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    LPS介導(dǎo)TLR4/NF-κB信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)對(duì)小鼠成骨細(xì)胞活性和凋亡的影響

    2019-01-02 06:11:40劉永光
    西南國防醫(yī)藥 2018年12期
    關(guān)鍵詞:骨細(xì)胞成骨細(xì)胞活化

    徐 頔,劉永光

    細(xì)菌脂多糖(LPS)系革蘭陰性厭氧菌內(nèi)毒素重要構(gòu)成部分。早期研究發(fā)現(xiàn),慢性根尖周炎與牙周炎時(shí),LPS可刺激細(xì)胞釋放炎性因子,促進(jìn)淋巴細(xì)胞、單核細(xì)胞轉(zhuǎn)化為破骨細(xì)胞前體,促進(jìn)成熟破骨細(xì)胞存活,影響骨吸收、骨沉積平衡,引起骨喪失[1]。也有研究發(fā)現(xiàn),LPS可直接作用于成骨細(xì)胞,釋放大量破骨細(xì)胞核因子κB受體活化基因,促進(jìn)破骨細(xì)胞分化及成熟,強(qiáng)化破骨活動(dòng)[2]。Toll樣受體 4(TLR4)是參與機(jī)體非特異性免疫調(diào)節(jié)的重要蛋白分子,是機(jī)體抵御感染的重要屏障,TLR4與其結(jié)合可上調(diào)核轉(zhuǎn)錄因子(NF-κB)表達(dá),激活免疫反應(yīng)基因,促進(jìn)炎性因子、粘附因子及趨化因子釋放,直接影響成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞與淋巴細(xì)胞病理過程[3]。Jiang等[4]發(fā)現(xiàn),LPS可介導(dǎo)TLR4傳遞信號(hào)進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),引起NF-κB活化,導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞自主遺傳特點(diǎn)改變,導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞增生、侵襲及轉(zhuǎn)移。但對(duì)LPS介導(dǎo)TLR4/NF-κB信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路對(duì)成骨細(xì)胞的影響,尚未見報(bào)道。為探討LPS介導(dǎo)TLR4/NF-κB信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路對(duì)成骨細(xì)胞活性和凋亡的影響,本研究以小鼠成骨細(xì)胞為研究對(duì)象,旨在明確LPS介導(dǎo)TLR4/NF-κB通路轉(zhuǎn)導(dǎo)對(duì)成骨細(xì)胞分化的影響,為感染所致骨折不愈合提供分子生物學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞、主要試劑與儀器 小鼠前體成骨細(xì)胞株C3T3-E1(北京協(xié)和醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)細(xì)胞中心),胎牛血清、DEME/F12培養(yǎng)基、α-MEM培養(yǎng)基(美國Gibco公司),噻唑藍(lán)(MTT)、胰蛋白酶、LPS、Annexin V-FITC細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(美國Sigma公司),Trizol Reagent試劑(美國invitrogen公司),流式檢測(cè)試劑盒(美國BD公司),RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、qRT-PCR試劑盒(大連寶生物工程有限公司),DNA引物設(shè)計(jì)及合成(美國Bid-Rad公司),GAPDH(北京Sinobio公司);CO2培養(yǎng)箱(日本Sanyo公司),倒置熒光顯微鏡(日本Olympus公司),凝膠成像分析系統(tǒng)(美國Bio-BAD公司),F(xiàn)ACS Calibur型流式細(xì)胞儀(美國BD公司),PTC-150 PCR 儀(美國 MJ.Research Inc.),全自動(dòng)定量繪圖酶標(biāo)儀(美國Bid-Rad公司)。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng)及分組 小鼠前體成骨細(xì)胞株MC3T3-E1接種于含10%胎牛血清+1%青-鏈霉素的DEME/F12的96孔板內(nèi),置于CO2培養(yǎng)箱內(nèi),37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng),每3 d換液1次。當(dāng)培養(yǎng)瓶內(nèi)細(xì)胞融合>80%時(shí),按1∶2比例進(jìn)行傳代。取第3代對(duì)數(shù)生長期細(xì)胞,隨機(jī)分為對(duì)照組與LPS組,對(duì)照組不予LPS刺激,LPS組待細(xì)胞貼壁生長達(dá)50%~60%時(shí),添加 10 mmol/L LPS,分別再培養(yǎng) 4、8、12、24 h。

    1.3 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察 取上述兩組培養(yǎng)24 h后的細(xì)胞于倒置顯微鏡下,觀察細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化。

    1.4 TLR4/NF-κB mRNA檢測(cè) 采用反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)法(RT-PCR)法測(cè)定 TLR4/NF-κB mRNA表達(dá),收集 LPS 組培養(yǎng) 4、8、12、24 h(對(duì)照組僅取24 h)的細(xì)胞,加入Trizol試劑裂解,提取總RNA,紫外分光光度計(jì)鑒定RNA純度與濃度,反應(yīng)體系:目的基因上下游引物各1.0 μl+內(nèi)參引物上下游引物各 1.0 μl+cDNA 1.0 μl+MgCl2 10 μl+dNTP 5 μl+雙蒸水 8.0 μl。反轉(zhuǎn)錄條件:50 ℃ 10 min,42 ℃ 30 min,95℃ 5 min。反應(yīng)條件:預(yù)變性50℃ 30 min,94℃2 min,94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 60 s,30 次循環(huán),72℃延伸10 min,PCR產(chǎn)物置于1.5%瓊脂糖凝膠,染色后采用電泳凝膠成像分析儀及配套分析軟件進(jìn)行分析,計(jì)算目的條帶基因相對(duì)表達(dá)量。

    1.5 成骨細(xì)胞活性測(cè)定 采用MTT比色法測(cè)定MC3T3-E1細(xì)胞活性。將對(duì)照組與LPS組成骨細(xì)胞放于 DEME/F12培養(yǎng)液內(nèi)培養(yǎng) 24 h,加入 20 μl 5 mg/ml的MTT,37℃培養(yǎng)4 h,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,移除上清,加入100 μl二甲基亞砜,搖床震蕩10 min,溶解結(jié)晶,培養(yǎng)板置于37℃培養(yǎng),氣泡溶解后,采用全自動(dòng)定量繪圖酶標(biāo)儀(570 nm波長)測(cè)定各孔吸光度值,每孔測(cè)定3次,取均值,以A570值表示細(xì)胞活性。

    1.6 成骨細(xì)胞凋亡測(cè)定 采用Annexin V-FITC細(xì)胞凋亡測(cè)定試劑盒測(cè)定細(xì)胞凋亡率,將照組與LPS組培養(yǎng)不同時(shí)間細(xì)胞均以2000 r/min離心5 min,PBS洗滌2次,將細(xì)胞懸液以1×105/ml濃度接種于細(xì)胞培養(yǎng)板,37℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng),1 d后收集細(xì)胞, 加入 5 μl Annexin V-FTTC 及 10 μl碘化丙啶(PI)Staining Solutio,混勻,避 光 、室溫反 應(yīng) 10~15 min,在1 h內(nèi)采用流式細(xì)胞儀(EX=488 nm,Em=530 nm)測(cè)定細(xì)胞凋亡情況。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件處理數(shù)據(jù),計(jì)量資料以±s表示,兩組組間比較進(jìn)行t檢驗(yàn),多組比較進(jìn)行方差分析,組內(nèi)比較行LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 LPS對(duì)成骨細(xì)胞形態(tài)的影響 對(duì)照組培養(yǎng)24 h后,鏡下見細(xì)胞呈多角形,邊界清晰,排列緊密,細(xì)胞密度正常(圖1);LPS組經(jīng)LPS刺激24 h后,細(xì)胞數(shù)目降低,細(xì)胞活力下降,細(xì)胞質(zhì)收縮,細(xì)胞間隙變大,細(xì)胞密度降低(圖2)。

    圖1 對(duì)照組培養(yǎng)24 h后細(xì)胞形態(tài)

    圖2 LPS組LPS刺激24 h后細(xì)胞形態(tài)

    2.2 兩組TLR4和NF-κB mRNA相對(duì)表達(dá)量比較

    LPS組培養(yǎng)不同時(shí)間時(shí),其 TLR4和 NF-κB mRNA相對(duì)表達(dá)量均高于對(duì)照組(P<0.05),且隨培養(yǎng)時(shí)間的延長,TLR4和NF-κB mRNA相對(duì)表達(dá)量逐漸增多(P< 0.05,表 1)。

    表1 兩組TLR4和NF-κBmRNA相對(duì)表達(dá)量比較(n=3)

    2.3 兩組成骨細(xì)胞活性及凋亡率比較 LPS組培養(yǎng)4~24 h時(shí),其成骨細(xì)胞活性均低于對(duì)照組,細(xì)胞凋亡率高于對(duì)照組(P<0.05),且隨培養(yǎng)時(shí)間的延長,LPS組成骨細(xì)胞活性逐漸降低,而細(xì)胞凋亡率逐漸升高(P<0.05表2)。

    表2 兩組成骨細(xì)胞活性及凋亡率比較(n=3)

    3 討論

    一般開放性骨折患者常伴細(xì)菌感染,而細(xì)菌感染則為引起骨折延遲愈合或不愈合的重要原因[5]。骨折愈合系成骨細(xì)胞形成骨質(zhì)并發(fā)生鈣化的過程,而細(xì)菌感染則可能引起局部炎癥因子釋放,導(dǎo)致免疫紊亂,引起成骨細(xì)胞凋亡,造成骨折愈合困難[6]。LPS為細(xì)菌內(nèi)毒素關(guān)鍵成分,包含非特異性多糖、特異性多糖及類脂A,而類脂A則為關(guān)鍵毒性成分,可引起多種器官損傷或衰竭。魏玉香等[7]研究發(fā)現(xiàn),LPS是細(xì)菌主要致熱源,可降低成骨細(xì)胞活性,導(dǎo)致血管內(nèi)皮細(xì)胞凋亡。但對(duì)LPS引起炎癥反應(yīng)的機(jī)制尚未明確。炎癥反應(yīng)為機(jī)體對(duì)外界損傷的正常防御機(jī)制,但骨折后大量炎癥因子釋放可能導(dǎo)致成骨細(xì)胞無法成骨,破骨細(xì)胞活化,影響骨折愈合。研究報(bào)道,炎癥所引起骨折不愈合主要與LPS引起活化因子配基表達(dá)上調(diào),誘導(dǎo)成骨細(xì)胞分泌破骨細(xì)胞激活因子有關(guān),導(dǎo)致成骨細(xì)胞活性降低,促進(jìn)其凋亡[8]。但對(duì)LPS介導(dǎo)成骨細(xì)胞信號(hào)傳遞的確切機(jī)制尚未明確。近期有研究者提出,LPS可能通過引起NF-κB因子活化,影響骨重建通路[9]。

    TLR4是參與機(jī)體非特異性免疫的重要蛋白分子,同時(shí)可介導(dǎo)微生物感染所引起的機(jī)體炎癥反應(yīng),通過Toll樣信號(hào)傳導(dǎo),導(dǎo)致NF-κB聚集于Toll受體結(jié)構(gòu)域,并產(chǎn)生磷酸化反應(yīng),與腫瘤壞死因子相關(guān)受體結(jié)合,激活下游信號(hào),引起靶基因表達(dá),介導(dǎo)炎癥反應(yīng)[10]。NF-κB則為TLR4信號(hào)通路下游重要介質(zhì),TLR4激活可引起NF-κB進(jìn)入細(xì)胞核、靶基因特點(diǎn)序列,促進(jìn)炎癥因子釋放。當(dāng)細(xì)胞所釋放內(nèi)毒素與細(xì)胞外受體結(jié)構(gòu)域結(jié)合后,可激活炎癥因子,導(dǎo)致NF-κB因子活化,在諸多感染誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)疾病中均有重要作用[11]。Guijarro-Munoz等[12]發(fā)現(xiàn),TLR-4是引起肺栓塞、心肌梗死患者全身感染的主要因子。本研究發(fā)現(xiàn),LPS作用后,成骨細(xì)胞TLR-4和NF-κB mRNA表達(dá)水平較未加用LPS干擾的對(duì)照組高,同時(shí)隨作用時(shí)間的延長,TLR-4和NF-κB mRNA水平逐漸增加,呈時(shí)間依賴性特點(diǎn),表明LPS可介導(dǎo)TLR4/NF-κB信號(hào)通路活化,而該通路活化后,可產(chǎn)生甲基化、磷酸化、乙?;磻?yīng),促進(jìn)炎癥因子表達(dá)。

    同時(shí)進(jìn)行成骨細(xì)胞活性及凋亡進(jìn)行檢測(cè)發(fā)現(xiàn),LPS干擾不同時(shí)間后,小鼠成骨細(xì)胞MC3T3-E1細(xì)胞活性逐漸降低,細(xì)胞凋亡率逐漸上升,呈明顯時(shí)間依賴性特點(diǎn),與對(duì)照組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示LPS是引起小鼠成骨細(xì)胞活性降低,促進(jìn)細(xì)胞凋亡的主要原因,分析其機(jī)制可能為LPS可介導(dǎo)TLR4/NF-κB信號(hào)通路活化, 引起 TLR4和 NF-κB mRNA表達(dá)上調(diào),在細(xì)胞內(nèi)可與TLR4受體結(jié)構(gòu)域結(jié)合,啟動(dòng)炎癥因子及輔助刺激因子轉(zhuǎn)錄、翻譯,引起炎癥因子表達(dá)上調(diào),破壞成骨細(xì)胞生成及修復(fù),引起細(xì)胞凋亡。

    綜上所述,LPS可介導(dǎo) TLR4/NF-κB信號(hào)通路活化,促進(jìn)TLR4和NF-κB mRNA表達(dá),引起炎癥因子表達(dá)上調(diào),降低成骨細(xì)胞活性,促進(jìn)成骨細(xì)胞凋亡,影響骨重建。

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