張大革 黃漫青 高秀芝 張紅星 徐文生 *
(1農(nóng)產(chǎn)品有害微生物及農(nóng)殘安全檢測與控制北京市重點實驗室 北京 102206
2北京農(nóng)學院食品科學與工程學院 北京 102206)
中式發(fā)酵香腸又稱臘腸,在我國具有悠久的制作歷史,其制法約始創(chuàng)于南北朝,始見載于《齊民要術》。中式發(fā)酵香腸由于具有易于加工、口感鮮美、香味濃郁、存貯期長等特點而深受國人喜愛,是我國傳統(tǒng)發(fā)酵肉制品的典型代表。我國不同地域飲食文化的差異,造就不同地域生產(chǎn)的香腸各有特色,然而制作方法大同小異,主要是在臘月以肉類為原料切成丁,配以糖、香辛料等輔料,灌入動物腸衣,經(jīng)自然發(fā)酵、成熟干制而成的具有中國特色的肉制品。目前中式發(fā)酵香腸生產(chǎn)主要以傳統(tǒng)自然發(fā)酵為主,存在生產(chǎn)受季節(jié)限制、產(chǎn)品質量不穩(wěn)定等問題,嚴重制約了中式發(fā)酵香腸的發(fā)展。要拓展中式發(fā)酵香腸的發(fā)展空間,需要對傳統(tǒng)的生產(chǎn)工藝進行現(xiàn)代化改良。
自Morris于1970年代開始研究發(fā)酵香腸微生物群落以來,科學家一直致力于揭示發(fā)酵香腸制備過程中微生物群落的發(fā)展規(guī)律。研究表明:乳酸菌對發(fā)酵香腸發(fā)酵、后熟和風味形成等起著主導作用[1];而且發(fā)酵香腸中微生物群落的發(fā)展也與香腸的加工工藝密切相關,如在加工工藝時間較短的香腸中常分離出乳桿菌;而在后熟時間長的發(fā)酵香腸中常分離出微球菌[2]等。植物乳桿菌、清酒乳桿菌等是常見于自然發(fā)酵的香腸中的乳酸菌[3],也常作為香腸發(fā)酵劑應用于發(fā)酵香腸的生產(chǎn)[4]。這些微生物對發(fā)酵香腸中乙酸、乙醇、丙酮酸等及其支鏈氨基酸降解產(chǎn)物如3-甲基丁醇、2-和3-甲基丁醇、3-甲基丁酸等發(fā)酵香腸典型風味成分的形成具有重要意義[2,5]。
植物乳桿菌是食品、醫(yī)藥工業(yè)重要的微生物[6-7],也是中式自然發(fā)酵香腸中最常見的微生物之一,對中式發(fā)酵香腸發(fā)酵和風味物質形成具有重要作用。發(fā)酵香腸中的乳酸菌也是引起發(fā)酵香腸的口感偏酸的主要原因,在制作時往往需要添加蔗糖等甜味劑改善口感。植物乳桿菌等乳酸菌常單獨或混合作為發(fā)酵劑應用于發(fā)酵香腸的制備,然而生產(chǎn)的發(fā)酵香腸在風味上還無法與自然發(fā)酵生產(chǎn)的香腸競爭。
Saulnier等[8]研究表明:當蔗糖/果聚糖攝取和降解相關基因表達受到抑制時,植物乳桿菌將上調(diào)其支鏈氨基酸攝取及相關代謝基因的表達。而支鏈氨基酸、芳香族氨基酸和含硫氨基酸代謝產(chǎn)物對發(fā)酵香腸典型風味的形成具有重要意義。蔗糖利用缺陷的植物乳桿菌菌種作為發(fā)酵劑,可改善發(fā)酵香腸的風味,降低酸度。YesN是雙組分系統(tǒng)YesM/YesN中的應答調(diào)控子,屬于參與細菌代謝、脅迫應答和毒力因子的AraC/XylS轉錄調(diào)控子家族。雙組分系統(tǒng)YesM/YesN的生物學功能目前還不清楚,主要參與細菌降解植物細胞壁多糖和細胞內(nèi)糖代謝的調(diào)控[9-11]。徐文生等[12]研究表明:植物乳桿菌轉錄調(diào)控子基因yesN參與細胞的蔗糖代謝。植物乳桿菌SNB是本實驗室通過基因敲除技術構建的一株植物乳桿菌基因yesN缺陷菌株。為研究以植物乳桿菌SNB作為模式菌株應用于中式發(fā)酵香腸發(fā)酵劑的潛力,本研究以植物乳桿菌SNB為發(fā)酵劑制備香腸,檢測發(fā)酵香腸揮發(fā)性風味物質成分、酸度、總游離氨基酸等指標,并與自然發(fā)酵制備香腸和以野生植物乳桿菌為發(fā)酵劑制備香腸進行比較。
菌種:植物乳桿菌WT,購自中國工業(yè)微生物菌種保藏中心;植物乳桿菌SNB,本實驗室構建保存的基因yesN缺陷植物乳桿菌。
1.2.1 發(fā)酵劑準備 100 mL過夜培養(yǎng)的植物乳桿菌菌液倒入滅菌大離心管中,5 000 r/min 5 min離心后棄上清。用滅菌生理鹽水重懸菌體,再次離心棄上清,重復2次。獲得的菌泥加入少量滅菌的生理鹽水重懸菌體后加入香腸中。
1.2.2 香腸制備[13-14]將瘦肉、肥肉切丁后按3∶1的比例混合,并加入大曲酒、鹽、味精、醬油、白糖等輔料充分攪拌混勻后分成3等份。不添加植物乳桿菌直接填充腸衣的香腸樣品為空白對照(CK);添加植物乳桿菌野生菌株后填充腸衣的香腸樣品記為(SEB);添加蔗糖利用缺陷植物乳桿菌菌株后填充腸衣的香腸樣品記為(SNB)。制備的香腸置于恒溫恒濕培養(yǎng)箱內(nèi)發(fā)酵,發(fā)酵工藝參數(shù)為發(fā)酵溫度 24℃,濕度90%~95%,發(fā)酵48 h后將溫度調(diào)至20℃,濕度降至70%~80%,發(fā)酵120 h后,濕度降至60%~70%進行干燥240 h后即為成品,真空包裝后貯藏于室溫。
1.2.3 揮發(fā)性成分的提取[15]準確稱取30.0 g剪碎的發(fā)酵成熟香腸裝入100 mL樣品瓶中密封。80℃水浴30 min。插入涂層為聚二甲基硅氧烷、厚度75 μm,先在GC進樣口220℃解吸5 min的萃取頭并推出探頭,平衡30 min完成吸附。后將萃取頭插入GC/MS進樣器中解析5 min。
1.2.4 儀器及試驗條件[13-14]氣/質聯(lián)用儀(GC/MS)為 Agilent 5957C-7980A。色譜柱為 DB-5(60 m×0.25 mm×0.25 μm);載氣:He,流量 1 mL/min,不分流;程序升溫為:初始35℃,維持5 min;升溫至 100℃(升溫速率 1.5℃/min),維持 5 min;升溫至 200℃(升溫速率 2.5℃/min),保持 5 min;最后溫度升至240℃(升溫速率 10℃/min),保持5 min。EI電離源,電子能量為70 eV,離子阱溫度220℃;傳輸線溫度 280℃,掃描范圍:43~500 m/z,方式全掃描(Full Scan)。結果通過NIST08譜圖庫進行譜圖成分解析;按峰面積歸一化法確定發(fā)酵香腸揮發(fā)性風味物質的相對百分含量。
1.2.5 可滴定酸含量測定 取300 g剪碎后的香腸與300 mL蒸餾水置于拍打式均質袋中拍打2 min。取40 mL勻漿轉移容量瓶中,70℃水浴保溫45 min后定容至200 mL,過濾。取20 mL濾液加入30 mL蒸餾水,以酚酞作為指示劑,用0.1 mol/L NaOH滴定。每個樣3次平行,3次重復。
1.2.6 總游離氨基酸的測定 取300 g剪碎后的香腸與300 mL蒸餾水置于拍打式均質袋中拍打2 min。取0.8 g勻漿,加入10%乙酸1 mL和6.2 mL水,混勻,冷凍離心。吸取0.5 mL上清,采用茚三酮顯色法測定總游離氨基酸的含量。
1.2.7 熒光定量PCR 總RNA的提取和cDNA的合成方法分別見promega相關試劑盒使用說明書,構建16 μL RT-qPCR總反應體系包括100 ng cDNA,32 μL 引物對混合液,8 μL PCR 混合液,1.25 μL SYBR溶液,反應步驟為 95℃ 3 min;95 ℃ 10 s,58 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,45 個循環(huán)。檢測基因scrA、sacK1和scrR的引物對分別為scrAF(TCAGCCTACATCAGGTTTG)、scrAR(GTCGGCAGTACGGACATT),sacK1F(TCGCTTCAACATCCCACTCTAC)、sacK1R(CTTTCCCCGTTCGTTTTCC)和scrRF(GTGATTTTATGTAATAGTGCGGATGA)、scrRR(CGTTGGCGAACCAGCGT)。
蔗糖利用缺陷植物乳桿菌SNB是通過基因工程技術缺失植物乳桿菌ATCC14917內(nèi)調(diào)控糖代謝的應答調(diào)控子基因yesN獲得的突變菌株。為揭示基因yesN突變對植物乳桿菌蔗糖利用的影響,以蔗糖為唯一碳源的基礎培養(yǎng)基中培養(yǎng)植物乳桿菌,其生長特性見圖1。如圖1所示,接種16 h后,植物乳桿菌野生菌株OD600值為0.69,而突變菌株在同樣條件下OD600值僅為0.3左右。由此可見突變菌株利用蔗糖生長能力顯著低于野生菌株。為確定基因yesN缺失對植物乳桿菌蔗糖利用基因座基因表達的影響,采用RT-qPCR技術檢測植物乳桿菌中蔗糖代謝基因座基因scrA、scrR和sacK1的表達。結果如圖2所示,相對于野生菌株,突變菌株蔗糖代謝基因座基因scrA、scrR和sacK1的表達量下降82.0%到87.0%,表明突變菌株利用蔗糖生長能力大大下降。
中式發(fā)酵香腸發(fā)酵及其后熟均與香腸中微生物特別是乳酸菌的生長、代謝密切相關。香腸制備期間微生物指標變化見圖3:第0天,樣品CK和添加發(fā)酵劑的樣品SEB和SNB中總細菌數(shù)大約為3.85到 4.70 lg CFU/g;到第3天,所有樣品中總細菌數(shù)均達到最大水平(見圖3)。乳酸菌對發(fā)酵香腸的成熟起著至關重要的作用。乳酸菌計數(shù)(見圖4)顯示:前3天,乳酸菌數(shù)量快速增加,從第 0天的 3.59~5.98 lg CFU/g增加到第 3天的4.95~8.65 lg CFU/g。發(fā)酵香腸中乳酸菌的生長伴隨著各種有機酸特別是乳酸的生成。因此,發(fā)酵香腸中乳酸菌的快速生長常伴隨著香腸酸度的增加,這樣有利于快速降低香腸pH值而抑制有害微生物如腸桿菌等的生長[16]。
圖1 植物乳桿菌野生菌株和突變菌株利用蔗糖生長特性Fig.1 The growth curve of L.plantarum WT and ΔyesN mutant strains
圖2 植物乳桿菌野生菌株和突變菌株蔗糖利用基因座基因表達Fig.2 The expression profiles of sucrose utilization locus gens in L.plantarum WT and L.plantarum ΔyesN
圖3 不同發(fā)酵劑對發(fā)酵香腸菌落總數(shù)的影響Fig.3 The total plate count profiles of fermented sausage with different starter culture
圖4 不同發(fā)酵劑對發(fā)酵香腸乳酸菌總數(shù)的影響Fig.4 The total plate count of lactic acid bacterium profiles of fermented sausage with different starter culture
發(fā)酵香腸有機酸的生成可以通過檢測總可滴定酸的量來分析。試驗結果表明總可滴定酸的含量在發(fā)酵期間快速增加(見圖5),第3天時達到0.35~0.50 mg/100 g,其中樣品SNB與樣品CK總可滴定酸的含量比較接近,與樣品SEB中總可滴定酸含量差異顯著。發(fā)酵香腸由于乳酸菌產(chǎn)生大量乳酸等有機酸一般口感偏酸,需要大量添加蔗糖等作為微生物的碳源和甜味劑。蔗糖等甜味劑的使用既可以促進乳酸菌等有益微生物的快速生長,也可以改善香腸的口感。但蔗糖的大量使用已經(jīng)不符合現(xiàn)代食品低糖、低脂的發(fā)展方向。因此,相對于使用野生菌株作為發(fā)酵劑,使用模型菌株更有利于降低蔗糖的使用。
中式發(fā)酵香腸的總游離氨基酸含量見圖6,發(fā)酵香腸總游離氨基酸含量從第1天的19.80 mg/100 g快速增長到第3天的66.75~84.67 mg/100 g,到第 15 天增加至 79.89~120.69 mg/100 g之間。發(fā)酵香腸的生產(chǎn)工藝對發(fā)酵香腸的總游離氨基酸含量有著一定的影響,如有些學者報道總游離氨基酸的含量在發(fā)酵階段快速增加,而有些研究則報道總游離氨基酸在后熟階段快速增加[16]。肉類蛋白的水解能力主要來源于內(nèi)源性或微生物蛋白酶,不同的乳酸菌擁有不同的蛋白裂解能力[17-18],在發(fā)酵階段總游離氨基酸的快速增加意味著在這個階段相關酶活性最高。在本研究中,樣品SNB和SEB中蛋白裂解能力顯著低于樣品CK(P<0.01)。而樣品SNB中總游離氨基酸的含量也顯著高于樣品 SEB(P<0.01)。
圖5 不同發(fā)酵劑對發(fā)酵香腸總可滴定酸的影響Fig.5 The total titratable acid profiles of fermented sausage with different starter culture
通過頂空固相微萃取技術從香腸中提取的揮發(fā)性風味成分見表1,共檢測到包括7種酸、18種醛、3種酮、7種醇、10種酯等46種揮發(fā)性風味成分,其中醛和乙酯類成分占主導地位。脂肪氧化產(chǎn)生的各種揮發(fā)性成分如各種飽和脂肪醛(己醛、庚醛、壬醛),不飽和脂肪醛(2-己醛、2,4-庚二醛、2-辛烯醛、2-壬烯醛、2,4-壬二烯醛、2-癸烯醛等),酮(4-羥基丁酮、3-羥基丁酮),醇(1-辛烯-3-醇、3-甲基丁醇)等是發(fā)酵香腸風味形成的重要基礎,這些物質對發(fā)酵香腸揮發(fā)性風味特征的形成具有重要意義,也是發(fā)酵香腸不良風味的重要來源[11,19-20]。一般而言,添加植物乳桿菌發(fā)酵香腸與傳統(tǒng)發(fā)酵香腸在揮發(fā)性風味成分上存在顯著差異,特別是產(chǎn)生的不良風味物質相對于傳統(tǒng)工藝發(fā)酵香腸顯著減少[21]。
圖6 不同發(fā)酵劑對發(fā)酵香腸總游離氨基酸的影響Fig.6 The profiles of total free amino acid in fermented sausage with different starter culture
2.3.1 來源于氧化作用的風味成分 醛類成分能夠形成廣泛的風味且具有較低的感覺閾值,是發(fā)酵香腸中來源于脂肪氧化的最受關注的一類風味成分[22-24]。不同生產(chǎn)工藝制備的發(fā)酵香腸中,醛類的種類和占總揮發(fā)性風味物質的含量有所不同[25-27],含有6~8個碳原子的脂肪醛,如庚醛、壬醛和己醛常作為脂質氧化的標志,是發(fā)酵香腸中重要的揮發(fā)性醛類[25]。苯甲醛和苯乙醛是亮氨酸和苯丙氨酸代謝的標志性產(chǎn)物。苯甲醛有烤花生的香味,苯乙醛產(chǎn)生的香味與山楂相似[27-29]。己醛具有一種難聞的青草味,由不飽和脂肪酸氧化降解形成醛類[26],庚醛擁有典型的土豆味而壬醛則擁有典型的水果香味。
酸類在3種樣品中大約占到總離子峰的2.98%~6.32%。長鏈(C14-C18)和中鏈(C6-C12)脂肪酸在3種發(fā)酵香腸中均有分布,它們主要是從甘油三酯、磷脂或油脂降解形成[20]。長鏈或中鏈脂肪酸本身對提高發(fā)酵香腸風味沒有作用,主要是作為風味成分的前體物質,通過進一步降解形成不同風味物質影響發(fā)酵香腸的口感或香味[30]。短鏈脂肪酸(C<6)一般檢測閾值較低且具有濃郁的干酪味,是影響中式發(fā)酵香腸的主要成分之一。在本研究中,樣品SEB中短鏈脂肪酸的含量顯著高于(P<0.01)樣品CK和SNB。有些研究者發(fā)現(xiàn)在發(fā)酵香腸中存在乙酸[30],但本研究樣品中沒有發(fā)現(xiàn)。
表1 發(fā)酵香腸風味成分分析Table 1 Volatile component of Chinese fermented sausage
2.3.2 來源于氨基酸降解的揮發(fā)性風味物質 醛類(苯甲醛、苯乙醛)、醇類(3-甲基丁醇,苯乙醇)、酸類(3-甲基丁酸)、酯類(3-甲基丁酸乙酯、苯酸乙酯)均檢測到。3-甲基丁醛、3-甲基丁醇、3-甲基丁酸、3-甲基丁酸乙酯均來源于支鏈氨基酸降解。本研究在樣品SNB中,來源于支鏈氨基酸降解的風味成分的相對含量顯著高于樣品SEB和CK,其機理可能與在植物乳桿菌中蔗糖能夠抑制支鏈氨基酸攝取和降解代謝基因表達有關[8,31]。發(fā)酵香腸中添加氨基酸并不能顯著增加發(fā)酵香腸的典型風味,氨基酸特別是支鏈氨基酸、芳香族氨基酸和含硫氨基酸通過微生物的降解代謝,才能夠形成發(fā)酵香腸中濃郁香味[16]。
2.3.3 來源于微生物代謝的揮發(fā)性成分 微生物代謝活性在發(fā)酵香腸中與氨基酸降解、碳源發(fā)酵、酯類的β-氧化和酯酶活性有關[32]。本研究檢測發(fā)酵香腸中來源于微生物代謝碳源的成分主要有4-羥基丁酮和3-羥基丁酮。微生物代謝形成的揮發(fā)性風味成分的濃度受微生物的顯著影響[27,33],在樣品CK和SNB中,碳源代謝產(chǎn)物的離子峰面積顯著高于樣品SEB。酮類成分主要來源于微生物的β-氧化,樣品SNB中酮類的相對含量顯著高于樣品 SEB(P<0.01)。
酯類是發(fā)酵香腸中第二豐富的揮發(fā)性風味成分[20]。由于酯類具有較低的檢測閾值和水果香味,酯類被認為是中式發(fā)酵香腸揮發(fā)性風味的重要組成成分[25-27]。許多乙酯類成分如己酸乙酯、辛酸乙酯在3種樣品中均有分布,且在其它發(fā)酵香腸中也有發(fā)現(xiàn)[12,30,34-35]。而來源于氨基酸代謝的 3-甲基丁酸乙酯則僅在樣品SNB和SEB中發(fā)現(xiàn)。
總之,添加植物乳桿菌基因yesN缺陷菌株制備香腸在檢測到的揮發(fā)性風味成分,特別是典型揮發(fā)性風味成分方面,明顯優(yōu)于傳統(tǒng)發(fā)酵工藝生產(chǎn)的發(fā)酵香腸,而在總可滴定酸、總游離氨基酸等指標方面則明顯優(yōu)于添加野生菌株的植物乳桿菌菌株。雖然突變菌株涉及基因修飾微生物而未進行品評試驗,但研究表明蔗糖利用缺陷植物乳桿菌具有作為改良中式發(fā)酵香腸發(fā)酵工藝的模式菌株,應用于篩選中式發(fā)酵香腸發(fā)酵菌株的潛力。