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    一種快速檢測(cè)單增李斯特菌的雙重PCR方法

    2019-10-21 18:18:54王昊宇

    王昊宇

    【摘 要】探討檢測(cè)新鮮海螺樣品中單增李斯特菌的雙重PCR快速檢測(cè)方法。基于單增李斯特菌hlyA基因和李斯特菌屬的16sRNA基因分別合成兩對(duì)引物,對(duì)影響PCR的主要因素進(jìn)行優(yōu)化,最終確定同時(shí)檢測(cè)單增李斯特菌兩個(gè)特異性基因的雙重PCR最佳反應(yīng)體系及條件,該方法對(duì)于純培養(yǎng)物的最低檢出限為102CFU/mL,模擬污染海螺樣品的檢測(cè)限為8CFU/g。

    【關(guān)鍵詞】單增李斯特菌;雙重PCR;海螺樣品

    【中圖分類號(hào)】R197 【文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼】A 【文章編號(hào)】1004-7484(2019)01-0225-02

    本工作將單增李斯特菌最重要的毒力因子-編碼溶血素的hlyA基因,與李斯特菌屬16sRNA基因同時(shí)作為單增李斯特菌的檢測(cè)指標(biāo),將雙重PCR方法與選擇性增菌法相結(jié)合,旨在建立一種快速靈敏檢測(cè)單增李斯特菌的雙重PCR方法。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌種

    單增李斯特菌標(biāo)準(zhǔn)株由省疾病預(yù)防控制中心提供;大腸桿菌(Escherichia coil)、沙門氏菌(Salmonella)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)、產(chǎn)氣桿菌(Aerobacter aerogenes)和傷寒桿菌(Salmonella typhi)為本實(shí)驗(yàn)室保存菌株。

    1.1.2 試劑

    李斯特氏菌顯色培養(yǎng)基、單增李斯特菌成套生化鑒定管、胰酪胨大豆酵母浸膏瓊脂(TSA-YE)、李氏增菌肉湯LB1、萘啶酮酸、吖啶黃素 青島高科園海博生物有限公司;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒、DNA Marker、溶菌酶、蛋白酶K、RNaseA以及PCR相關(guān)試劑 北京天根生化有限公司。

    1.1.3 引物序列

    根據(jù)文獻(xiàn)[1]以單增李斯特菌hlyA基因和李斯特菌屬的16sRNA基因作為靶基因分別合成兩對(duì)特異性引物,所用引物序列見表一,引物由北京六合華大基因科技股份有限公司合成。

    1.1.4 儀器

    VersaDoc凝膠成像儀 美國(guó)伯樂;PCR擴(kuò)增儀 美國(guó)伯樂;JM-250電泳儀 大連捷邁科貿(mào)有限公司;D-37520高速冷凍離心機(jī) 德國(guó)Thermo公司。

    1.2 方法

    1.2.1 細(xì)菌的活化培養(yǎng)

    取-80℃、25%甘油凍存的菌種,復(fù)蘇培養(yǎng)后,分別劃線于細(xì)菌培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)24h,連續(xù)活化兩次,將單菌落接種于普通肉湯培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)18h。

    1.2.2 細(xì)菌基因組DNA的制備

    取1ml菌液按照細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒說明書步驟進(jìn)行DNA提取,并溶于100 μL TE緩沖液中,于-20℃下保存。

    1.2.3 雙重PCR的體系建立及優(yōu)化

    雙重PCR擴(kuò)增體系:10×Buffer(Mg2+)5?L 、dNTPs(2.5mmol/L)4?L、兩對(duì)10mmol/L的上下游引物各1?L、 DNA模板5?L,Taq酶(2.5U/?L)0.8?L ,用ddH2O補(bǔ)足至50?L。

    雙重PCR反應(yīng)條件:采用熱啟動(dòng)。95℃預(yù)變性3min ,94℃變性30s,56℃退火30s,72℃延伸80s,共30個(gè)循環(huán),72℃終延伸10min。

    在上述反應(yīng)體系和條件下,對(duì)退火溫度進(jìn)行優(yōu)化,分別設(shè)定退火溫度為:55℃、55.8℃、57.1℃、58.9℃、61.4℃、63.3℃,通過對(duì)電泳結(jié)果的分析,最終確定最佳退火溫度。

    1.2.4 雙重PCR特異性及靈敏度檢測(cè)

    特異性檢測(cè):分別提取單增李斯特標(biāo)準(zhǔn)株、大腸桿菌、沙門氏菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、產(chǎn)氣桿菌及傷寒桿菌模板DNA,在最佳雙重PCR體系及條件下擴(kuò)增,檢測(cè)引物特異性。

    靈敏度檢測(cè):將過夜培養(yǎng)的單增李斯特菌菌液用無菌的生理鹽水10倍梯度稀釋,使目標(biāo)菌濃度依次為:106CFU/mL 、105CFU/mL 、104CFU/mL 、103CFU/mL 、102CFU/mL 、10CFU/mL。分別提取不同濃度菌液的模板DNA,在最佳雙重PCR體系及條件下擴(kuò)增,確定雙重PCR的檢測(cè)靈敏度。

    1.2.5 人工污染海螺樣品的制備及檢出限檢測(cè)

    無菌操作取一只海螺的軟組織及體液(陰性)共12.5g,加入李氏增菌肉湯LB1(含抑菌劑)中,充分搖勻制成均質(zhì)液,用無菌生理鹽水10倍梯度稀釋初始濃度為106CFU/mL的單增李斯特菌菌液,取1mL不同稀釋度的菌液分別加入待檢試樣的均質(zhì)液中,30℃震蕩培養(yǎng)24h,分別取1mL增菌液按照方法1.2.2提取模板DNA,進(jìn)行雙重PCR檢測(cè),確定人工污染海螺樣品的最低檢出限。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同退火溫度下雙重PCR擴(kuò)增結(jié)果

    對(duì)雙重PCR的退火溫度進(jìn)行優(yōu)化(圖一),結(jié)果可見兩條帶在一定溫度范圍內(nèi)均能有效擴(kuò)增, 702bp 條帶在相同退火溫度下的擴(kuò)增效果均較938bp條帶明顯,其中在退火溫度為55.8℃和58.9℃時(shí),兩特異條帶同時(shí)擴(kuò)增清晰,考慮到降低退火溫度可以提高擴(kuò)增效率,最終選定55.8℃為最佳退火溫度,從而確定雙重PCR最佳反應(yīng)條件。

    2.2 特異性及靈敏度檢測(cè)結(jié)果

    在雙重PCR最佳反應(yīng)體系及條件下,應(yīng)用引物1及引物2對(duì)不同細(xì)菌的模板DNA進(jìn)行雙重PCR擴(kuò)增。特異性檢測(cè)結(jié)果(圖二)顯示:只有單增李斯特菌標(biāo)準(zhǔn)株可擴(kuò)增出938bp和702bp二條帶,而其他6株致病菌除引物二聚體外均未出現(xiàn)任何擴(kuò)增條帶,該雙重PCR特異性良好。

    將初始濃度分別為106CFU/mL、105CFU/mL、104CFU/mL、103CFU/mL、102CFU/mL、10CFU/mL的單增李斯特菌菌液的DNA作為雙重PCR反應(yīng)模板,確定雙重PCR檢測(cè)純菌液的靈敏度,由圖三可知:兩特異條帶同時(shí)檢出的最低菌液濃度為102CFU/mL,其靈敏度能夠滿足樣品選擇性增菌后的檢測(cè)要求。

    2.3人工污染海螺樣品的檢出限

    單增李斯特菌菌液初始濃度為106CFU/mL,取不同稀釋濃度菌液1mL,污染12.5g海螺陰性樣品,30℃ LB1震蕩培養(yǎng)24h,分別提取增菌液DNA進(jìn)行雙重PCR檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果如圖四所示,當(dāng)濃度為102CFU/mL的菌液污染海螺樣模板品仍可檢出,經(jīng)計(jì)算,此雙重PCR檢測(cè)模擬污染海螺樣品檢出限為8CFU/g。

    3 結(jié)論

    本工作所采用的檢測(cè)水產(chǎn)品中單增李斯特菌的雙重PCR快速方法,菌液靈敏度為102CFU/mL,模擬污染海螺樣品檢出限為8CFU/g,全程檢測(cè)時(shí)間包括增菌時(shí)間在內(nèi)僅27小時(shí),與國(guó)標(biāo)方法相比省時(shí)省力且經(jīng)濟(jì),可快速檢測(cè)出實(shí)際樣品中的陽性樣品與疑似陽性樣品,可作為海螺樣品中單增李斯特菌的初步鑒定方法。

    參考文獻(xiàn)

    [1]王海艷,劉中學(xué),等.食品中單增李斯特菌PCR檢測(cè)方法所用引物的特異性比較[J].檢驗(yàn)檢疫科學(xué),2007(6):3-8.(J)

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