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    藏靈菇胞外多糖的理化性質(zhì)及其在切達(dá)干酪中的應(yīng)用

    2019-10-08 03:48:46羅天淇余志堅(jiān)曹永強(qiáng)楊貞耐
    食品科學(xué) 2019年18期
    關(guān)鍵詞:菊粉發(fā)酵劑干酪

    羅天淇,郭 婷,余志堅(jiān),陳 超,曹永強(qiáng),楊貞耐,,*

    (1.北京食品營(yíng)養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,北京市食品添加劑工程技術(shù)研究中心,北京工商大學(xué),北京 100048;2.東君乳業(yè)(禹城)有限公司,山東 德州 253000)

    藏靈菇(又稱開菲爾粒)是由多種乳酸菌、酵母菌和醋酸菌穩(wěn)定共生形成的特殊粒狀或片狀化合物[1],能夠同時(shí)進(jìn)行乳酸、乙酸、乙醇發(fā)酵[2],是開菲爾傳統(tǒng)乳制品的發(fā)酵劑,同時(shí)也是潛在功能性乳品發(fā)酵劑來源[3]。研究表明,藏靈菇發(fā)酵乳中含有大量的乳酸菌胞外多糖(exopolysaccharide,EPS),該類多糖對(duì)機(jī)體安全無毒副作用[4]且具有多種生理功能,如調(diào)節(jié)血脂血壓、提高免疫力[5]、減少氧化損傷[6]、抗腫瘤、改善調(diào)節(jié)腸道微生態(tài)環(huán)境[7]、抑制有害菌的黏附等。產(chǎn)EPS的乳酸菌應(yīng)用到發(fā)酵食品中,可以改善食品的質(zhì)構(gòu)、口感、流變學(xué)特性和風(fēng)味等指標(biāo),如防止乳清析出、提高黏稠度、凝乳強(qiáng)度等,同時(shí)賦予產(chǎn)品一定的營(yíng)養(yǎng)保健功效[8-9]。除了可以對(duì)腸道微生物起到益生元的作用外,Russo等[10]發(fā)現(xiàn)將乳酸菌EPS加入培養(yǎng)基中,能夠?qū)χ参锶闂U菌WCFS1和嗜酸乳桿菌NCFM的生長(zhǎng)起促進(jìn)作用。這些功能使得乳酸菌EPS在食品和非食品工業(yè)倍受青睞,正日益引起人們的廣泛關(guān)注。

    近年來,研究表明菊粉、低聚半乳糖等糖類物質(zhì)能夠在發(fā)酵乳制品中對(duì)發(fā)酵菌株起到促進(jìn)作用[11-13],而乳酸菌EPS受限于實(shí)際生產(chǎn)中轉(zhuǎn)化效率較低[8],目前研究主要集中在EPS的生理活性以及高產(chǎn)乳酸菌EPS的篩選應(yīng)用上,關(guān)于EPS直接應(yīng)用于乳制品發(fā)酵的研究比較少見,尤其是EPS對(duì)發(fā)酵乳風(fēng)味的貢獻(xiàn)還沒有明確結(jié)論。因此,本研究分離純化藏靈菇發(fā)酵產(chǎn)生的EPS,采用紅外光譜、氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)聯(lián)用、掃描電鏡、原子力顯微鏡等研究其結(jié)構(gòu)特性,并將此EPS應(yīng)用于切達(dá)干酪中,進(jìn)一步研究其對(duì)發(fā)酵過程以及干酪品質(zhì)的影響,以期為深入研究藏靈菇EPS在發(fā)酵乳制品中的應(yīng)用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    藏靈菇 實(shí)驗(yàn)室保藏;生牛乳(蛋白質(zhì)3.09%,脂肪3.43%,乳糖3.91%) 北京市沙河春山奶牛場(chǎng);脫脂乳粉 新西蘭恒天然乳業(yè)集團(tuán);商品發(fā)酵劑R-704、商品凝乳酶CHY-MAX 丹麥科漢森公司;單糖標(biāo)準(zhǔn)品(鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、果糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖) 美國(guó)Sigma公司;DEAE-Sepharose Fast Flow離子色譜柱 英國(guó)Waterman公司;Sepharose CL-6B凝膠柱美國(guó)Amersham Bioscience公司;透析袋(截流分子質(zhì)量為8 000~14 000 Da) 北京鼎國(guó)生物技術(shù)有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    高壓蒸汽滅菌鍋 日本Sanyo公司;恒溫培養(yǎng)箱上海一恒儀器科技有限公司;數(shù)顯pH計(jì) 上海Mettler-Toledo儀器有限公司;SU8020場(chǎng)發(fā)射掃描電子顯微鏡、紫外-可見分光光度計(jì)、高速冷凍離心機(jī) 日本Hitachi公司;TENSOR 27紅外光譜儀、原子力顯微鏡 德國(guó)布魯克儀器公司;7890A-7000 GC-MS聯(lián)用儀 美國(guó)Agilent公司。

    1.3 方法

    1.3.1 培養(yǎng)基的配制

    脫脂乳培養(yǎng)基 將質(zhì)量分?jǐn)?shù)10%的脫脂乳粉用蒸餾水還原制成脫脂乳培養(yǎng)基,115 ℃滅菌15 min。

    SDM液體培養(yǎng)基(1 L):胰蛋白胨10 g、YNB(酵母氮源)6.7 g、K2HPO42 g、無水乙酸鈉5 g、檸檬酸鈉5 g、MgSO4·7H2O 0.2 g、MnSO4·H2O 0.05 g、葡萄糖20 g、吐溫80 1 mL,1 mol/L乙酸調(diào)pH值為6.6,121 ℃滅菌15 min。

    1.3.2 EPS的提取與產(chǎn)量測(cè)定

    在實(shí)驗(yàn)室保藏藏靈菇中,根據(jù)藏靈菇發(fā)酵乳凝乳時(shí)間、黏度及拉絲長(zhǎng)度選取7 個(gè)較優(yōu)樣品,使用脫脂乳培養(yǎng)基活化后,取5 g于100 mL無菌SDM液體培養(yǎng)基中37 ℃恒溫發(fā)酵18 h,然后100 ℃水浴加熱15 min以滅活可能降解多糖的酶類。EPS的提取參考Rimada等[14]的方法,向藏靈菇發(fā)酵液中加入80%的三氯乙酸溶液至終質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%,室溫下攪拌2 h后,10 000 r/min、4 ℃條件下離心45 min,去除細(xì)胞和蛋白。取上清液并加入兩倍體積的無水乙醇,4 ℃冷藏靜置12 h,10 000 r/min、4 ℃條件下離心30 min。沉淀用蒸餾水溶解,裝入透析袋中透析24 h,每8 h換一次蒸餾水。之后使用苯酚-硫酸法測(cè)定EPS產(chǎn)量。

    1.3.3 EPS的分離純化與鑒定

    1.3.3.1 DEAE-Sepharose Fast Flow陰離子色譜柱純化EPS

    使用超純水配制20 mg/mL的粗多糖凍干粉,依次用超純水(第1~30管)、0.2 mol/L NaCl緩沖液(第31~70管)、0.5 mol/L的 NaCl緩沖液(第71~100管)在陰離子交換柱上以1 mL/min的流速進(jìn)行洗脫,洗脫液收集量為5 mL/管,檢測(cè)每管洗脫液的OD490nm,合并含有多糖的洗脫液,透析凍干,4 ℃保存。

    1.3.3.2 Sepharose CL-6B凝膠柱層析純化EPS

    將上一步得到的多糖組分使用0.9%的NaCl緩沖液配制成2 mg/mL的多糖溶液。使用0.9% NaCl溶液在Sepharose CL-6B凝膠柱上以1 mL/min的流速對(duì)多糖樣品再進(jìn)一步純化,每管收集5 mL并檢測(cè)OD490nm,合并含有多糖的洗脫液,透析凍干,4 ℃保存。

    1.3.3.3 紅外光譜分析

    將2 mg純化的EPS凍干粉末和200 mg溴化鉀粉末混合均勻,并用壓片法壓成薄片狀,記錄并觀察4 000~400 cm-1范圍內(nèi)EPS樣品的紅外光譜。

    1.3.3.4 掃描電鏡觀察EPS分子形貌

    將5 mg純化的EPS凍干粉樣品,均勻粘在云母片表面,噴金后使用掃描電鏡在2 000 倍和4 000 倍下觀察多糖分子形貌。

    1.3.3.5 原子力顯微鏡觀察EPS分子形貌

    使用超純水制備質(zhì)量濃度為1 mg/mL的純化EPS,在氮?dú)獗Wo(hù)下攪拌至充分溶解后,梯度稀釋成10 μg/mL的溶液并使用原子力顯微鏡進(jìn)行觀察。

    1.3.3.6 單糖組成

    單糖組成的分析方法采用Wang Ji等[15]的方法。

    1.3.4 EPS對(duì)發(fā)酵劑的作用研究

    1.3.4.1 EPS對(duì)發(fā)酵劑生長(zhǎng)的影響

    在EPS添加量分別為0%、0.5%的MRS液體培養(yǎng)基中添加0.1 g/100 mL的商品發(fā)酵劑R-704,連續(xù)培養(yǎng)24 h并檢測(cè)OD630nm值[12]。

    1.3.4.2 EPS含量對(duì)發(fā)酵乳pH值的影響

    在生牛乳中分別添加0%、0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%和3%的EPS,65 ℃殺菌30 min,冷卻至室溫,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%的商品發(fā)酵劑R-704,37 ℃培養(yǎng)6 h后測(cè)定pH值。

    1.3.5 干酪的理化及微生物指標(biāo)測(cè)定

    1.3.5.1 切達(dá)干酪的制作

    切達(dá)干酪制作參考郝曉娜等[16]的方法。生牛乳65 ℃殺菌30 min,室溫冷卻至31 ℃后添加0.1%的商品發(fā)酵劑R-704,并在菊粉組、EPS組分別添加1%的菊粉和EPS。在37 ℃保溫發(fā)酵,pH值降至6.5后以0.002 5 g/L的比例添加凝乳酶CHY-MAX,32 ℃靜置40 min待乳凝固后用干酪刀切割成小塊,升溫至41 ℃順時(shí)針緩慢攪拌30 min,便于乳清析出,當(dāng)pH值降至6.2時(shí)排乳清,并于40 ℃堆釀,當(dāng)pH值為5.5時(shí),絞碎凝塊,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)1.5%的食鹽,然后裝入干酪模具壓榨。真空包裝,并于4 ℃條件下成熟12 周。

    1.3.5.2 干酪得率的測(cè)定

    干酪得率作為判斷干酪制作方法、設(shè)置工藝參數(shù)是否合理,是否適合生產(chǎn)應(yīng)用的重要指標(biāo),其計(jì)算公式如下:

    式中:M0為干酪質(zhì)量;M1為牛乳質(zhì)量;M2為發(fā)酵劑質(zhì)量;M3為鹽質(zhì)量。

    1.3.5.3 干酪含水量的測(cè)定

    干酪含水量的測(cè)定:參考GB 5009.3—2016《食品中水分的測(cè)定》[17]。

    1.3.5.4 干酪保水率的測(cè)定

    各組取3 g干酪樣品,4 500 r/min離心15 min,去上清液,稱量并作記錄,計(jì)算公式如下:

    式中:M0為空離心管質(zhì)量;M1為離心管加樣品的質(zhì)量;M2為樣品離心除去上清液后的離心管加樣品質(zhì)量。

    1.3.5.5 干酪微生物指標(biāo)與pH值的測(cè)定

    干酪成熟期間每2 周取樣一次,采用MRS平板涂布法檢測(cè)干酪樣品中乳酸菌的活菌數(shù)。準(zhǔn)確稱取1 g干酪磨碎后加入9 mL無菌生理鹽水中攪拌至溶解,梯度稀釋至一定倍數(shù),吸取100 μL稀釋液均勻涂布于MRS培養(yǎng)基,37 ℃靜置培養(yǎng)48 h后進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。

    準(zhǔn)確稱取10 g磨碎的干酪加入12 mL的蒸餾水中,勻漿處理使其混合均勻后,4 500 r/min離心15 min后去除上層脂肪,取下層溶液測(cè)pH值。

    1.3.5.6 干酪風(fēng)味的測(cè)定

    固相微萃?。╯olid-phase microextraction,SPME)法提取揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì):萃取前將SPME纖維置于GC-MS進(jìn)樣口老化。取10 g干酪和1 μL內(nèi)標(biāo)物2-甲基-3-庚酮于30 mL萃取瓶中,內(nèi)標(biāo)物質(zhì)量濃度為0.816 μg/μL,加蓋密封,在60 ℃恒溫水浴下平衡30 min后,將SPME萃取纖維通過瓶蓋插入樣品中的頂空部分,推出纖維,頂空吸附30 min后拔出;快速插入GC-MS進(jìn)樣口解吸5 min,進(jìn)行GC-MS聯(lián)用分析。

    GC條件:采用DB-5(30 m×0.25 mm,0.25 μm)色譜柱進(jìn)行分析。升溫程序:起始柱溫40 ℃,保持3 min;以5 ℃/min升溫到200 ℃;以10 ℃/min升至230 ℃,保持3 min;載氣(He)流速1.2 mL/min,不分流進(jìn)樣。

    MS條件:電子電離源,電子能量70 eV,傳輸線溫度280 ℃,離子源溫度230 ℃,四極桿溫度150 ℃,質(zhì)量掃描范圍m/z 40~250。

    1.3.5.7 風(fēng)味物質(zhì)香氣活性值(odor activity value,OAV)的計(jì)算:

    式中:Ci為化合物的含量/(μg/g);OTi為該化合物在水中的嗅覺閾值/(mg/kg)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 藏靈菇EPS產(chǎn)量測(cè)定

    綜合藏靈菇發(fā)酵乳的凝乳時(shí)間、黏度及拉絲長(zhǎng)度,從30 種藏靈菇樣品中篩選出的7 個(gè)較優(yōu)樣品的EPS產(chǎn)量如圖1所示,確定藏靈菇KW1具有最高的EPS產(chǎn)量,為624.82 mg/L,與其他組有顯著差異(P<0.05)。在相似培養(yǎng)、檢測(cè)條件下,與其他類似研究報(bào)道的EPS產(chǎn)量相比[15,18-20],也處于較高水平,同時(shí)Bouzar等[21]指出乳酸菌EPS的產(chǎn)量一般都比較低(50~425 mg/L),因此藏靈菇KW1具有良好的EPS生產(chǎn)前景。

    圖1 藏靈菇EPS產(chǎn)量Fig. 1 Production of EPS from Tibet kefir

    2.2 EPS的分離純化

    圖2 EPS經(jīng)陰離子交換色譜柱分離得到的洗脫曲線Fig. 2 Elution curve of the EPS separated by anion exchange chromatography

    圖3 EPS經(jīng)Sepharose CL-6B凝膠柱純化的洗脫曲線Fig. 3 Elution curve of the EPS purified by Sepharose CL-6B gel permeation chromatography

    如圖2所示,藏靈菇KW1發(fā)酵培養(yǎng)物經(jīng)除蛋白處理、醇沉、透析和冷凍干燥后得到的粗多糖,在陰離子交換色譜層析中被0.2 mol/L NaCl鹽溶液洗脫下來,表明此EPS是酸性多糖或者帶有酸性基團(tuán)[22]。通過Sepharose CL-6B凝膠色譜柱進(jìn)一步純化,不同大小的分子被洗脫分開,產(chǎn)生單一洗脫峰(圖3),獲得純化EPS并用于后續(xù)理化分析。

    2.3 EPS官能團(tuán)的紅外光譜分析

    圖4 藏靈菇KW1純化EPS的紅外光譜圖Fig. 4 IR spectrum of the purified EPS from Tibet kefir KW1

    圖4 顯示了藏靈菇KW1 EPS的紅外光譜分析結(jié)果。在3 420 cm-1附近的峰主要是由羥基的伸縮振動(dòng)引起的峰,可能是來源于樣品吸附的水分、樣品分子內(nèi)的羥基或分子間氫鍵的拉伸峰[23];在2 925 cm-1附近的峰主要是由甲基或亞甲基的C—H鍵的伸縮振動(dòng)引起的峰;在1 645 cm-1附近的峰主要是由羰基的伸縮振動(dòng)引起的峰,這個(gè)峰是多糖的特征吸收峰[24];1 563 cm-1和1 384 cm-1處的峰是羧基中C=O的對(duì)稱伸縮振動(dòng)峰[25];1 231 cm-1和1 076 cm-1處的峰是C—O鍵的伸縮振動(dòng)峰,其來源可能為C—O—H,或是糖環(huán)中的C—O—C,也有可能為縮醛鍵[23];874 cm-1說明可能存在α-糖苷鍵[26]。

    2.4 EPS單糖組成分析

    對(duì)藏靈菇KW1提取純化后的EPS進(jìn)行水解和乙酰化后,得到相應(yīng)的衍生物,并通過氣相色譜測(cè)得藏靈菇KW1產(chǎn)EPS的氣相色譜圖(圖5B),與標(biāo)準(zhǔn)單糖色譜圖(圖5A)對(duì)比后可知,藏靈菇KW1 EPS由鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖組成,相對(duì)物質(zhì)的量比為1∶3.02∶2.12∶1.59∶3.04,與紅外光譜結(jié)果一致。其他EPS組成的研究發(fā)現(xiàn),植物乳桿菌KF5所產(chǎn)EPS是由甘露糖、葡萄糖和半乳糖按照物質(zhì)的量比例1∶4.99∶6.90組成[23];來自雙歧桿菌22-5的EPS主要含有木糖、半乳糖、葡萄糖、阿拉伯糖、鼠李糖和巖藻糖[27];副干酪乳桿菌34-1產(chǎn)生的EPS只含有半乳糖,清酒乳桿菌O-1產(chǎn)生的EPS則含有葡萄糖和鼠李糖[28]。劉翠平等[29]發(fā)現(xiàn),干酪乳桿菌LC2W使用葡萄糖作為碳源得到的EPS由鼠李糖、葡萄糖、半乳糖組成,而使用乳糖作為碳源得到的EPS則是由甘露糖、葡萄糖、半乳糖組成。因此EPS的單糖組成受到菌株類型、培養(yǎng)條件等因素的影響,藏靈菇KW1在其他培養(yǎng)條件下可能能夠產(chǎn)生不同組成的EPS。

    圖5 單糖標(biāo)準(zhǔn)品(A)和藏靈菇KW1純化EPS(B)的GC-MS聯(lián)用分析圖Fig. 5 GC-MS analysis of monosaccharide standards (A) and the puri fi ed EPS (B)

    2.5 EPS掃描電鏡和原子力顯微鏡分析

    藏靈菇KW1 EPS的掃描電鏡觀察如圖6所示,EPS顯示出相對(duì)穩(wěn)定的三維微觀結(jié)構(gòu)(圖6A),EPS表面粗糙呈顆粒狀,整體上呈致密的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),內(nèi)部分布著許多大小形狀相似的球形結(jié)構(gòu)和不規(guī)則片狀結(jié)構(gòu)。進(jìn)一步放大倍數(shù)可以看出(圖6B),EPS表面結(jié)構(gòu)緊致光滑,這種較為穩(wěn)定的結(jié)構(gòu),可以賦予EPS特殊的流變學(xué)性質(zhì),例如提升產(chǎn)品的黏度、改善質(zhì)構(gòu)和保水特性[30]。據(jù)報(bào)道,從藏靈菇中篩選分離出的L. kefiranofaciens ZW3所產(chǎn)的EPS也具有類似的分子形貌[31]。而另一株從藏靈菇中篩選分離的植物乳桿菌KF5,其所產(chǎn)的EPS呈不規(guī)則片狀[23]。

    圖6 藏靈菇KW1純化EPS的掃描電鏡圖Fig. 6 Scanning electron micrographs of the purified EPS

    平面圖像(圖7A)顯示,EPS分布不均勻,在某些區(qū)域EPS結(jié)構(gòu)緊密呈膜狀,這說明EPS發(fā)生了聚集,在多糖質(zhì)量濃度大的區(qū)域,羥基數(shù)目多,分子間的氫鍵締合作用增強(qiáng),多糖聚合較緊密,形成膜狀結(jié)構(gòu)[32]。在立體圖像(圖7B)中,可以觀察到EPS表現(xiàn)出高低不平、分布不均的狀態(tài),平面圖像中的膜狀區(qū)域呈現(xiàn)出緊密的簇狀結(jié)構(gòu),而在其他區(qū)域可以看到多糖分子形貌如尖錐狀結(jié)構(gòu),高度在2.4 nm左右。

    圖7 藏靈菇KW1 EPS的原子力顯微圖像Fig. 7 Atomic force microscopy images of the purified EPS

    2.6 EPS對(duì)發(fā)酵劑生長(zhǎng)的影響

    圖8 EPS對(duì)發(fā)酵劑菌株生長(zhǎng)的影響Fig. 8 Effect of EPS on growth of the starter culture

    如圖8所示,在兩組液體培養(yǎng)基中,發(fā)酵劑菌株在調(diào)整期都生長(zhǎng)緩慢,曲線較接近,3~4 h之后均進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,菌株生長(zhǎng)速度加快,但實(shí)驗(yàn)組菌株的生長(zhǎng)情況明顯要優(yōu)于對(duì)照組,并且進(jìn)入穩(wěn)定期后,實(shí)驗(yàn)組發(fā)酵液OD值顯著高于對(duì)照組(P<0.05),表明EPS可能起到益生元的作用,從而促進(jìn)發(fā)酵劑菌株的生長(zhǎng),也有可能EPS被微生物利用,為其穩(wěn)定期的生長(zhǎng)補(bǔ)充培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)的不足。

    從圖9可以看出,EPS的添加量對(duì)發(fā)酵劑產(chǎn)酸有著顯著影響。隨著EPS添加量的提高,發(fā)酵乳產(chǎn)酸呈現(xiàn)先升后降的趨勢(shì);在添加量為1%時(shí),pH值降至約4.5,產(chǎn)酸達(dá)到最大值,說明在EPS的低添加量范圍內(nèi),隨著添加量的增加,其對(duì)發(fā)酵劑菌株的生長(zhǎng)具有逐步增強(qiáng)的促進(jìn)作用;添加量高于1%時(shí),EPS對(duì)菌株的促生長(zhǎng)作用隨著其添加量的升高而逐漸減弱,甚至可能抑制菌株的生長(zhǎng)。這點(diǎn)與菊粉類似,曹永強(qiáng)等[33]發(fā)現(xiàn),菊粉對(duì)乳酸菌有促生長(zhǎng)作用,但是濃度過高會(huì)抑制乳酸菌的生長(zhǎng)。

    圖9 EPS添加量對(duì)發(fā)酵乳pH值的影響Fig. 9 Effect of different amounts of EPS addition on pH of fermented milk

    2.7 EPS對(duì)切達(dá)干酪品質(zhì)的影響

    2.7.1 EPS對(duì)干酪得率、保水率的影響

    表1 干酪得率、保水率Table 1 Yield and water retention rate of cheese

    如表1所示,空白組干酪的得率、保水率與實(shí)驗(yàn)組干酪有顯著差異(P<0.05),而菊粉組和EPS組得率、保水率無顯著差異(P>0.05),均能有效提高干酪得率,增加干酪保水率,這可能與菊粉和EPS能夠一定程度上改善干酪內(nèi)部三維結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性有關(guān)[11]。

    2.7.2 EPS對(duì)干酪理化指標(biāo)和微生物指標(biāo)的影響

    圖10 干酪成熟期間含水量變化Fig. 10 Changes in moisture content during cheese ripening

    如圖10所示,在干酪成熟的過程中,干酪含水量隨著成熟時(shí)間的延長(zhǎng)而下降,下降速度逐漸減慢;添加有菊粉、EPS的實(shí)驗(yàn)組干酪含水量顯著高于空白組(P<0.05),與郝曉娜等[16]添加產(chǎn)EPS菌株制備切達(dá)干酪的結(jié)果相似,這可能與菊粉、EPS強(qiáng)化干酪結(jié)構(gòu)結(jié)合更多的水有關(guān)。而成熟期間各組干酪的pH值(圖11)逐步降低,之后趨于穩(wěn)定,菊粉的加入對(duì)干酪pH值的影響比較明顯,而空白組與EPS組干酪pH值無顯著差異(P>0.05),說明EPS的加入不會(huì)使干酪品質(zhì)發(fā)生明顯偏差。

    圖11 干酪成熟期間pH值變化Fig. 11 Changes in pH during cheese ripening

    圖12 顯示干酪成熟期間活菌數(shù)的變化。成熟過程前6 周干酪中的微生物含量在不斷增加,之后趨于穩(wěn)定。菊粉組和EPS組的微生物含量與空白組比較有顯著差異(P<0.05),說明EPS添加于干酪中能起到與菊粉一樣的益生元作用,但是EPS組的活菌數(shù)對(duì)數(shù)值高于菊粉組,而產(chǎn)酸量卻不如菊粉組,這可能是由于EPS和菊粉在結(jié)構(gòu)組成上存在差異,直接影響其對(duì)微生物發(fā)酵增殖的作用[11]。

    圖12 干酪成熟期間乳酸菌含量變化Fig. 12 Changes in number of lactic acid bacteria of during cheese ripening

    2.7.3 EPS對(duì)切達(dá)干酪風(fēng)味的影響

    2.7.3.1 EPS干酪揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的GC-MS結(jié)果分析

    風(fēng)味是反映食品品質(zhì)的一個(gè)重要因素,目前關(guān)于EPS對(duì)干酪風(fēng)味影響的研究較少,郝曉娜等[16]考察了產(chǎn)EPS益生菌L. plantarum1-2對(duì)切達(dá)干酪揮發(fā)性風(fēng)味形成的影響,發(fā)現(xiàn)益生菌的加入增加了乙苯、十二烷、己醇和丙酮4 種風(fēng)味物質(zhì),且其他共有風(fēng)味物質(zhì)在含量上也存在差異;Wang Ji等[15]指出產(chǎn)EPS植物乳桿菌SKT109能夠通過增加乙酸乙酯,3-甲基-1-丁醇,3-羥基-2-丁酮和丁酮的含量來改善切達(dá)干酪風(fēng)味特征。

    如表2所示,采用SPME-GC-MS,從成熟12 周的EPS干酪中共鑒定出69 種揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì),包括烴類14 種,醇類14 種,醛類4 種,酮類7 種,酸類8 種,酯類21 種,其他化合物1 種。其中含量最高的為酯類化合物,含量為5 042.44 μg/kg,其次為醇類、酮類、烴類、酸類、醛類以及其他化合物,但是風(fēng)味物質(zhì)含量高低并不能說明對(duì)風(fēng)味的貢獻(xiàn)度大小[34],二者不存在直接關(guān)聯(lián),因此需結(jié)合OAV法進(jìn)一步分析各物質(zhì)對(duì)干酪風(fēng)味的貢獻(xiàn)。

    表2 EPS干酪揮發(fā)性組分的定性定量結(jié)果Table 2 Qualitative and quantitative analysis results of volatiles in EPS-supplemented cheese

    續(xù)表2

    2.7.3.2 EPS干酪風(fēng)味活性物質(zhì)的OAV分析

    表3 OAV確定EPS干酪中的風(fēng)味活性物質(zhì)Table 3 Qualitative and quantitative analysis of volatile flavor compounds in EPS-supplemented cheese

    OAV大于1的香氣化合物被認(rèn)為是食品的香氣特征貢獻(xiàn)組分,香氣化合物的OAV越大,說明其對(duì)整體香氣貢獻(xiàn)越大[35]。如表3所示,在檢測(cè)出的69 種揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)中,有17 種化合物的OAV大于1,即對(duì)EPS干酪的風(fēng)味有貢獻(xiàn)作用,是EPS干酪中的風(fēng)味活性物質(zhì),包括6 種醇類物質(zhì),1 種醛類物質(zhì),3 種酮類物質(zhì),7 種醛類物質(zhì)。其中丁酸乙酯、己酸乙酯、辛酸乙酯的OAV大于200,說明它們對(duì)EPS干酪的風(fēng)味有關(guān)鍵性貢獻(xiàn)作用[36]。

    發(fā)酵乳制品中醇類物質(zhì)的來源主要有乳糖代謝、甲基酮類的還原、氨基酸的降解以及亞油酸、亞麻酸的降解這4 種。本實(shí)驗(yàn)檢測(cè)出的6 種OAV大于1的醇類物質(zhì)中,3-甲基-1-丁醇具有特殊不愉快氣味、有辛辣而令人厭惡味[37];3-甲硫基丙醇具有典型的硫化物氣息,稀釋到一定程度后具有洋蔥、甜的肉湯的氣味[38];2-庚醇具有蘑菇香氣,2-壬醇和1-壬醇分別具有黃瓜和青草氣味;苯乙醇濃度最高,來自芳香族氨基酸的降解,具有玫瑰花香、紫羅蘭香、茉莉花香等多種氣味。

    醛類是干酪中重要的揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)之一,但本實(shí)驗(yàn)中僅有十二醛這1 種物質(zhì)對(duì)干酪風(fēng)味有貢獻(xiàn),這可能與醛類屬于化學(xué)性質(zhì)比較活潑的不穩(wěn)定中間體化合物,在一定條件下易被還原成相應(yīng)的醇有關(guān)[2]。

    3 種OAV大于1的酮類化合物中,2-壬酮具有青香、脂肪香,2-十一酮具有脂肪香以及奶油、乳酪的味道[39]。一般認(rèn)為酮類物質(zhì)隨著碳鏈的增長(zhǎng)香氣更加濃郁[40],其中甲基酮類化合物被認(rèn)為是表面霉菌成熟干酪和藍(lán)紋干酪的特征風(fēng)味物質(zhì)[41]。

    酯類化合物是非常重要的一種呈香物質(zhì),在干酪中一般給人以甜的果香味,同時(shí)干酪中酯類化合物的存在還可以緩解短鏈酸類化合物引起的尖刺感,使整體風(fēng)味變得柔和,但是過多的酯類化合物容易使得奶酪風(fēng)味偏水果味[42]。在本實(shí)驗(yàn)中,酯類物質(zhì)含量最高,同時(shí)對(duì)EPS干酪風(fēng)味貢獻(xiàn)最大。其中丁酸乙酯具有蘋果香氣;乙酸苯乙酯具有蜜糖、花香、果香、柑橘香氣[43];癸酸乙酯呈現(xiàn)出葡萄氣味;δ-癸內(nèi)酯呈現(xiàn)出桃子、乳脂氣味[39];乙酸異戊酯、己酸乙酯、辛酸乙酯也都能賦予食品水果香氣。同時(shí),王磊等[44]認(rèn)為異戊醛、乙酸乙酯、辛酸乙酯是切達(dá)干酪的主體揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì),與本實(shí)驗(yàn)結(jié)論部分相同,說明EPS的加入可能改變了干酪的風(fēng)味特征。

    在本實(shí)驗(yàn)中,烴類物質(zhì)和酸類物質(zhì)的含量都不低,但是其OAV均小于1,這可能主要與這些揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)感覺閾值較高有關(guān),同時(shí)由于實(shí)際香氣組分之間在整體香氣貢獻(xiàn)中具有協(xié)同或拮抗效應(yīng),通常香氣成分之間相互作用以加成為主,協(xié)同和掩蓋作用較少[45],一些OAV小于1的物質(zhì)可能通過與其他物質(zhì)間的協(xié)同效應(yīng)而使其香氣被人們感知,因此這些物質(zhì)也有可能對(duì)EPS干酪的整體風(fēng)味有貢獻(xiàn)。

    3 結(jié) 論

    本研究對(duì)藏靈菇發(fā)酵產(chǎn)EPS進(jìn)行了分離純化,確定該EPS由鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖和半乳糖組成,物質(zhì)的量比1∶3.02∶2.12∶1.59∶3.04,在紅外光譜下顯示出典型的多糖吸收峰模式。掃描電鏡結(jié)果表明,該EPS微觀結(jié)構(gòu)中分布著許多表面比較光滑的球狀、片狀結(jié)構(gòu);原子力顯微觀察,EPS呈現(xiàn)一定的聚集現(xiàn)象,具有膜狀、簇狀結(jié)構(gòu)。藏靈菇EPS對(duì)發(fā)酵劑菌株的生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,這種作用隨著添加量的增加先增后減。同時(shí)還能夠提高切達(dá)干酪得率、含水量、保水性以及成熟期間的活菌數(shù)。SPME-GC-MS分析結(jié)合OAV法表明,在69 種揮發(fā)性物質(zhì)中,有17 種風(fēng)味物質(zhì)對(duì)EPS干酪整體風(fēng)味有貢獻(xiàn),其中丁酸乙酯、己酸乙酯、辛酸乙酯是關(guān)鍵性風(fēng)味物質(zhì)。本研究將為藏靈菇EPS在乳酸菌發(fā)酵及干酪加工中的應(yīng)用提供重要的技術(shù)參考。

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