù)下降,到480 s 時(shí)比300 s 的總?cè)坪肯陆盗?.50%,但仍比對(duì)照組提高了13.90%。從圖4 可見(jiàn),與對(duì)照猴樟水提物培養(yǎng)的菌絲體相比,在液體培養(yǎng)基中添加汽爆預(yù)處理的猴樟水提物培養(yǎng)的菌絲體,總多糖含量持續(xù)上升。480 s 維壓時(shí)間時(shí)總多糖含量到最高值2.80%,比對(duì)照組提高25.00%。由此可見(jiàn),汽爆預(yù)處理對(duì)猴樟的木質(zhì)纖維結(jié)構(gòu)產(chǎn)生了一定的破壞,有效提高了猴樟的水提效果,間接促進(jìn)了樟芝液體培養(yǎng)菌絲體的總?cè)?、總多糖的含量。雖然目前測(cè)定的總?cè)?、總多糖是液體培養(yǎng)樟芝菌絲體的粗提物,但也可以間接反映出汽爆后的猴樟水提物有效促進(jìn)了樟芝液體培養(yǎng)時(shí)分泌一些活性成分。

    圖3 不同維壓時(shí)間的猴樟水提物對(duì)樟芝液體培養(yǎng)菌絲體總?cè)坪康挠绊慒igure 3 Effect of water extract from C.bodinieri treated by different explosion duration on total triterpene content of mycelium in liquid culture of G.camphoratum

    圖4 不同維壓時(shí)間的猴樟水提物對(duì)樟芝液體培養(yǎng)菌絲體總多糖含量的影響Figure 4 Effects of water extract from C.bodinieri treated by different explosion duration on total polysaccharide content of mycelium in liquid culture of G.camphoratum

    3 結(jié)論與討論

    高效、清潔預(yù)處理是給培養(yǎng)基添加促進(jìn)因子的首要步驟,現(xiàn)在常用的化學(xué)法存在化學(xué)品消耗、環(huán)境污染和有毒害等的壓力,與其相比,汽爆具有處理時(shí)間短、污染少和無(wú)毒害等的優(yōu)點(diǎn),具有研究和發(fā)展的前景。

    汽爆前后猴樟的組織結(jié)構(gòu)發(fā)生了明顯變化,顏色也明顯變深,推測(cè)是由于纖維降解產(chǎn)生的糖類(lèi)與猴樟樹(shù)枝中的某些物質(zhì)產(chǎn)生美拉德反應(yīng)和焦糖化反應(yīng)。隨著維壓時(shí)間的增加,汽爆后猴樟樹(shù)枝的細(xì)小碎塊量明顯增加,掃描電鏡圖中可以看出大的碎塊斷裂成小的纖維束,這是由于一些物理化學(xué)變化加速了纖維等的降解。且汽爆預(yù)處理的強(qiáng)大機(jī)械力一定程度上破壞了猴樟的細(xì)胞壁,更加便于之后的浸潤(rùn),提取。

    從本實(shí)驗(yàn)的結(jié)果中可以看出汽爆預(yù)處理是一種有效方法,經(jīng)過(guò)蒸汽爆破處理后各組分含量顯著變化,破壞猴樟的木質(zhì)天然結(jié)構(gòu),提高纖維素、木質(zhì)素、碳和氮含量,降低碳氮比,且添加汽爆預(yù)處理之后的猴樟水提物到樟芝液體培養(yǎng)基中,7 個(gè)組均可以有效提高菌絲體的總?cè)坪涂偠嗵呛?,最高值比?duì)照組分別提高了16.80%和25.00%。當(dāng)維壓時(shí)間在300 s 時(shí),總?cè)频暮孔畲?,隨著維壓時(shí)間的增加而略微有點(diǎn)下降,排除實(shí)驗(yàn)誤差的可能性,本實(shí)驗(yàn)采用2.00 MPa 的蒸汽壓力對(duì)應(yīng)的蒸汽溫度為150~ 180℃,而纖維素、木質(zhì)素的完全降解溫度都在280℃之上,推測(cè)蒸汽壓力不夠?qū)е聦?duì)纖維素和木質(zhì)素的破壞不夠,這就證實(shí)了維壓時(shí)間只是破壞猴樟細(xì)胞壁提高活性物質(zhì)提取率的主要因素之一。近年來(lái)的研究表明降低蒸汽壓力而延長(zhǎng)維壓時(shí)間的提取效果更好,故本實(shí)驗(yàn)僅采用單因素即只考慮汽爆不同的維壓時(shí)間對(duì)猴樟樹(shù)枝水提物的影響,造成這個(gè)現(xiàn)象的原因可能是因?yàn)橹捌瑧?yīng)用在秸稈等木質(zhì)素含量低的植物為主,對(duì)木質(zhì)素含量較高的植物來(lái)說(shuō),質(zhì)地更為堅(jiān)硬,延長(zhǎng)維壓時(shí)間不能有效的軟化物料,效果不如提高蒸汽壓力,今后需要將二者整合為強(qiáng)度系數(shù)來(lái)作為汽爆預(yù)處理的綜合指標(biāo),便于后續(xù)最佳的工藝參數(shù)確定。

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