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    不同林型紅松林土壤真菌群落組成和多樣性*

    2019-11-18 02:23:52陳秀波朱德全趙晨晨張路路陳立新段文標
    土壤學報 2019年5期
    關鍵詞:林型紅松林次生林

    陳秀波 朱德全 趙晨晨 張路路 陳立新 段文標?

    (1 東北林業(yè)大學林學院,哈爾濱 150040)

    (2 貴州財經大學藝術學院,貴陽 550025)

    (3 佳木斯大學理學院,黑龍江佳木斯 154007)

    (4 佳木斯大學中-烏農林技術開發(fā)與應用國際聯(lián)合實驗室,黑龍江佳木斯 154007)

    紅松(Pinus koraiensis)是我國東北地區(qū)珍貴針葉樹種,以紅松為建群種的混交林是該地區(qū)最具代表性的地帶性頂級植被類型,也是我國溫帶針闊混交林帶內最典型、最多樣和最重要的森林生態(tài)系統(tǒng),具有極高的生產力和生態(tài)地位。該區(qū)域氣候寒冷、土壤潮濕、有島狀永久性凍土存在,屬于全球氣候變化敏感區(qū)域[1]。從19世紀開始,大量的原始紅松林被砍伐,使其遭到嚴重破壞,除了少數保護區(qū)外,原始紅松林已基本消失[2]。

    欲保護和維持紅松林生態(tài)系統(tǒng)的穩(wěn)定性,需要分析原始紅松林對環(huán)境的適應、重要物質循環(huán)和能量流動的過程及規(guī)律。土壤真菌作為分解者存在于森林生態(tài)系統(tǒng)中,參與物質循環(huán)、能量流動和信息的傳遞[3-4]。它們在分解森林凋落物、轉變有機質、改善土壤環(huán)境和為樹木根系提供營養(yǎng)等方面扮演著重要角色[5]。真菌群落組成和多樣性特征的研究對于紅松林保護,食品和醫(yī)藥工業(yè)的真菌資源開發(fā)具有重要意義。

    近些年對紅松林土壤微生物的研究主要是采用稀釋平板法和Biolog-ECO微平板檢測法。雖然有晁開瑞[6]、吳慶禹[7]、董愛榮[8]等對椴樹紅松林、楓樺紅松林、紅松人工林等林型土壤真菌的組成和多樣性進行了報道,但都是基于培養(yǎng)手段進行研究的。森林土壤真菌數量巨大,種類繁多。傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)方法不能覆蓋土壤中絕大多數真菌,難以反映真菌群落多樣性全貌[9]。目前,對同一物種或不同物種的不同菌株間進行真菌分類鑒定或系統(tǒng)發(fā)育等方面的研究,通常利用核糖體轉錄間隔(Internal transcribed spacer,ITS)序列的差異進行比較分析[10]。以Illumina公司為代表的Miseq二代測序技術,具有通量高、重復性好、價格便宜、讀長合適等優(yōu)點。ITS較rDNA轉錄區(qū)的變異率高,能有效區(qū)分親緣關系比較相近的菌株[11],已廣泛應用于環(huán)境[12-13]和醫(yī)療等相關研究領域。

    不同林型的紅松林由于植被組成不同,土壤理化性質各異,可能會引起真菌群落組成和多樣性的不同。本研究選取黑龍江省伊春市涼水國家級自然保護區(qū)內兩種典型原始紅松混交林(云冷杉紅松林和椴樹紅松林)、紅松人工林和紅松天然次生林四種林型,采用Illumina MiSeq測序技術,分析這四種林型土壤真菌群落組成和多樣性特征,以便為紅松林的保護、人工植被恢復和真菌資源的開發(fā)利用提供依據。

    1 材料與方法

    1.1 研究區(qū)概況

    研究樣地位于小興安嶺涼水國家級自然保護區(qū)內,地處黑龍江省伊春市帶嶺區(qū)。地理坐標為東經128°53′20″,北緯47°10′50″。該區(qū)地帶性植被類型是以紅松為主的混交林,土壤為山地暗棕色森林土,母質是坡積或沖積母質上發(fā)育的腐殖質沼澤土或泥炭腐殖質沼澤土。研究區(qū)域具有明顯的溫帶大陸性季風氣候特征,年均最高氣溫7.5 ℃,最低氣溫-6.6 ℃,平均-3℃,年均地溫1.2 ℃。年均降水量667 mm,年均相對濕度78%。在該區(qū)域內,選取兩種典型的原始紅松林(云冷杉紅松林和椴樹紅松林)、紅松人工林和紅松天然次生林四種林型為研究對象。在每種林型的陽坡上,設置四塊面積為25 m×25 m的樣地。四種林型中喬木均以紅松作為建群樹種,各樣地基本信息見表1。紅松人工林植物群落相對比較單一,喬灌木種類少并且高度矮于其他三種林型。四種林型中的藤本植物主要為狗棗獼猴桃(Actinidia kolomikta)和忍冬(Lonicera japonica)。草本植物主要以鱗毛蕨(Dryopteris)、猴腿蹄蓋蕨(Athyrium multiden tatum)、蚊子草(Filipendula Palmata)為主。

    1.2 土壤樣品采集和理化因子的測定

    選擇微生物活動最為活躍的7月份采集土壤樣品。在每個樣地,沿“S”形曲線隨機設置5個取樣點,小心移去每個取樣點土壤表面凋落物,使用內徑為5 cm的土鉆和100 cm3環(huán)刀,采集0~20 cm表層土壤樣品,每個樣地重復采樣3次,將其混合均勻后裝入無菌自封袋,分兩份保存。其中一份用于測定土壤真菌群落多樣性,-80 ℃冰箱中保存;另一份土壤風干去雜質后過篩,用于土壤理化性質的測定。

    根據土壤常規(guī)分析方法測定土壤理化性質[14]。使用pH計測定土壤pH;使用環(huán)刀法測定土壤容重和土壤孔隙度;采用烘干法測定土壤含水量和凱氏定氮法測定全氮;有機碳含量測定采用重鉻酸鉀氧化法;采用鉬銻抗比色紫外分光光度法測定全磷含量。每份樣品各項指標重復測定3次。

    1.3 土壤微生物DNA提取及ITS基因測序

    稱取0.5 g新鮮土樣,采用Fast?DNA SPIN Kit(MP Biomedicals,CA,USA)提取土壤微生物的總DNA,然后采用PowerClean?DNA Clean-up Kit (MoBio, CA, USA)對提取的DNA進行純化,經瓊脂糖凝膠電泳定性檢測后,再采用Nanodrop 2000(Thermo,USA)測定其濃度及純度,最后置于-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆?。對每份樣品,采用引物ITS1/ITS2(ITS1:5-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3),ITS2:5-GCTGCGTTCTTCATCGATGC-3)擴增ITSI片段[15]。PCR步驟按試劑盒說明書進行操作,用2%的瓊脂糖電泳檢測相同樣本混合后的PCR產物,使用Axy Prep DNA 凝膠回收試劑盒切膠回收PCR產物。利用Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit對PCR產物在Microplate reader(BioTek, FLx800)上進行定量,然后按照每個樣品所需的數據量進行混樣,構建Miseq文庫。采用Illumina公司的TruSeq Nano DNA LT Library Prep Kit制備測序文庫。根據該試劑盒的說明書進行操作,純化富集后的文庫經過2%瓊脂糖凝膠電泳檢測大小,對文庫進行最終的片段選擇與純化。

    表1 四種林型樣地基本信息Table 1 Basic information of the sampling sites in the four types of Pinus koraiensis forests

    1.4 高通量測序及下機數據處理

    依據PCR產物濃度,將所有擴增成功的PCR產物等量混合,采用Illumina Miseq平臺進行雙末端250 bp測序。數據下機后,根據barcode標簽序列和前引物序列篩選出有效序列,去除Reads接頭和barcode序列,同時用FLASH軟件對原始數據進行過濾,去掉含有不確定堿基的序列、平均質量小于Q20、最終長度小于50 bp的序列以及去除含N堿基的reads。根據PE reads之間的overlap關系,將成對reads拼接成一條序列,最小overlap長度為10 bp。采用Usearch(vsesion 7.0 http://drive5.com/uparse/)去除嵌合體序列,并對有效序列進行數據統(tǒng)計。

    1.5 生物信息學分析

    使用QIIME軟件,調用UCLUST這一序列比對工具[16],對獲得的高質量序列,按97%的序列相似度進行歸并和OTU(Operational taxonomic units,OTU)劃分,并選取每個OTU中豐度最高的序列作為該OTU的代表序列。隨后,根據每個OTU在每個樣本中所包含的序列數,構建OTU在各樣本中豐度的矩陣文件(即OTU table)。在QIIME軟件中使用默認參數,通過將OTU代表序列與真菌ITS數據庫Unite(Release 6.0 http://unite.ut.ee/index.php)的模板序列相比對,獲取每個OTU所對應的分類學信息。另外將豐度值低于全體樣本測序總量0.001%的OTU去除,并以OTU豐度矩陣中最小樣本的序列數進行抽平,去除稀有OTU的OTU豐度矩陣用于后續(xù)分析。

    使用QIIME軟件,對OTU豐度矩陣中每個樣本的序列總數在不同深度下隨機抽樣,以每個深度下抽取到的序列數及其對應的OTU數繪制稀疏曲線。根據OTU劃分和分類地位鑒定結果,使用QIIME軟件,可以獲得每個樣本在各分類水平(界、門、綱、目、科、屬、種)的具體組成,并通過柱狀圖進行表示。根據獲得的OTU豐度矩陣,使用R軟件計算各樣本(組)共有或特有的OTU數量,并采用韋恩圖展示。同時使用R軟件,繪制門水平和屬水平群落Bar圖。使用QIIME軟件分別對每個樣本計算四種α多樣性指數:Chao1豐富度估計指數、Ace 豐富度估計指數、香農指數(Shannon index)和辛普森指數(Simpson index)。通過R軟件,對四種林型的真菌群落組成進行基于UniFrac距離算法PCoA分析(principal coordinate analysis)和ANOSIM(Analysis of similarities)分析,通過對樣本間距離判斷樣本差異大小。通過在線LEfSe(LDA Effect Size)軟件對四種林型的差異真菌進行分析,找出不同林型中具有顯著性差異的真菌物種,設置LDA(Linear Discriminant Analysis)score的閾值為2。采用典范對應分析(Canonical correspondence analysis,CCA)和Spearman相關性進行土壤理化因子和真菌群落組成的關聯(lián)分析,本研究所涉及的統(tǒng)計分析采用SPSS v16.0軟件進行分析。

    2 結 果

    2.1 四種林型紅松林的土壤理化性質

    兩種原始紅松林的土壤理化性質除水分含量和總孔隙度差異顯著外,pH、總有機碳、全氮、全磷、土壤容重均無顯著差異(表 2)。紅松天然次生林與其他三種林型之間多數土壤理化因子(pH、總有機碳、全氮、全磷)差異顯著。

    表2 四種林型紅松林的土壤理化性質Table 2 Physicochemical properties of the soil under the four types of Pinus koraiensis forests

    2.2 土壤樣品測序結果及測序深度評估

    通過對土壤真菌的ITS片段測序,16個土壤樣品一共獲得534 359條有效序列,經過優(yōu)化過濾低質量序列得到505 299條優(yōu)質序列。供試土壤樣品序列經拆分、去冗余后在97%的相似度下進行OTU聚類,四種林型一共獲得1 316個OTUs。如圖1所示,16個土壤樣品稀釋曲線基本趨于平緩,測序深度基本能反映四種林型土壤真菌群落。

    不同林型土壤環(huán)境中真菌OTU數目的Venn圖可以看出(圖2a),云冷杉紅松林獲得的OTU數目最多(629),其次是椴樹紅松林(544)和紅松人工林(392),紅松天然次生林最低(302)。并且四種林型土壤共有的OTU數目較少(59個),然而在綱水平的Venn圖顯示,四種林型樣地共有真菌17綱(圖2b)。

    2.3 四種林型紅松林土壤真菌群落α多樣性

    本試驗采用體現真菌群落豐富度的Chao1指數和Ace指數,真菌群落多樣性的香農指數和辛普森指數以及群落覆蓋度的Coverage指數,α多樣性指數的統(tǒng)計結果見表 3。

    由表 3中看出,云冷杉紅松林的Chao1指數和Ace指數>椴樹紅松林>紅松人工林>紅松天然次生林(其中椴樹紅松林和云冷杉紅松林的Ace指數、Chao1指數與紅松天然次生林差異顯著,P<0.5)。體現群落多樣性的香農指數和辛普森指數:椴樹紅松林>云冷杉紅松林>紅松人工林>紅松天然次生林,但差異不顯著。本次測序的覆蓋率均在99%以上,進一步證實測序結果較好的代表土壤樣本中真菌群落組成的真實情況。

    2.4 四種林型紅松林土壤真菌群落組成及差異物種

    圖1 每個土壤樣品的稀釋曲線Fig.1 Rarefaction curve of each soil sample

    圖2 四種林型紅松林土壤真菌韋恩圖Fig.2 Venn diagram of the soil fungi of four types of Pinus koraiensis forests

    表3 不同林型紅松林土壤真菌α多樣性指數Table 3 Alpha diversity index of the soil fungi in different types of Pinus koraiensis forests

    四種林型16個土壤樣品的OTU代表序列經比對鑒定得到7門、25綱、79目、166科、290屬、441種的土壤真菌物種信息。四種林型土壤真菌群落門水平上主要屬于5個類群(圖3),主要包括子囊菌門(Ascomycota)、擔子菌門(Basidiomycota)、分類地位未鑒定真菌(unclassified-k-Fungi)、接合菌門(Zygomycota)和羅茲菌門(Rozellomycota)。根據LEfSe分析的LDA判別分值(表4)也發(fā)現:在門分類水平上,椴樹紅松林土壤中擔子菌門與其他三種林型差異顯著。此外,羅茲菌門只在紅松人工林中檢測到,而在云冷杉紅松林、椴樹紅松林和紅松天然次生林中未被檢測到。

    圖3 四種林型紅松林土壤真菌門水平上的群落豐度Fig.3 Abundance graph of the soil fungal community of four types of Pinus koraiensis forests at phylum level

    在屬分類水平上,去除相對豐度小于0.02%的其他菌屬后,四種林型包含23屬土壤真菌(圖4),各種林型均含有大量未被鑒定的真菌,相對豐度在15.20%~29.22%。同時根據LEfSe分析的LDA分值(表4),在屬分類水平上,四種林型一共有19個差異真菌屬,其中椴樹紅松林土壤中顯著性差異的真菌屬最多(10個),紅松天然次生林中最少(1個)。

    2.5 四種林型紅松林土壤真菌群落β多樣性

    對四種林型土壤真菌群落在OTU水平上進行基于unweighted UniFrac距離算法的主坐標分析(圖5)顯示:椴樹紅松林的土壤真菌群落可以與其他三種林型距離較遠,可以分開。同時結合ANOSIM分析四種林型土壤真菌群落的相似性,結果顯示:在考慮真菌物種豐度和系統(tǒng)發(fā)育進化距離的情況下,OTU水平四種林型紅松林土壤真菌群落組成差異顯著(R=0.537,P=0.001),但兩種原始林(云冷杉紅松林和椴樹紅松林,P=0.064)、人工林和天然次生林之間(P=0.181)組成相近,差異不顯著。

    2.6 四種林型紅松林土壤真菌群落與土壤因子的相關性

    采用CCA分析探究影響四種林型土壤真菌群落組成的環(huán)境因子。選擇7個對微生物群落有顯著作用的土壤理化因子(pH、水分含量、土壤總孔隙度、土壤容重、總有機碳、全氮、全磷)結合OTUs表格進行分析。分析發(fā)現全氮、總有機碳、pH、水分含量和土壤總孔隙度5個理化因子對土壤真菌群落組成有顯著性影響(P<0.05)。同時根據各環(huán)境因子在第一軸的投影顯示,土壤全氮可能是影響四種林型土壤真菌群落組成的主要因子,其次為總有機碳(圖 6)。

    圖4 四種林型紅松林土壤真菌屬水平上的群落豐度Fig.4 Abundance graph of the soil fungal community of four types of Pinus koraiensis forests at the genus level

    表4 四種林型紅松林土壤顯著性差異真菌門和屬的LDA分值Table 4 LDA scores of fungal phyla and genera with significant difference in soil of four types of Pinus koraiensis forests

    圖5 四種林型紅松林土壤真菌群落基于unweighted UniFrac距離的主坐標分析Fig.5 PCoA analysis of soil fungal community in four types of Pinus koraiensis forests based on unweighted uniFrac distance

    圖6 四種紅松林土壤真菌群落組成與土壤理化因子間的典范對應分析(CCA)Fig.6 Canonical correspondence analysis (CCA) between soil physicochemical factors and soil fungal community composition of four types of Pinus koraiensis forests

    同時采用Spearman相關性系數分析不同土壤理化因子與豐度前20的土壤真菌屬相對含量之間的相關性,相關性熱圖見圖7。從圖7中可以看出,土壤pH與馬拉色氏霉菌屬的相對含量顯著正相關,與unclassified-o-Archaeorhizomyces顯著負相關。土壤水分含量與Sebacina和unclassifiedf-Thelephoraceae顯著正相關。土壤總孔隙度與紅菇屬和乳牛肝菌屬顯著正相關。土壤全磷與unclassified-o-Archaeorhizomyces顯著負相關。土壤總有機碳含量與四個菌屬顯著相關。土壤全氮與六個菌屬顯著相關。

    3 討 論

    圖7 四種紅松林土壤因子和真菌群落組成相關性熱圖Fig.7 Correlation heatmap of soil physicochemical factors and composition of soil fungal community of four types of Pinus koraiensis forests

    Illumina MiSeq高通量測序技術的發(fā)展提供了一個強大高效的平臺,可以迅速有效地分析微生物的群落結構組成[17]。有學者認為,微生物群落的整體組成在不同生境中的差異可能較大,但優(yōu)勢菌群基本相似。本研究也發(fā)現四種林型土壤真菌優(yōu)勢菌門為子囊菌門和擔子菌門,兩種類群的真菌含量超過70%,其中子囊菌門和擔子菌門在各林型中的相對組成比例都超過70%為優(yōu)勢菌門,但兩個菌門在四種林型中豐度各有差異,其中子囊菌門在紅松人工林中的相對豐度最高(64.82%),紅松天然次生林次之(58.00%),椴樹紅松林最低(35.09 %);擔子菌門在椴樹紅松林的相對豐度最高(45.65%),云冷杉紅松林次之(29.12%),紅松天然次生林最低(11.81%)。兩種優(yōu)勢菌門與以往的一些研究結果類似[13,18-19]。如喬沙沙等[18]利用Illumina高通量測序技術分析了關帝山龐泉溝自然保護區(qū)四種林型的5個土壤真菌群落,結果發(fā)現5個樣地中共有7個真菌門和322個真菌屬,其中子囊菌門和擔子菌門相對豐度最大。

    在屬分類水平上,四種林型紅松林土壤中均含有大量未鑒定的真菌菌屬,在已經鑒定的真菌菌屬中,按豐度高低依次為子囊菌門中未分類菌unclassified-p-Ascomycota、Leptodontidium、擬青霉屬(Simplicillium)、Sebacina、糞殼菌綱中未分類菌(unclassifiedc-Sordariomycetes)、紅菇屬(Russula)、unclassified-O-Archaeorhizomycetales、青霉屬(Penicillium)、隱球菌屬(Cryptococcus)、Archaeorhizomycetales、Pichia酵母屬(Pichia)、Telephora、乳牛肝菌屬(Suillus)、Geminibasidium、馬拉色氏霉菌屬(Malassezia)等。其中以Leptodontidium、擬青霉屬、Sebacina、紅菇屬、青霉屬和隱球菌屬為優(yōu)勢菌屬,這與一些森林土壤中鑒定的真菌優(yōu)勢菌屬有異同點。相同的是在一些森林土壤真菌研究中,青霉屬都為主要的優(yōu)勢菌屬,但含有其他不同的優(yōu)勢真菌屬。如趙文靜等[20]對額爾古納國家級自然保護區(qū)內四種林型土壤真菌多樣性研究發(fā)現,該地區(qū)土壤真菌孢霉屬(Mortierella)和青霉屬為各林型土壤真菌的優(yōu)勢菌屬。孫璐等[21]研究長白山北坡森林土壤低溫真菌的種群分布發(fā)現被孢霉屬、毛霉屬、青霉菌屬和彎頸霉屬為優(yōu)勢菌屬。此外,董愛榮等[8]采用培養(yǎng)法發(fā)現在椴樹紅松林、楓樺紅松林和紅松人工林土壤真菌中被孢霉屬、青霉屬、木霉屬及輪枝孢屬為優(yōu)勢菌屬。森林土壤真菌群落組成的差異,這既可能是分析鑒定方法的不同,也可能與不同土壤質地和植被類型相關。不同的森林類型由于植被組成不同、土壤養(yǎng)分[22-23]和土壤環(huán)境因子[13,23]存在差異,對森林土壤微生物群落產生影響[24-25],導致土壤微生物的群落結構發(fā)生變化[13,26]。本研究在四種林型土壤理化性質的測定結果中除兩種原始紅松林之間除水分含量和總孔隙度差異顯著外,多數因子差異不顯著,但其他林型之間多數土壤理化因子差異顯著。

    本研究四種林型土壤真菌α多樣性指數分析表明,原始林(云冷杉紅松林和椴樹紅松林)真菌群落豐富度指數(Ace和Chao1指數)高于成熟的紅松人工林和紅松天然次生林,該研究結果與其他以往的一些研究基本一致。如董愛榮等[8]采用稀釋平板法和植物殘渣法對小興安嶺涼水自然保護區(qū)椴樹紅松林、楓樺紅松林、白樺林、人工落葉松林與人工紅松林等林型的土壤真菌進行研究,發(fā)現土壤真菌同森林類型密切相關,椴樹紅松林和楓樺紅松林土壤真菌數量和種類明顯多于其他三種林型,這是由于椴樹紅松林和楓樺紅松林林分結構復雜,紅松占優(yōu)勢,闊葉樹種類較多,林下喬灌木、藤本植物以及草本植物種類多,植物多樣性遠比其他三種林型高[7]。這是因為森林凋落物和土壤中真菌和細菌群落的組成在很大程度上是由優(yōu)勢樹木決定的[27]。同樣郭彥萃等[28]采用BIOLOG微平板法,研究發(fā)現小興安嶺涼水國家自然保護區(qū)內的原始闊葉紅松林土壤微生物較原始針葉紅松林及人工林土壤微生物具有更豐富的多樣性。但本研究中紅松人工林真菌的豐富度指數高于天然次生林,這與一些研究結果有所不同。如Nie等[29]在亞熱帶地區(qū)天然松林與人工林細菌和真菌群落比較中,天然松林真菌群落的Ace和Chao1指數高于人工松林。由于森林土壤真菌群落組成還與森林年齡[30]和發(fā)育階段[31]有關,本研究中人工林選取的紅松年齡都在60年以上,天然次生林中紅松年齡在不足40年,這可能導致了人工林的豐富度指數高于次生林的原因。

    林型不同、樹種不同[32],土壤真菌所處的微環(huán)境[33]和可利用的凋落物資源的復雜程度也會不同[27],其真菌的群落結構也會有差異。植物通過影響土壤環(huán)境[34],進而影響土壤微生物的群落結構和多樣性[13,26]。本研究在四種林型土壤優(yōu)勢真菌屬與土壤理化因子的CCA分析結果中pH、水分含量、土壤總孔隙度、總有機碳和全氮5個理化因子對土壤真菌群落有顯著性影響,其中全氮是影響四種林型土壤真菌群落的主要因子,其次為土壤總有機碳含量。這與優(yōu)勢真菌屬與土壤理化因子的Spearman相關性分析結果中有所體現,土壤全氮含量與六個優(yōu)勢菌屬顯著相關(與紅菇屬、乳牛肝菌屬和unclassified-f-Thelephoraceae的相對豐度顯著正相關,而與馬拉色氏霉菌屬、青霉屬和擬青霉屬顯著負相關。其次是有機碳含量與四個優(yōu)勢菌屬顯著相關(有機碳含量與紅菇屬、乳牛肝菌屬和unclassified-f-Thelephoraceae的相對豐度呈顯著正相關,與馬拉色氏霉菌屬顯著負相關)。原始紅松林物理性質保持了較好的原始狀態(tài),含水量較高,土壤通水透氣狀態(tài)良好,土壤肥力較高,為真菌的生長創(chuàng)造了良好條件。如原始紅松林土壤中總有機碳、全氮顯著高于紅松天然次生林,同時影響微生物活性的總孔隙度和土壤水分含量也顯著高于紅松天然次生林。這可能也揭示了四種林型土壤真菌PCoA和ANOSIM分析結果:兩種原始紅松林的土壤真菌群落組成相近,差異不顯著,但原始林與人工林和天然次生林型之間差異顯著。本研究獲得的四種林型紅松林土壤真菌群落組成和多樣性特征,將為原始紅松林的保護和人工恢復提供依據,同時優(yōu)勢真菌屬與土壤土壤理化因子的相關性分析結果具有一定的實踐意義,這將為紅松林土壤真菌資源的開發(fā)利用提供依據。此另外在四種林型中檢測出大量未被鑒定的真菌ITS序列,這些序列還需要進一步的鑒定分析。

    4 結 論

    四種林型紅松林土壤真菌群落優(yōu)勢菌為子囊菌門和擔子菌門。在考慮真菌物種豐度和系統(tǒng)發(fā)育進化距離的情況下,四種林型紅松林土壤真菌群落組成差異顯著,但兩種原始紅松林和紅松人工林與天然次生林之間群落組成無顯著差異。原始紅松林土壤理化性質優(yōu)于紅松人工林和紅松天然次生林,導致土壤真菌群落豐富度高于紅松人工林和紅松天然次生林,其中土壤全氮、總有機碳、pH、水分含量和總孔隙度是顯著影響四種林型土壤真菌群落組成的環(huán)境因子。

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