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    釀造啤酒大麥發(fā)芽前后多酚組分變化及抗氧化活性

    2019-10-08 03:48:34李葦舟李福香何曉琴李富華趙吉春
    食品科學(xué) 2019年18期
    關(guān)鍵詞:吸收能力麥芽大麥

    李葦舟,李福香,何曉琴,李富華,2,趙吉春,2,雷 琳,明 建,2,*

    (1.西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,重慶 400715;2.西南大學(xué)食品貯藏與物流研究中心,重慶 400715)

    大麥(Hordeum vulgareL.),屬禾本科(Poaceae)、大麥屬(Hordeum),別名牟麥、赤膊麥、飯麥,為一年生禾本植物。麥芽為大麥的成熟果實經(jīng)發(fā)芽干燥而制備的加工品[1]。

    大麥作為我國主要農(nóng)作物之一,在農(nóng)業(yè)和食品工業(yè)中有很重要的地位,大麥及麥芽具有助消化、催乳、抗結(jié)腸炎、降血糖血脂等藥理性作用[2-6],主要用作飼料和啤酒工業(yè)原料[7-8],僅有小部分為人類直接食用。發(fā)芽使得大麥糊粉層、胚乳中的營養(yǎng)物質(zhì)充分溶解,小分子可溶性糖及含氮化合物含量增加,胚乳結(jié)構(gòu)變得疏松,使其滿足啤酒工藝中制糖流程的需求[9-10]。近年我國啤酒工業(yè)快速發(fā)展,但大麥?zhǔn)袌鲋饾u萎縮,國內(nèi)種植大麥產(chǎn)量已不能滿足啤酒工業(yè)對原料的需求,導(dǎo)致進口大麥數(shù)量猛增[11-12]。大麥及麥芽富含多酚類物質(zhì),對啤酒的色、香、味及穩(wěn)定性有較大影響[13-15]。然而,對于大麥發(fā)芽前后多酚組分及抗氧化活性比較的報道較少。本實驗選取8 種釀造啤酒大麥及發(fā)芽后的麥芽為原料,旨在通過測定多酚含量、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除能力及氧自由基吸收能力,比較大麥發(fā)芽前后多酚含量、組分及抗氧化活性上的差異,研究釀造啤酒大麥發(fā)芽前后的多酚變化,為啤酒原料選取,工藝優(yōu)化,產(chǎn)品貯藏等提供一定的理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    啤酒大麥及麥芽樣品由永順泰(秦皇島)麥芽有限公司提供(原料產(chǎn)地見表1),將干燥的大麥及麥芽機械粉碎,過60 目篩,分袋真空包裝,保存于低溫冰箱(4 ℃)備用。

    表1 大麥品種及產(chǎn)地Table 1 Geographical origins and varieties of 8 varieties of barley used in this study

    丙酮、乙酸乙酯、氫氧化鈉、正己烷等(均為分析純)成都科龍化工試劑廠;熒光素鈉鹽(FL)、福林-酚試劑、水溶性VE(Trolox)、DPPH(分析純) 美國Sigma公司;2,2’-偶氮二異丁基脒鹽酸鹽(ABAP)(分析純) 日本W(wǎng)ako化學(xué)試劑公司;甲醇、沒食子酸、原兒茶素、葒草素、阿魏酸等(均為色譜純) 成都普瑞法科技有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    XHF-D高速分散器 寧波新芝生物科技股份有限公司;HW-7FCS制冰機 日本三洋公司;RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上海亞榮生化儀器廠;1-15PK高速離心機 美國Sigma公司;JH722分光光度計 上海精科科學(xué)儀器廠;Spectra Max M2多功能酶標(biāo)儀 美國Molecular公司;LC-20A高效液相色譜儀 日本島津公司。

    1.3 方法

    1.3.1 多酚的提取

    游離酚的提?。簠⒄誒karter[16]和Adom[17]等的方法,并根據(jù)本實驗室條件稍作修改。準(zhǔn)確稱取2.50 g樣品加入50 mL 80%的丙酮溶液,冰浴中均質(zhì)(2 min,3 次),離心(3 500 r/min,10 min),取上清液,殘渣重復(fù)上述操作2 次,所得全部上清液抽濾后于45 ℃真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干,純水定容至25 mL,分裝后于-40 ℃貯存?zhèn)溆谩?/p>

    結(jié)合酚的提?。簠⒄誒karter[16]和Nuutila[18]等的方法,根據(jù)本實驗室條件稍作修改。上述殘渣加入50 mL 2 mol/L NaOH溶液,避光消化1.5 h,調(diào)pH值為2。除脂:加入25 mL正己烷,避光攪拌10 min后離心(3 500 r/min,10 min),去除上清液,重復(fù)以上操作1 次。加入乙酸乙酯25 mL,避光攪拌10 min后離心(3 500 r/min,10 min),取上清液,重復(fù)提取5 次。所得全部上清液抽濾后于45 ℃真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干,純水定容至10 mL,分裝后于-40 ℃冰箱中貯存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.2 多酚含量的測定

    沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:參照Adom[17]和Chu[19]等方法,取一定濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)液200 μL于試管,依次加入800 μL純水、200 μL福林-酚試劑搖勻,靜置6 min,再加入2 mL 7% Na2CO3溶液和1.6 mL純水搖勻,使其充分混合,避光靜置90 min,于760 nm波長處測其吸光度。以沒食子酸濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程為:y=0.003 4x+0.067 7(R2=0.991 7)

    大麥及麥芽樣品中多酚類化合物含量的檢測:結(jié)果以每克大麥或麥芽樣品(干質(zhì)量)中所含的沒食子酸當(dāng)量(mg/g)表示。每個樣品做3 組平行,結(jié)果表示為 ±s。

    1.3.3 多酚組分鑒定

    參照李富華[20]的方法并適當(dāng)修改。

    色譜條件:色譜柱:T h e r m o B D S C18(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動相A:0.2%甲酸;流動相B:100%乙腈;流速:0.7 mL/min;進樣量:20 μL;柱溫:40 ℃;檢測器:日本島津LC-20A二極管陣列檢測器,色譜數(shù)據(jù)在200~600 nm波長范圍內(nèi)掃描,檢測波長280 nm。梯度洗脫程序為:0~5 min,10% B;5~50 min,10%~40% B;50~55 min,40%~90% B;55~62 min,90% B;62~65 min,90%~10% B;65~75 min,10% B。

    1.3.4 大麥發(fā)芽前后多酚抗氧化活性的測定

    1.3.4.1 多酚DPPH自由基清除活性測定

    參考Vaher[21]、Alvarez[22]及Van[23]等的方法。將樣品提取液做相應(yīng)稀釋,配制一定濃度梯度的樣品反應(yīng)液,加入5 mL 0.1 mmol/L的DPPH溶液混勻,避光靜置30 min,于517 nm波長處檢測。實驗以VC為對照,純水做空白試驗。每個樣品做3 個平行,以IC50值表示清除DPPH自由基強度。根據(jù)式(1)計算樣品DPPH自由基清除率:

    式中:Ai為樣品的吸光度;Aj為空白實驗的吸光度。

    1.3.4.2 多酚ORAC值測定

    參考Alvarez[22]和Wolfe[24]等的方法。將20 μL磷酸緩沖液(空白液)、6.25 μmol Trolox標(biāo)準(zhǔn)液和1 μg/mL的樣品液,分別點樣到96 孔黑色酶標(biāo)板。于37 ℃溫育10 min后加入200 μL 0.96 μmol/L的熒光工作液振蕩20 min,迅速加入119 mmol/L ABAP工作液20 μL,于激發(fā)波長485 nm、入射波長520 nm條件下立即讀數(shù),每4.5 min進行讀數(shù),共2.5 h。根據(jù)測定值計算抗氧化能力指數(shù)(oxygen radical absorbance capacity,ORAC),按照式(2)計算熒光衰減曲線下的面積(AUC)、按照式(3)計算ORAC值。

    式中:f1為第1次熒光讀數(shù)值;fn為第n次熒光讀數(shù)值;CT為間隔測定時間。最終的ORAC值以Trolox當(dāng)量表示(μmol/g)。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    數(shù)據(jù)采用Excel 2010軟件進行統(tǒng)計分析,采用SPSS 22.0進行單因素ANOVA分析、Duncan多重比較(P<0.05)分析,多酚組分與抗氧化活性變化采用主成分分析(principal component analysis,PCA),其中變量為8(品種)×7(組分),通過PCA降維所得載荷圖和不同品種樣品得分圖,分析大麥發(fā)芽前后多酚組分變化趨勢。每組實驗至少重復(fù)3 次,結(jié)果表示為 ±s。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 大麥發(fā)芽前后多酚含量變化

    由表2可知,大麥發(fā)芽前后多酚含量變化顯著,所得結(jié)果與朱麗麗[9]、綦文濤[25]等研究相似。除Baudin、Sebastion外,大麥發(fā)芽后游離酚、結(jié)合酚、總酚含量均顯著升高(P<0.05),較發(fā)芽前提升1.19~2.75、1.02~2.40 倍和1.24~2.21 倍,其中,Hindmarsh與Irima游離酚含量增幅最大(分別為2.75 倍和2.25 倍),Scope與Metcalf結(jié)合酚含量增幅最大(分別為2.40 倍和2.07 倍),Hindmarsh與Irima總酚含量增幅最大(分別為2.21 倍和2.11 倍)。此外,Hindmarsh大麥發(fā)芽后,其游離、結(jié)合及總酚含量均最高(分別為(409.66±13.22)、(196.19±5.89)、(605.86±12.98)mg/100 g)。而Sebastion發(fā)芽后游離、結(jié)合及總酚含量均顯著下降(P<0.05),Baudin結(jié)合酚與總酚含量顯著下降(P<0.05),而游離酚含量顯著上升(P<0.05),這可能是發(fā)芽過程中多酚組分與其他還原性物質(zhì)的平衡發(fā)生改變導(dǎo)致的。

    表2 大麥發(fā)芽前后多酚含量Table 2 Free and bound phenolic contents of eight varieties of barley and corresponding malts mg/100 g

    2.2 大麥發(fā)芽前后多酚組分鑒定

    圖1 多酚標(biāo)準(zhǔn)品高效液相色譜圖Fig. 1 Chromatograms of polyphenol standard mixture

    表3 標(biāo)準(zhǔn)品的回歸方程Table 3 Regression equations for polyphenol standard substances

    表4 大麥發(fā)芽前后游離酚組分和含量Table 4 Tpyes and contents of free polyphenols in barley and malt μg/g

    表5 大麥發(fā)芽前后結(jié)合酚組分和含量Table 5 Types and contents of bound polyphenols in barley and malt μg/g

    多酚標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖及回歸方程如圖1和表3所示。由表4和表5可知,大麥發(fā)芽前后游離酚、結(jié)合酚組分變化顯著。

    在游離酚中,大麥發(fā)芽后,沒食子酸和阿魏酸總體顯著高于原始大麥(P<0.05),增高幅度分別為21%~360%,49%~148%;而原兒茶素、葒草素總體顯著降低,降低幅度分別為5%~71%,7%~100%。其中,發(fā)芽后沒食子酸、阿魏酸含量最高的是Hindmarsh((72.69±2.00)、(127.89±2.94)μg/g)與Irima((63.90±0.68)、(124.18±9.88)μg/g)。此外,Metcalf大麥在發(fā)芽后檢測到新物質(zhì)葒草素,而Metcalf大麥中咖啡酸、Scope大麥中葒草素及Sebastion大麥中沒食子酸在發(fā)芽后均未被檢測到。這有可能是大麥發(fā)芽過程中多酚氧化酶、水解酶等作用,致使多酚某些特定組分與木質(zhì)素、阿拉伯木聚糖結(jié)合等變化引起的[26]。

    結(jié)合酚中,大麥發(fā)芽后,原兒茶素、香草醛、葒草素和阿魏酸總體顯著高于原始大麥(P<0.05),增高幅度分別為6%~117%、25%~195%、1%~94%和11%~109%。發(fā)芽后沒食子酸、原兒茶素、咖啡酸與槲皮素含量最高的是Scope((46.80±9.04)、(21.01±0.50)、(36.27±2.02)、(258.82±2.92)μg/g)。此外,較游離酚而言,結(jié)合酚增加了槲皮素。

    綜上,大麥發(fā)芽使得大部分單體酚含量增加,總酚含量呈上升趨勢,這可能與胚乳在發(fā)芽期間某些營養(yǎng)物質(zhì)的釋放和結(jié)合有關(guān)[9]。

    2.3 PCA法分析大麥發(fā)芽前后多酚組分變化

    圖2 大麥發(fā)芽前后游離酚PCAFig. 2 Principal component analysis of free phenolics in 8 varieties of barley and corresponding malts

    由圖2可知,在大麥游離酚中,提取前2 個主成分可以解釋89.37%的總變異,其中第1主成分包含最多的“信息量”,并以香草醛、原兒茶素、阿魏酸、沒食子酸、咖啡酸為主,可以解釋73.52%的總變異。在麥芽游離酚中,提取前2 個主成分可以解釋81.14%的總變異,其中第1主成分以原兒茶素、葒草素、阿魏酸、香草醛、沒食子酸為主,可以解釋56.24%的總變異。此外,這8 個品種大麥及麥芽均無明顯相似性,這可能是所檢測游離酚的品種差異性導(dǎo)致的。

    圖3 大麥發(fā)芽前后結(jié)合酚PCAFig. 3 Principal component analysis of bound phenolics in 8 varieties of barley and corresponding malts

    由圖3可知,大麥結(jié)合酚中,提取前2 個主成分可以解釋91.00%的總變異,其中第1主成分以沒食子酸、阿魏酸、香草醛、原兒茶素、槲皮素、咖啡酸為主,可以解釋78.20%的總變異。在麥芽結(jié)合酚中,提取前2個主成分可以解釋86.91%的總變異,其中第1主成分以咖啡酸、槲皮素、原兒茶素、阿魏酸為主,可以解釋70.92%的總變異。此外,這8 個品種大麥及麥芽均未表現(xiàn)出明顯相似性,這可能是所檢測結(jié)合酚的品種差異性導(dǎo)致的。

    2.4 大麥發(fā)芽前后多酚清除DPPH自由基能力

    圖4 大麥發(fā)芽前后游離酚(A)、結(jié)合酚(B)DPPH自由基清除能力(IC50值)Fig. 4 DPPH radical scavenging capacity (IC50) of free (A) and bound (B)phenolic of 8 varieties of barley and corresponding malts

    由圖4A可知,大麥發(fā)芽之后游離酚清除DPPH自由基能力顯著改變,其中Hindmarsh、Irima、Esterel、Metcalf、Commander及Baudin的IC50值顯著升高(P<0.05),表明這6 種大麥發(fā)芽之后游離酚清除DPPH自由基能力顯著下降;Scope、Sebastion的IC50值顯著下降(下降幅度依次為43%、21%)(P<0.05),表明這兩種大麥發(fā)芽后游離酚清除DPPH自由基能力顯著上升。另外,Scope大麥發(fā)芽之后游離酚清除DPPH自由基能力(IC50值為18.703 μg/mL)顯著高于其他品種(P<0.05)。由圖4B可知,大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚清除DPPH自由基能力顯著改變,Hindmarsh、Esterel、Metcalf及Commander的IC50值顯著下降(下降幅度依次為11%、46%、7%、6%)(P<0.05),表明這5 種大麥發(fā)芽后結(jié)合酚清除DPPH自由基能力顯著上升。另外,Esterel大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚清除DPPH自由基能力(IC50值為54.252 μg/mL)顯著高于其他品種(P<0.05)。

    綜上,大麥發(fā)芽后游離、結(jié)合酚清除DPPH自由基能力變化各有差異,但結(jié)合酚清除DPPH自由基能力普遍增強,其中,Scope大麥發(fā)芽之后游離酚清除DPPH自由基能力達到最高,Esterel大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚清除DPPH自由基能力達到最強。

    2.5 大麥發(fā)芽前后多酚的ORAC值

    圖5 大麥發(fā)芽前后游離酚(A)、結(jié)合酚(B)的ORAC值Fig. 5 Oxygen radical absorbance capacity of free (A) and bound (B)phenolics in 8 varieties of barley and corresponding malts

    由圖5A可知,大麥發(fā)芽之后游離酚的氧自由基吸收能力顯著改變,其中Irima、Commander及Sebastion的ORAC值顯著升高(上升幅度依次為130%、173%、167%)(P<0.05),表明這3 種大麥發(fā)芽之后游離酚氧自由基吸收能力顯著提升;Hindmarsh、Sebastion的ORAC值顯著下降(P<0.05),表明這兩種大麥發(fā)芽之后游離酚氧自由基吸收能力顯著下降。由圖5B可知,大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚的氧自由基吸收能力顯著改變,其中Esterel與Baudin的ORAC值顯著升高(上升幅度依次為129%、132%)(P<0.05),表明這兩種大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚氧自由基吸收能力顯著提升;Hindmarsh與Sebastion的ORAC值顯著下降(P<0.05),表明這兩種大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚氧自由基吸收能力顯著下降。

    綜上,大麥發(fā)芽后游離、結(jié)合酚氧自由基吸收能力變化各有差異,但總體呈上升趨勢,且結(jié)合酚氧自由基吸收能力普遍高于游離酚,其中,Commander大麥發(fā)芽之后游離酚氧自由基吸收能力達到最高,Baudin大麥發(fā)芽之后結(jié)合酚氧自由基吸收能力達到最強。

    3 結(jié) 論

    作為天然抗氧化劑的植物多酚是近幾年的研究熱點,谷物類多酚物質(zhì)的研究逐漸廣泛。大麥及麥芽作為啤酒工藝的主要原料,其品種屬性對啤酒品質(zhì)影響較大,多酚是大麥及麥芽中重要的抗氧化活性成分,對啤酒的穩(wěn)定性有著較大的影響[27-30]。本實驗以8 個品種釀造啤酒大麥及麥芽為原料,比較分析了大麥發(fā)芽前后多酚含量、組成及抗氧化活性的變化。

    結(jié)果表明,8 種大麥總酚含量范圍為(179.00±3.14)~(307.88±3.60)mg/100 g,麥芽總酚含量范圍為(187.13±2.81)~(605±7.67)mg/100 g,游離態(tài)多酚是大麥及麥芽多酚的主要存在形式(占53%~95%),發(fā)芽后的麥芽成品總酚含量顯著增加(P<0.05)。大麥及麥芽游離酚主要有阿魏酸、葒草素、沒食子酸、香草醛、原兒茶素5 種單體酚;而結(jié)合酚有阿魏酸、葒草素、沒食子酸、香草醛、原兒茶素、咖啡酸和槲皮素7 種單體酚。8 個品種大麥及麥芽均具有一定的抗氧化活性,清除DPPH自由基能力的IC50值范圍為(23.70±0.34)~(101.36±1.18)μg/mL,ORAC值范圍為(32.69±0.13)~(166.722±6.48)μmol/g,其中品種Scope麥芽游離酚清除DPPH自由基能力最強,品種Baudin麥芽結(jié)合酚的氧自由基吸收能力最好。發(fā)芽使沒食子酸、阿魏酸含量顯著上升,使游離、結(jié)合酚氧自由基吸收能力總體增強,結(jié)合酚清除DPPH自由基能力普遍提升,麥芽的總體抗氧化活性優(yōu)于大麥。

    大麥及麥芽富含多酚且具有較強的抗氧化活性,是植源性多酚的優(yōu)良來源之一。在大麥發(fā)芽過程中多酚含量呈上升趨勢,且單體酚含量的變化對多酚的抗氧化性具有較大的影響。進一步研究大麥多酚組分對抗氧化活性的影響,對啤酒工業(yè)生產(chǎn)具有重要意義。

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