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    牛肝菌多糖的提取及抗氧化性研究

    2019-10-29 00:40:40鄧加聰曾銹華郭婷婷王志輝
    中國釀造 2019年10期
    關(guān)鍵詞:牛肝菌清除率多糖

    鄧加聰,曾銹華,陳 婕,郭婷婷,王志輝,鄭 虹,2

    (1.福建師范大學(xué)福清分校 海洋與生化工程學(xué)院,福建 福清 350300;2.近海流域環(huán)境測控治理福建省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建 福清 350300;3.現(xiàn)代設(shè)施農(nóng)業(yè)福建省高等學(xué)校工程研究中心,福建 福清 350300)

    牛肝菌(Boletus)是一種藥、食兼用的野生珍稀食用菌。它富含多糖、多酚、多種維生素、氨基酸、蛋白質(zhì)等人體需要的營養(yǎng)物質(zhì),具有降血脂、抗腫瘤、改善免疫系統(tǒng)、抗氧化等功效[1-5]。

    當(dāng)前牛肝菌為我國菌類產(chǎn)品出口創(chuàng)匯作出了重要貢獻(xiàn),并且牛肝菌作為一種未被完全開發(fā)的高營養(yǎng)的美味食用菌類,對其藥用及營養(yǎng)價(jià)值的研究將對更深一步開發(fā)牛肝菌資源有著十分重要的理論意義。近年來,牛肝菌的研究主要集中在其的營養(yǎng)成分含量[6-8]、多糖的提取工藝[9-10]及抗氧化作用[11]。常用的提取多糖方法有熱水浸提法、微波提取法、泡沫分離法等[12-14]。目前報(bào)道較多的是熱水浸提法,微波提取牛肝菌多糖的相關(guān)研究鮮見報(bào)道。

    本試驗(yàn)通過單因素和正交試驗(yàn)優(yōu)化云南牛肝菌多糖提取工藝,并利用1,1二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)法和羥基自由基(·OH)清除能力測定法對其抗氧化性進(jìn)行了測定[15-16]。以期為牛肝菌食物資源的開發(fā)和綜合利用提供參考依據(jù)。

    1 材料與試劑

    1.1 材料與試劑

    牛肝菌粉末:云南;無水氯化鈣、乙醇、葡萄糖、苯酚(重蒸餾)、硫酸、3,5-二硝基水楊酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS)、DPPH(均為分析純):國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    KQ-250E超聲波清洗器:昆山市超聲儀有限公司;TDL-4低速離心機(jī):福州精儀儀器有限公司;GZX-GF101-3-BS-Ⅱ電熱恒溫鼓風(fēng)干燥機(jī):上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司;T22SP分光光度計(jì):上海棱光儀器有限公司;BSA224S電子天平:賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司。

    1.3 試驗(yàn)方法

    1.3.1 牛肝菌粗多糖的提取方法

    稱取一定量牛肝菌子實(shí)體粉末,以水為提取液,按一定的料液比,在一定溫度條件下超聲一定時(shí)間后,4 000 r/min離心10 min,收集上清液;上清液用氯化鈣法去除蛋白[17-18],4 000 r/min離心10 min,收集上清液;上清液進(jìn)行旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至原來體積的1/3,加入4倍體積體積分?jǐn)?shù)95%的乙醇過夜沉淀;4 000 r/min離心10 min,收集沉淀,沉淀于60 ℃干燥得牛肝菌粗多糖。

    1.3.2 牛肝菌粗多糖提取工藝優(yōu)化單因素試驗(yàn)

    料液比對牛肝菌粗多糖提取的影響:稱取2 g牛肝菌粉末,控制超聲時(shí)間為1 h、超聲溫度為60 ℃、超聲波功率為400 W,分別在不同料液比(1∶15、1∶20、1∶25、1∶30、1∶35(g∶mL))條件下進(jìn)行超聲波浸提試驗(yàn),考察牛肝菌多糖在不同料液比條件的提取效果。

    超聲時(shí)間對牛肝菌粗多糖提取的影響:稱取牛肝菌粉末2 g,料液比為1∶20(g∶mL),在超聲溫度為60 ℃、超聲功率為400 W的條件下,超聲不同時(shí)間(0.5 h、1.0 h、1.5 h、2.0 h、2.5 h),考察牛肝菌多糖在不同超聲時(shí)間下的提取效果。

    超聲溫度對牛肝菌粗多糖提取的影響:稱取牛肝菌粉末2 g,料液比為1∶20(g∶mL),超聲時(shí)間為0.5 h,超聲功率為400 W的條件下,在不同超聲溫度(40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃、80 ℃)條件下進(jìn)行超聲,考察牛肝菌多糖在不同超聲溫度條件下的提取效果。

    1.3.3 牛肝菌粗多糖提取工藝優(yōu)化正交試驗(yàn)

    在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取料液比、超聲時(shí)間和超聲溫度3個(gè)因素,每個(gè)因素3個(gè)水平進(jìn)行L9(33)正交試驗(yàn),優(yōu)化超聲浸提過程的工藝條件。正交試驗(yàn)因素與水平設(shè)計(jì)見表1。

    表1 牛肝菌粗多糖提取條件優(yōu)化正交試驗(yàn)因素與水平Table 1 Factors and levels of orthogonal tests for crude polysaccharide extraction conditions optimization from Boletus

    1.3.4 測定方法

    牛肝菌多糖含量:采用苯酚-硫酸法[19-20]進(jìn)行測定。多糖得率計(jì)算公式如下:

    1.3.5 牛肝菌粗多糖抗氧化性的測定

    (1)DPPH自由基(DPPH·)清除能力:參照參考文獻(xiàn)[21-22]的方法進(jìn)行測定。

    總之,口語交際活動(dòng)都發(fā)生在一定的語境中。在教學(xué)中,我們要利用一切可以利用的資源,創(chuàng)設(shè)與教學(xué)內(nèi)容相關(guān)的語境,這樣更容易激發(fā)學(xué)生內(nèi)在的動(dòng)力,提高學(xué)習(xí)效果。但也有一點(diǎn)是值得注意的,語境的創(chuàng)設(shè)應(yīng)盡量避免人為創(chuàng)設(shè)帶來的造作的不真實(shí)感,真正達(dá)到較好的教學(xué)效果。

    取不同質(zhì)量濃度(0.2 mg/mL、0.4 mg/mL、0.6 mg/mL、0.8 mg/mL、1.0 mg/mL、1.2 mg/mL)的牛肝菌多糖溶液2 mL;添加2 mL DPPH溶液(0.2 mmol/L),振蕩搖勻后,暗處、室溫條件下靜置30 min,在波長517 nm處測其吸光度值(A1),同時(shí)以2 mL不同濃度的多糖與2 mL無水乙醇混勻后,在波長517 nm處測得吸光度值(A2);以無水乙醇為空白,測得吸光度值(A0);以不同質(zhì)量濃度(0.02 mg/mL、0.04 mg/mL、0.06 mg/mL、0.08 mg/mL、0.1 mg/mL、0.15 mg/mL、0.2 mg/mL)的抗壞血酸(vitamin C,VC)水溶液為對照。每個(gè)樣品溶液進(jìn)行3個(gè)平行。清除率按公式(1)計(jì)算。

    (2)·OH清除率:參照參考文獻(xiàn)[23-24]的方法進(jìn)行測定。

    取不同質(zhì)量濃度(2mg/mL、4mg/mL、6mg/mL、8mg/mL、10 mg/mL)的牛肝菌多糖溶液1 mL于試管中,加入1 mL硫酸亞鐵溶液(9 mmol/L)和1 mL水楊酸乙醇溶液(9 mmol/L),再加入1 mL的H2O2溶液(8.8 mmol/L),37 ℃水浴中反應(yīng)30 min后,6 000 r/min離心10 min,在波長510 nm處測定吸光度值(A1),同時(shí)以蒸餾水代替H2O2溶液,其他條件不變,測定吸光度值(A2);以不加多糖的蒸餾水為空白組,測定吸光度值(A0);以不同質(zhì)量濃度(0.05 mg/mL、0.10 mg/mL、0.15mg/mL、0.20mg/mL、0.25mg/mL、0.30mg/mL、0.40mg/mL)的抗壞血酸(VC)水溶液為對照。每個(gè)樣品溶液進(jìn)行3個(gè)平行。清除率按公式(2)計(jì)算。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 牛肝菌粗多糖提取工藝單因素試驗(yàn)結(jié)果

    2.1.1 料液比對牛肝菌多糖提取效果的影響

    圖1 料液比對牛肝菌多糖得率的影響Fig.1 Effect of material to liquid ratio on polysaccharide yield from Boletus

    由圖1可見,牛肝菌多糖得率隨著料液比中用水量的增大而逐漸增加,當(dāng)料液比為1∶20(g∶mL)時(shí),多糖得率最高,為21%;而料液比為1∶25~1∶35(g∶mL)時(shí),多糖得率反而有所降低,說明適宜的料液比有利于多糖的浸出,料液比過低,多糖浸出不完全,導(dǎo)致多糖得率較低,料液比過高,不利于后期的蒸餾濃縮。因此,選擇最適料液比為1∶20(g∶mL)。

    2.1.2 超聲時(shí)間對牛肝菌多糖提取效果的影響

    圖2 超聲時(shí)間對牛肝菌多糖得率的影響Fig.2 Effect of ultrasonic time on polysaccharide yield from Boletus

    由圖2可見,牛肝菌多糖得率隨著超聲時(shí)間的延長呈先增后降的趨勢。在超聲時(shí)間為0.5~2.0 h時(shí),隨著超聲時(shí)間的延長,多糖得率逐漸增大;當(dāng)超聲時(shí)間為2.0 h時(shí),多糖得率達(dá)到最大值,為19.76%;之后,牛肝菌多糖得率隨著超聲時(shí)間的延長逐漸降低。這可能是由于超聲波的機(jī)械剪切作用過度,導(dǎo)致部分多糖被降解,從而使多糖得率下降[11]。因此,選擇最適超聲時(shí)間為2.0 h。

    2.1.3 超聲溫度對牛肝菌多糖提取效果的影響

    圖3 超聲溫度對多糖得率的影響Fig.3 Effect of ultrasonic temperature on polysaccharide yield from Boletus

    2.2 牛肝菌多糖提取的正交設(shè)計(jì)試驗(yàn)

    表2 牛肝菌粗多糖提取條件優(yōu)化正交試驗(yàn)結(jié)果與分析Table 2 Results and analysis of orthogonal tests for extraction conditions optimization of polysaccharide from Boletus

    由表2可知,牛肝菌粗多糖得率受各因素影響的次序?yàn)锳>B>C,即料液比對粗多糖得率的影響最大,超聲溫度次之,超聲時(shí)間最小。最佳工藝組合為A1B2C2,即料液比為1∶15(g∶mL),超聲時(shí)間為2 h,超聲溫度為60 ℃,在此條件下,牛肝菌的多糖得率為41.76%。

    2.3 牛肝菌粗多糖對DPPH·和·OH的清除作用

    圖4 牛肝菌粗多糖對DPPH·(a)和·OH(b)的清除效果Fig.4 Scavenging effect of crude polysaccharides of Boletus on DPPH·(a) and·OH (b)

    由圖4(a)可見,VC和牛肝菌多糖的濃度對DPPH·清除率具有顯著影響。當(dāng)VC質(zhì)量濃度為0.2 mg/mL時(shí),其DPPH·清除率已達(dá)100%;與VC相比,牛肝菌多糖質(zhì)量濃度為0.752 mg/mL時(shí),DPPH·清除率為50%;當(dāng)多糖質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL時(shí),多糖對DPPH·的清除率可達(dá)71.19%。多糖對DPPH·的半抑制濃度(half maximal inhibition concentration,IC50)為0.75mg/mL。

    由圖4(b)可見,VC對·OH具有很強(qiáng)的清除能力。當(dāng)VC質(zhì)量濃度為2.0 mg/mL時(shí),清除效果已經(jīng)達(dá)到100%。與VC相比,牛肝菌多糖對·OH清除作用較差。當(dāng)牛肝菌多糖質(zhì)量濃度為5.12 mg/mL時(shí),多糖對·OH的清除率為50%;當(dāng)多糖質(zhì)量濃度為10 mg/mL時(shí),多糖對·OH的清除率可達(dá)80.69%。多糖對·OH的IC50值為5.12mg/mL。

    3 結(jié)論

    在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,通過正交試驗(yàn),獲得超聲波浸提牛肝菌多糖的最佳工藝組合為A1B2C2,即料液比為1∶15(g∶mL),超聲時(shí)間為2 h,超聲溫度為60 ℃,在此條件下,牛肝菌的多糖得率為41.76%。與VC相比,多糖對DPPH·和·OH的清除能力存在一定的差異,多糖對DPPH·和·OH的IC50值分別為0.75mg/mL和5.12mg/mL,當(dāng)多糖質(zhì)量濃度分別為1.00 mg/mL和10.00 mg/mL時(shí),多糖對DPPH·和·OH的清除率分別為71.19%和80.69%。

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