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    3 種大米淀粉脫支前后結(jié)構(gòu)及流變特性

    2019-12-03 01:08:06申明玉韋冬梅周裔彬
    食品科學(xué) 2019年21期
    關(guān)鍵詞:普魯蘭鏈長支鏈

    曹 川,申明玉,許 莉,韋冬梅,周裔彬,*

    (1.安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)茶與食品科技學(xué)院,安徽 合肥 230001;2.安徽糧食工程職業(yè)學(xué)院糧食工程系,安徽 合肥 230011)

    淀粉作為能量儲存物質(zhì),廣泛來源于種子、水果及植物根系中,不同植物來源淀粉的形態(tài)和結(jié)晶結(jié)構(gòu)各不相同,直鏈淀粉、支鏈淀粉組成有所差異,理化性質(zhì)以及對普魯蘭酶水解的靈敏性也不同[1-2]。普魯蘭酶是一種脫支酶,作為外切酶,能夠?qū)R恍缘厍懈钇咸烟铅?1,6-糖苷鍵,應(yīng)用于淀粉的脫支[3]。不同脫支程度淀粉產(chǎn)物的聚合度(degree of polymerization,DP)不同,淀粉完全脫支產(chǎn)生具有一定鏈長的線性糊精,DP范圍一般在6~100之間,Klaochanpong[4]和Precha-Atsawanan[5]等比較脫支蠟質(zhì)淀粉與天然蠟質(zhì)淀粉的膠凝性能發(fā)現(xiàn),脫支淀粉(debranched starches,DBS)產(chǎn)生的凝膠較為混濁,具有光澤的外觀和較低的黏度,而天然淀粉產(chǎn)生的凝膠均勻、透明且黏度較高。Liu Guodong等[6]應(yīng)用普魯蘭酶對4 種不同來源DBS的水解特性和凝膠特性進行研究,結(jié)果表明:所有DBS均為V型淀粉,具有中空、單螺旋結(jié)構(gòu);脫支處理對淀粉黏度影響較大,使淀粉黏度下降,DBS能夠捕獲水以形成水凝膠;脫支有效地改善了淀粉的溶解度和持水能力,有助于其凝膠的形成。DBS的特殊功能特性逐漸受到研究者的青睞,特別在回生特性、凝膠性能等方面[7-8]。

    本實驗選擇糯米、粳米和秈米3 種大米淀粉,研究普魯蘭酶處理前后3 種大米淀粉脫支衍生物的晶體結(jié)構(gòu)、分子質(zhì)量分布、溶解度、黏度和流變學(xué)特性,為淀粉基包埋產(chǎn)物的緩慢釋放提供參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    糯米、粳米和秈米由安徽省惠豐糧食儲備庫提供。

    普魯蘭酶(EC 3.2.1.41) 美國Sigma公司;氫氧化鈉、乙酸鈉、無水乙醇、乙酸(均為分析純) 國藥集團化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    RVA-4500快速黏度分析儀 瑞典波通儀器公司;TTR-III X射線衍射(X-ray diffraction,XRD)儀日本理學(xué)電機公司;Nicolet iS50 傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)T-IR)儀、ICS5000高效陰離子交換色譜(high-performance anionexchange chromatography,HPAEC)儀、Dionex?CarboPac? PA200離子交換柱(250 mm×1 mm,5.5 μm) 美國Thermo Fisher Scientific公司;DHR系列流變儀 美國TA公司。

    1.3 方法

    1.3.1 DBS的制備

    通過稀堿浸泡分離法制得糯米、粳米和秈米3 種大米淀粉,3 種大米原淀粉中直鏈淀粉質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為糯米1.97%、秈米25.65%、粳米17.23%。

    DBS制備:參考劉國棟[9]和Cai Liming[10]等的方法,并做適當(dāng)修改。將淀粉和乙酸緩沖液(0.01 mol/L,pH 5.5)按料液比1∶20加入500 mL帶塞錐形瓶中,置于集熱式磁力攪拌器上于105 ℃下恒溫攪拌30 min,然后轉(zhuǎn)移到滅菌鍋中,121 ℃下加熱1 h徹底糊化,再將淀粉糊冷卻至50 ℃,加普魯蘭酶,50 ℃反應(yīng)12 h,將酶解液濃縮至200 mL后緩慢加入無水乙醇中,容量瓶定容至1 000 mL,放置室溫過夜,再以5 000 r/min離心15 min,收集沉淀物,沉淀用無水乙醇洗滌3 次,最后冷凍干燥、研磨和篩分,待用。

    1.3.2 XRD分析

    采用XRD儀測定天然淀粉和DBS冷凍干燥粉末的結(jié)晶度。儀器條件:管壓40 kV、管流80 mA、衍射角(2θ)掃描區(qū)域為0°~50°、掃描速率2°/min。參考Lopez-Rubio等[11]的方法使用PeakFit 4.12軟件對淀粉顆粒結(jié)晶峰面積和非晶區(qū)域進行分析。平均鏈長(以DP表示)按式(1)計算。

    1.3.3 HPAEC分析

    參考Liu Guodong等[1]的方法,采用HPAEC儀(配備電化學(xué)檢測器)測定天然淀粉和DBS冷凍干燥粉末的鏈長分布。分析條件:進樣量50 μL;柱溫25 ℃;流動相A為ddH2O;流動相B為100 mmol/L NaOH;流動相C為100 mmol/L NaOH/500 mmol/L NaAc;流速0.5 mL/min。

    1.3.4 FT-IR分析

    稱取一定質(zhì)量的天然淀粉和DBS冷凍干燥粉末,分別添加100 倍質(zhì)量的無水KBr研磨混合,將所得樣品粉末壓縮成薄圓盤狀。掃描范圍為4 000~400 cm-1,分辨率為4 cm-1。

    1.3.5 黏度分析

    采用快速黏度測定儀對天然淀粉和DBS的黏度進行測定。測試程序參考美國谷物化學(xué)家協(xié)會的方法[12]進行,水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)設(shè)定為14%,稱取樣品冷凍干燥粉末3.00 g,加入蒸餾水25 mL。溫度設(shè)定程序:50 ℃保持1 min,以12 ℃/min上升到95 ℃,保持2.5 min,再以12 ℃/min下降到50 ℃,保持1.4 min。待天然淀粉完成黏度測定后取出糊化桶,將普魯蘭酶加入混合物中,重新設(shè)定程序使溫度在50 ℃保持60 min,測定DBS黏度。

    1.3.6 流變學(xué)性質(zhì)分析

    淀粉糊糊化完全后冷卻至50 ℃,添加普魯蘭酶,繼續(xù)在集熱氏磁力攪拌器中105 ℃恒溫攪拌1 h,采用流變儀對天然淀粉和DBS流變學(xué)性質(zhì)進行測定。選擇40 mm平板,間隙值設(shè)定為1 050,擦去多余樣品,重新設(shè)間隙值為1 000。動態(tài)流變設(shè)定程序為:振蕩頻率0.1~10,應(yīng)變2%,9 個點。靜態(tài)流變設(shè)定程序為:流動掃描,剪切速率0.1~100 s-1,6 個點。

    1.3.7 水解特性分析

    1.3.7.1 持水力測定根據(jù)Liu Guodong等[1]的方法對淀粉持水力進行測定。

    1.3.7.2 膨脹能力測定

    用蒸餾水配制質(zhì)量濃度為5 g/100 mL的淀粉乳,置于集熱式磁力攪拌器上,于105 ℃下恒溫攪拌,待完全糊化后,取10 mL乳液于離心試管中,3 000 r/min離心30 min,收集上清液,所得沉淀即為膨脹淀粉。將上清液置于表面皿中于105 ℃烘至恒質(zhì)量,得到水溶淀粉,稱質(zhì)量并記錄[13]。按式(2)、(3)計算淀粉的溶解度和膨脹能力。

    式中:S為溶解度/%;m1為上清液蒸干至恒質(zhì)量后的質(zhì)量/g;m0為稱取淀粉質(zhì)量/g;m2為沉淀質(zhì)量/g。

    1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    實驗數(shù)據(jù)采用Origin 8.0和SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)進行相關(guān)性分析和逐步回歸分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 XRD分析結(jié)果

    圖 1 3 種大米淀粉(A)及其DBS(B)的XRD圖譜Fig. 1 XRD patterns of native rice starch (A) and DBS (B)

    由圖1可知,3 種大米天然淀粉(IS、JS、WS)XRD峰的位置主要集中在10°~27°,在衍射角2θ為15°、17°、18°和23°時出現(xiàn)較強的特征衍射峰,這屬于典型的A型淀粉[14],而DBS衍射峰的位置出現(xiàn)變化,DBIS、DBJS和DBWS衍射峰的位置主要集中在7.9°、13.5°、15°、17°、18°、21°和23°,表明DBS的結(jié)晶度明顯低于天然淀粉,無定形區(qū)增加,表明經(jīng)過普魯蘭酶水解后形成的晶體結(jié)構(gòu)向無定形和無序的淀粉鏈發(fā)展,進入無序凝膠網(wǎng)絡(luò)[15-16]。DBWS在7.9°、13.5°、15°、17°、18°、21°特征衍射峰強度高于DBIS和DBJS,表明DBWS中直鏈含量明顯增多。

    2.2 鏈長分布分析結(jié)果

    圖 2 3 種大米淀粉的鏈長分布Fig. 2 Distribution of chain lengths of native and debranched rice starch

    根據(jù)分支鏈長淀粉可分為4 種類型:A鏈:DP為6~12;B1鏈:DP為13~24;B2鏈:DP為25~36;B3鏈:DP大于37[17]。HPAEC-脈沖電流檢測器可以確定DP范圍為6~60[18-19]。采用支鏈淀粉酶選擇性水解α-1,6-糖苷鍵,將支鏈切下,得到線性短鏈淀粉。本實驗選擇3 種大米淀粉經(jīng)過支鏈淀粉酶徹底脫支,研究支鏈淀粉酶對水解淀粉分支結(jié)構(gòu)和性質(zhì)的影響。由圖2可知,3 種DBS的精細(xì)結(jié)構(gòu)相似。DBIS含有較多長鏈淀粉分支(B2和B3鏈:27.47%),而DBWS與其他兩種大米淀粉相比,A鏈的相對含量為32.61%,所占比例較高,B2和B3鏈為22.08%,所占比例最低。DBWS的平均鏈長最短(DP為19.27),DBIS的平均鏈長最長(DP為21.34);普魯蘭酶可以選擇性地水解α-1,6-D-糖苷鍵。以上結(jié)果表明,普魯蘭酶水解反應(yīng)對較短的支鏈更有效,鏈長越短越容易被切割,反之亦然[20]。

    2.3 FT-IR分析結(jié)果

    圖 3 3 種大米淀粉及其DBS的FT-IR圖譜Fig. 3 Fourier transform infrared spectra of raw and debranched rice starch

    由圖3可知,在天然淀粉中,通常情況下在3 385 cm-1處的寬帶歸因于—OH伸縮振動,在1 250 cm-1處的波段對應(yīng)于—OH彎曲振動[21]。3 種大米淀粉及其DBS的FT-IR光譜之間峰形沒有明顯差別,但DBS的峰強度有所增強。天然淀粉在脫支過程中α-1,6-糖苷鍵不斷被水解斷裂,—OH數(shù)量隨之增加,導(dǎo)致在3 000~4 000 cm-1處的吸收峰變得狹長,3 410 cm-1處的—OH伸縮振動吸收峰相對增強。

    2.4 黏度分析結(jié)果

    圖 4 3 種大米淀粉脫支前后的黏度變化趨勢Fig. 4 Trend of viscosity in raw and debranched rice starch

    由圖4和表2可知,不同來源淀粉脫支前后的黏度不同。在糊化過程中,3 種大米的天然淀粉顯示出典型的布拉本德黏度曲線。WS的糊化曲線與IS和JS有較大差異;WS短時間內(nèi)達(dá)峰值黏度,之后迅速下降,在冷卻過程中譜線平緩,而IS和JS達(dá)到峰值黏度的時間略長,冷卻過程中黏度回升明顯,最終黏度高于WS。IS峰值黏度、最終黏度較高說明IS顆粒分子間締合、交聯(lián)程度較大,排列緊密,抗剪切力較強。崩解值反映了淀粉顆粒結(jié)構(gòu)在加熱過程中的穩(wěn)定性,崩解值越大淀粉顆粒越不穩(wěn)定。本實驗中JS崩解值最大,說明其淀粉顆粒熱穩(wěn)定性差,而WS呈現(xiàn)較低的峰值黏度,表明其有較高的抵抗膨脹和破裂能力[22]。WS的回生值僅為726 mPa·s,表明WS與其他兩種淀粉相比不易退化和發(fā)生分子聚集[15]。當(dāng)將普魯蘭酶添加到系統(tǒng)中時,淀粉糊黏度急劇下降。由表2可知,DBWS、DBJS和DBIS的最終黏度較其天然淀粉分別降低了94.99%、56.15%和52.84%。DBWS黏度較DBJS和DBIS下降快,表明WS對普魯蘭酶更為敏感,容易被水解。支鏈淀粉以及支鏈淀粉鏈長所占的比例,可能對淀粉糊的最終黏度具有重要影響。IS的糊化溫度最高,說明其在自然水分下加熱時晶體崩解所需熱量最低,凝膠稠度最小。WS的糊化溫度最低,說明其在自然水分下加熱時晶體崩解所需熱量最高,凝膠稠度最大,究其原因可能是直鏈淀粉含量的差異性[23-24]。為保持酶活力,淀粉糊化后加入普魯蘭酶,測定DBS黏度,溫度設(shè)定為50 ℃,溫度過高會導(dǎo)致酶活力喪失,因此DBS糊化溫度未測定。

    表 2 3 種大米淀粉脫支前后的黏度變化Table 2 Viscosity change before and after debranching of rice starch

    2.5 流變學(xué)特性分析結(jié)果

    2.5.1 動態(tài)流變學(xué)特性分析結(jié)果

    圖 5 3 種大米淀粉脫支前后的動態(tài)流變變化趨勢Fig. 5 Trend of dynamic rheology in raw and debranched rice starch

    由圖5可知,3 種大米淀粉儲能模量(G’)和損耗模量(G’’)均隨著頻率的增加而上升,表現(xiàn)為典型的弱凝膠動態(tài)流變學(xué)特征,IS的黏性和彈性均為最高,WS均為最低,這可能是由直鏈淀粉含量差異導(dǎo)致的。脫支后DBS的G’和G’’整體隨頻率增加而上升,但G’最終值差異較小,而DBIS的G’’最高,DBWS最低,這與黏度分析結(jié)果相同,3 種DBS的G’和G’’都較其天然淀粉降低,說明脫支處理使凝膠強度降低,凝膠表現(xiàn)出液體特性。經(jīng)過脫支處理,淀粉分子內(nèi)部結(jié)構(gòu)重組,分子鏈被切割,直鏈淀粉含量增多,分子鏈段纏繞變少,黏度降低,凝膠強度降低[25]。

    2.5.2 靜態(tài)流變學(xué)特性分析結(jié)果

    圖 6 3 種大米淀粉脫支前后的靜態(tài)流變變化趨勢Fig. 6 Trend of static rheology in raw and debranched rice starch

    由圖6可知,3 種大米天然淀粉及其DBS的剪切應(yīng)力均隨剪切速率的增加而增大,具有假塑性流體特征;曲線均不同程度地屈向剪切應(yīng)力軸,可以判斷出其均屬于非牛頓流體;3 種大米天然淀粉的表觀黏度均在剪切速率為0~10 s-1時急劇下降,表現(xiàn)出更強的剪切稀化現(xiàn)象,經(jīng)過普魯蘭酶處理后的3 種DBS的剪切應(yīng)力和表觀黏度均比天然淀粉低,這可能是由于脫支處理后分子鏈斷裂,使分子鏈更利于流動[26-27]。2.6 水解特性分析結(jié)果

    表 3 3 種大米淀粉及其DBS的水解特性Table 3 Hydrolysis characteristics of raw and debranched rice starch

    由表3可知,3 種大米天然淀粉的溶解度較低,膨脹能力較高,經(jīng)普魯蘭酶脫支后溶解度增加,膨脹能力減小,究其原因可能是脫支使得直鏈淀粉含量增加,直鏈淀粉的雙螺旋結(jié)構(gòu)在淀粉糊化過程中很難破壞,因此能抑制淀粉分子的膨脹,增加其溶解度[28]。鏈長會影響持水力,鏈長越長越易凝結(jié)成塊,從而容納更多的水分。IS的持水力高于WS和JS,直鏈淀粉含量和支鏈長度是造成這種差異的主要原因。直鏈淀粉傾向于形成不溶性凝膠網(wǎng)絡(luò),持水力差,而較長的鏈可以捕獲更多的水分形成水凝膠。相反,高度分枝支鏈淀粉不太容易重新結(jié)合[29]。因此,由于短鏈數(shù)量增加,DBS持水力提高。

    3 結(jié) 論

    本實驗研究結(jié)果表明,經(jīng)普魯蘭酶水解后,DBS短鏈葡聚糖鏈比例增加。與秈米和粳米淀粉相比,糯米淀粉對普魯蘭酶更為敏感,鏈長分布結(jié)果表明糯米淀粉的A鏈相對含量為32.61%,平均鏈長最短(DP為19.27),傾向于形成更短的鏈,淀粉糊黏度急劇減少,普魯蘭酶水解后形成的晶體結(jié)構(gòu)向無定形和無序的淀粉鏈發(fā)展,進入無序凝膠網(wǎng)絡(luò)。脫支前后3 種大米淀粉FT-IR曲線沒有明顯差異,脫支后淀粉黏度、G’和G’’都有所降低,淀粉顆粒分子間締合、交聯(lián)程度變?nèi)?,排列松散。天然淀粉的溶解度較低,膨脹能力較高,經(jīng)過普魯蘭酶脫支后溶解度增加,膨脹能力減小,推測鏈長會影響持水力?;谝陨辖Y(jié)果,發(fā)現(xiàn)DBS親水性強,低相對分子質(zhì)量線性短鏈淀粉相對含量增加,分子運動性增強,重新組合形成更加致密的凝膠結(jié)構(gòu)。糯米淀粉對普魯蘭酶處理較其他兩種大米淀粉更為敏感。經(jīng)過普魯蘭酶脫支后的大米淀粉增強了分子聚集和締結(jié),在親水介質(zhì)中,DBS能快速形成凝膠結(jié)構(gòu),抑制酶液降解,使淀粉的抗酶解能力增加,增強淀粉的流動性和壓實性能。DBS可以作為膠凝劑、混濁劑、脂肪替代品以及谷物類早餐食品的包衣等[9,30],也可用于包埋運載藥物及活性物質(zhì)等。

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