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    鈷銫鍶3種核素對大腸桿菌的毒性研究

    2019-09-25 04:23:19黃志顏未蒯琳萍
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年6期
    關(guān)鍵詞:大腸桿菌

    黃志 顏未 蒯琳萍

    摘要:為了研究核電站建設(shè)運(yùn)營、礦源開采等行為對周邊環(huán)境的影響,以大腸桿菌為對象,通過繪制生長曲線以及MTT(噻唑藍(lán))法定量測量鈷(Co)、銫(Cs)、鍶(Sr)3種核素對大腸桿菌的毒性作用,得到了鈷、銫、鍶3種核素與大腸桿菌的劑量-抑菌率關(guān)系,同時(shí)通過測定細(xì)胞壁通透性以及胞內(nèi)活性氧含量,發(fā)現(xiàn)這3種離子對大腸桿菌的抑菌作用與細(xì)胞壁通透性以及胞內(nèi)活性氧的積累可能存在正相關(guān)關(guān)系。結(jié)果表明,Co2+、Sr2+、Cs+對大腸桿菌的半致死濃度分別為3.38、251、1 600 mg/L,其金屬毒性由強(qiáng)到弱順序?yàn)镃o2+>Sr2+>Cs+,并且Sr2+對大腸桿菌生長具有雙向性影響,低濃度(<10 mg/L)時(shí)表現(xiàn)為促進(jìn)生長作用,而濃度增高則表現(xiàn)為抑制作用。Co2+的抑菌作用與大腸桿菌細(xì)胞壁通透性增大有關(guān),而Sr2+、Cs+的抑菌作用通過金屬離子誘導(dǎo)細(xì)胞體內(nèi)活性氧含量增大,從而抑制細(xì)菌生長。從宏觀層面反應(yīng)了3種核素的金屬毒性,并從微觀層面進(jìn)行了機(jī)理的探討,為后續(xù)研究鈷、銫、鍶等核素對生物體的致毒效應(yīng)以及環(huán)境中核素的生物監(jiān)測方法提供參考依據(jù)。

    關(guān)鍵詞:Co;Sr;Cs;金屬毒性;大腸桿菌;活性氧含量;細(xì)胞壁通透性

    隨著核技術(shù)在軍事、工農(nóng)業(yè)、科研等領(lǐng)域的廣泛應(yīng)用,由泄漏物質(zhì)造成的放射性污染以及鈷、銫、鍶等金屬產(chǎn)生的金屬毒性對周邊水域的影響也引起了廣泛的關(guān)注[1]。我國核工業(yè)高速發(fā)展使得核電站的建設(shè)已經(jīng)成為我國能源戰(zhàn)略中的一項(xiàng)重要議事,而內(nèi)陸核電站的建設(shè)更是面臨著更嚴(yán)格的安全考量。由于內(nèi)陸核電站受納水體容積小,一旦發(fā)生泄漏,將對周圍居民的生活帶來巨大的影響,因此為保證環(huán)境污染水平監(jiān)測的可靠性,內(nèi)陸核電站需要更多的科學(xué)評價(jià)標(biāo)準(zhǔn)[2]。同時(shí)由于磷酸鹽礦、煤礦、鐵礦等礦源經(jīng)常伴隨著天然核素的存在,這些礦源的開采利用也將會(huì)對環(huán)境帶來污染[3]。核素通過擴(kuò)散遷移流入到生態(tài)環(huán)境中,最終會(huì)對人類健康產(chǎn)生各種影響[4-5],因此需要采取有效的手段進(jìn)行污染檢測。生物監(jiān)測可作為一項(xiàng)重要的手段,能夠更加客觀地評價(jià)內(nèi)陸核電站在正常運(yùn)行、事故工況以及退役過程中釋放的核素對環(huán)境產(chǎn)生的影響[6]。同時(shí),隨著核能源的大力發(fā)展,核廢料的處理量也在逐年增長,而原料的開采以及廢料的處理,均不可避免地會(huì)對周圍環(huán)境造成一定的影響,尤其是像鈷、銫、鍶等核素,如何評價(jià)這些核素對環(huán)境的影響也成了當(dāng)務(wù)之急。

    作為自然界中數(shù)量最多、生物量最大、對生命元素循環(huán)具有最大影響的種群,在水體環(huán)境監(jiān)測上,微生物具有得天獨(dú)厚的優(yōu)勢[7]。低等微生物對環(huán)境中包括核素在內(nèi)的金屬污染物、有機(jī)化合物等污染會(huì)表現(xiàn)得更加敏感,它們能夠最快地感受到生態(tài)系統(tǒng)中環(huán)境質(zhì)量的變化,并通過相關(guān)機(jī)制做出反應(yīng)。因此,微生物被認(rèn)為是最有潛力的指示生物[8]。大腸桿菌是重要的微生物研究材料,也是重要的環(huán)境污染指示菌,以大腸桿菌為研究對象,能夠更普遍地反應(yīng)核素泄漏對環(huán)境的影響,也能夠通過跟蹤污染區(qū)域的大腸桿菌生長情況來評估該區(qū)域的污染程度。

    MTT(噻唑藍(lán))比色法一般用于細(xì)胞活性檢測,利用雙波長法可以有效地去除包括死菌體、培養(yǎng)基在內(nèi)的干擾物對試驗(yàn)的影響[9]。傳統(tǒng)的平板計(jì)數(shù)工作量大,耗時(shí)長,與之相比,MTT法工作量小,操作快捷并且重復(fù)性高,已經(jīng)廣泛應(yīng)用于細(xì)胞毒性試驗(yàn)。近年來MTT法也越來越多地應(yīng)用于活菌數(shù)的測量,本試驗(yàn)利用MTT法測量大腸桿菌的存活率,數(shù)據(jù)可靠且重復(fù)性高。

    目前,在農(nóng)藥等污染領(lǐng)域中,將微生物作為污染指示生物的相關(guān)研究已經(jīng)取得了令人矚目的成就[10]。然而,在核素污染領(lǐng)域,選用微生物進(jìn)行生物監(jiān)測的研究鮮有報(bào)道。本試驗(yàn)通過研究Co、Sr、Cs 3種核素外源添加對大腸桿菌生長速率的影響,定性反映核素對大腸桿菌的抑制作用,再利用MTT法定量檢測3種核素對大腸桿菌的半致死濃度,最后從細(xì)胞壁通透性變化以及氧化損傷2個(gè)方面研究鈷、銫、鍶3種金屬離子的致毒機(jī)理,為核電站泄漏污染物的生物監(jiān)測提供相關(guān)參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 菌種

    大腸桿菌(Escherichia coil-DH5α):2017年6月購置于上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院,并于農(nóng)業(yè)生物學(xué)院資源環(huán)境實(shí)驗(yàn)室完成本試驗(yàn)。

    1.2 儀器

    紫外分光光度計(jì)、實(shí)驗(yàn)室高壓蒸汽滅菌鍋、恒溫培養(yǎng)箱、振蕩渦旋器、水浴搖床、酶標(biāo)儀、冷凍離心機(jī)、移液槍和超凈工作臺(tái)。

    1.3 試劑

    金屬離子均為氯化物:氯化鈷、氯化鍶、氯化銫。相關(guān)研究表明,不同陰離子對金屬離子的毒性有不同影響,在研究較為廣泛的Cl-、NO3-、OAc-這3種陰離子中,氯離子對金屬離子毒性影響較小[11]。其他試劑:MTT(噻唑藍(lán))、二甲亞砜(DMSO)、磷酸鹽緩沖溶液(PBS)、氯化鈉、活性氧ROS檢測試劑盒、堿式磷酸酶檢測試劑盒。

    1.4 培養(yǎng)基

    R2A液體培養(yǎng)基:胰蛋白胨0.25 g,酸水解酪蛋白 0.5 g,酵母浸粉0.5 g,可溶性淀粉0.5 g,磷酸氫二鉀0.3 g,硫酸鎂0.1 g,丙酮酸鈉0.3 g,蛋白胨0.25 g,葡萄糖0.5 g,蒸餾水1 000 mL自然溶解,pH值為7.1~7.3。試驗(yàn)前需要121 ℃高溫滅菌20 min。

    1.5 試驗(yàn)方法

    1.5.1 濃度梯度培養(yǎng)基配制 反應(yīng)體系總體積均為 100 mL,體系營養(yǎng)成分均為R2A液體培養(yǎng)基,加入適量金屬離子溶液,配制不同濃度梯度金屬離子液體培養(yǎng)基:Co2+液體培養(yǎng)基中Co2+濃度分別為0(對照組)、5、10、20、40 mg/L;Cs+液體培養(yǎng)基中銫離子濃度分別為0(對照組)、10 、100、1 000、2 000 mg/L;Sr2+液體培養(yǎng)基中Sr2+濃度分別為0(對照組)、10、100、1 000、2 000 mg/L。通過繪制各金屬離子脅迫下大腸桿菌的生長曲線,來確定最佳孵育時(shí)間以及后續(xù)試驗(yàn)的濃度范圍。

    MTT法定量測量核素的金屬毒性中,根據(jù)生長曲線判斷合適的離子濃度。此時(shí)的濃度梯度設(shè)置為Co2+液體培養(yǎng)基中Co2+濃度分別為0(對照組)、1、2.5、5、10、15、20 mg/L;Cs+液體培養(yǎng)基中Cs+濃度分別為0(對照組)、200、400、800、1 600、3 200 mg/L;Sr2+液體培養(yǎng)基中Sr2+濃度分別為0(對照組)、10、50、100、200、400、800、1 600 mg/L。每組設(shè)置3個(gè)平行樣。

    磷酸酶活性、活性氧含量測量試驗(yàn)組中各濃度梯度:Co2+液體培養(yǎng)基中Co2+濃度分別為0(對照組)、1、2、4、6、8、10 mg/L;Cs+液體培養(yǎng)基中Cs+濃度分別為0(對照組)、200、400、800、1 600、3 200 mg/L;Sr2+液體培養(yǎng)基中Sr2+濃度分別為0(對照組)、10、50、100、150、200、250 mg/L。每組設(shè)置3個(gè)平行樣。

    1.5.2 大腸桿菌生長曲線繪制 從細(xì)菌平板上挑選長勢良好的細(xì)菌接種至100 mL R2A液體培養(yǎng)基中,恒溫水浴(37 ℃)振蕩培養(yǎng)24 h,復(fù)蘇細(xì)菌待用。

    按照1 ∶ 100的接種比例,從已復(fù)蘇的菌液中吸取1 mL接入盛有100 mL各濃度梯度Co2+液體培養(yǎng)基的三角瓶中,振蕩混合均勻后分裝至具塞試管,每試管分裝5 mL,封口,置于37 ℃恒溫水浴振蕩培養(yǎng)。每隔1 h左右取出1組試管,測量其在600 nm波長下的吸光度。氯化鍶、氯化銫試驗(yàn)組除培養(yǎng)基配制不同外其余操作相同。

    1.5.3 MTT法檢測大腸桿菌在3種核素影響下的存活率 噻唑藍(lán)[3-3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide,簡稱MTT]法是常用于檢測細(xì)胞存活的一種方法,其原理是活細(xì)胞中琥珀酸脫氫酶能夠還原外源性MTT為不溶于水的藍(lán)色晶體甲瓚(formazan),通過二甲亞砜溶解甲瓚,測量溶液在特定波長下的吸光度,間接反映細(xì)胞存活數(shù)量。

    稱取250 mg MTT溶于50 mL PBS緩沖溶液(0.01 mol/L,pH=7.2),振蕩使其充分溶解,使用微孔過濾器除菌,鋁箔包好放置于-20 ℃下冷凍待用。按照濃度梯度設(shè)置配制氯化鈷液體培養(yǎng)基并接種活化的大腸桿菌,水浴振蕩培養(yǎng)4 h。

    孵育培養(yǎng)4 h后于試管中吸取1 mL菌液至1.5 mL EP管中,加入200 μL 5 mg/mL MTT溶液,振蕩搖勻,避光放置于37 ℃生化培養(yǎng)箱中,繼續(xù)孵育1 h。

    孵育完成后取出EP管,放入高速冷凍離心機(jī)12 000 g離心10 min,小心吸去上清液,加入1 mL二甲亞砜溶液,振蕩搖勻后將混合液鋪至96孔板,每孔200微升并設(shè)置復(fù)孔,酶標(biāo)儀檢測510 nm以及690 nm波長下的吸光度。Co2+、Sr2+、Cs+試驗(yàn)組操作除培養(yǎng)基配制外均相同。

    1.5.4 大腸桿菌在3種核素影響下的堿式磷酸酶活性測量 按照濃度梯度要求配制100 mL R2A液體培養(yǎng)基,同時(shí)接種1 mL新鮮菌液至培養(yǎng)基中,水浴振蕩孵育4 h。完成孵育培養(yǎng)后取菌液于12 000 g加速度條件下離心10 min,并按照堿性磷酸酶試劑盒說明書要求,取0.05 mL樣本加入0.5 mL PBS緩沖液,37 ℃水浴振蕩15 min,加入顯色劑 1.5 mL,并在520 nm條件下進(jìn)行吸光度測量,通過公式轉(zhuǎn)換得到堿性磷酸酶活性。每組試驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.5.5 大腸桿菌在3種核素影響下的活性氧含量測量 按照“1.5.4”節(jié)中方法制取不同試驗(yàn)樣本并離心取菌體,在加速度為12 000 g的條件下離心樣本10 min,小心吸去上清液并用生理鹽水充分洗滌細(xì)菌菌體,按照活性氧(ROS)試劑盒說明書要求,測試其活性氧含量。加入DCFH-DA(2′,7′-二氯熒光黃雙乙酸鹽)于上述菌體中,并保證工作濃度為 10 μmol/L,37 ℃孵育細(xì)胞30 min,12 000 g離心10 min,收集細(xì)菌菌體,并用PBS緩沖液洗滌2次,在次離心收集菌體用于熒光檢測。設(shè)置激發(fā)波長為550 nm,發(fā)射波長為525 nm,用于熒光強(qiáng)度檢測,每組試驗(yàn)重復(fù)3次。

    1.5.6 大腸桿菌在3種核素影響下的蛋白質(zhì)含量測量 按照“1.5.4”節(jié)中方法制取不同試驗(yàn)樣本。12 000 g離心 10 min,生理鹽水充分洗滌,取菌體溶于1 mL細(xì)菌裂解液。按照總蛋白定量試劑盒要求方法測定樣本中總蛋白的含量。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 3種核素脅迫作用對大腸桿菌生長速率的影響

    由圖1可知,孵育2 h內(nèi)大腸桿菌在新的培養(yǎng)環(huán)境中處于適應(yīng)期,其生長速度較為緩慢,隨后的7 h內(nèi)處于生長對數(shù)期。在接觸培養(yǎng)前期,10 mg/L的Cs+濃度對大腸桿菌損傷作用較小,但隨著接觸培養(yǎng)時(shí)間的延長,10 mg/L試驗(yàn)組中的生長曲線與對照組的差異逐漸增大,說明Cs+對大腸桿菌生長的影響作用會(huì)隨接觸時(shí)間的延長逐漸增強(qiáng)。在培養(yǎng)5 h后,10、100 mg/L試驗(yàn)組的吸光度與對照組相比下降8%、11%,而1 000、2 000 m/L試驗(yàn)組與對照組相比分別下降了31%、45%。可以看出,Cs+對大腸桿菌生長主要表現(xiàn)為抑制作用,且隨著劑量的增加,抑制作用逐漸增強(qiáng);隨著培養(yǎng)接觸時(shí)間延長,其抑制作用也在逐漸增強(qiáng)。

    由圖2可知,Sr2+對大腸桿菌的作用具有雙向性,主要表現(xiàn)在低濃度(10 mg/L)Sr2+下,大腸桿菌的生長比較迅速并且超過對照組,而隨著Sr2+濃度的增加,濃度大于等于 100 mg/L 后,大腸桿菌生長變緩、數(shù)量越來越少。培養(yǎng)4 h后,與對照組相比,100 mg/L Sr2+濃度的培養(yǎng)基中,大腸桿菌菌液D600 nm值下降25%,1 000 mg/L Sr2+濃度試驗(yàn)組D600 nm值下降42%。可以看出,與Cs+培養(yǎng)條件相比,添加Sr2+培養(yǎng)基中大腸桿菌的生長更緩慢;同時(shí),在1 000、2 000 mg/L高濃度試驗(yàn)組中大腸桿菌出現(xiàn)了提前進(jìn)入衰亡期的現(xiàn)象,即接觸反應(yīng)7 h后,低濃度試驗(yàn)組的大腸桿菌還處于對數(shù)期,而高濃度試驗(yàn)組大腸桿菌已經(jīng)進(jìn)入衰亡期。

    由圖3可知,5 mg/L Co2+對大腸桿菌的生長產(chǎn)生了明顯影響,其生長數(shù)量明顯低于對照組,且20、40 mg/L試驗(yàn)組中大腸桿菌幾乎無法生長。在培養(yǎng)5 h后,與對照組相比,5、10 mg/L 試驗(yàn)組中大腸桿菌D600 nm值分別下降58%、91%,高濃度Co2+(>20 mg/L)培養(yǎng)條件下大腸桿菌基本無法生長。

    2.2 MTT法檢測3種核素離子對大腸桿菌毒害性

    2.2.1 不同濃度Co2+對大腸桿菌生長情況的影響 由圖4可知,在Co2+濃度為10 mg/L時(shí)大腸桿菌的死亡率已經(jīng)達(dá)到93.2%,而當(dāng)Co2+濃度增加至20 mg/L時(shí)可以使98%以上的大腸桿菌死亡。對濃度取對數(shù),繪制大腸桿菌生長抑制效應(yīng)曲線,并通過直線擬合發(fā)現(xiàn)Co2+濃度與大腸桿菌生長抑制率呈現(xiàn)高度的線性關(guān)系,通過濃度擬合直線可以估算出Co2+對大腸桿菌的半致死效應(yīng)劑量約為3.38 mg/L。

    2.2.2 不同濃度Cs+對大腸桿菌生長情況的影響 如圖5所示,隨著Cs+濃度增高大腸桿菌的存活率逐漸減小。觀察曲線發(fā)現(xiàn)當(dāng)Cs+濃度在1 500 mg/L以下時(shí),隨著Cs+濃度升高大腸桿菌的死亡率迅速增大,但當(dāng)Cs+濃度高于 1 500 mg/L 后,大腸桿菌死亡率的增長逐漸趨于平緩。對濃度取對數(shù),使其為橫坐標(biāo), 繪制Cs+的抑菌效應(yīng)曲線, 擬合可得到Cs+對大腸桿菌的半致死率濃度約為1 600 mg/L。

    2.2.3 不同濃度Sr2+對大腸桿菌生長情況的影響 由圖6可知,在10 mg/L Sr2+濃度劑量下,大腸桿菌的死亡率為負(fù)值,說明其生長狀況優(yōu)于對照組。而隨著Sr2+濃度繼續(xù)提高,大腸桿菌的存活率逐漸減小,取濃度對數(shù)為橫坐標(biāo)繪制抑制曲線,通過直線擬合可以發(fā)現(xiàn),當(dāng)Sr2+濃度為13 mg/L時(shí),Sr2+對大腸桿菌生長情況與對照組基本持平,其生長情況與對照組相同,隨著Sr2+濃度的增加,大腸桿菌的生長受到明顯抑制,當(dāng)Sr2+濃度達(dá)到100 mg/L時(shí),大腸桿菌生長抑制率為40%。當(dāng)Sr2+濃度超過200 mg/L后,隨著Sr2+濃度提高大腸桿菌生長抑制率的增幅逐漸減緩,當(dāng)濃度達(dá)到400 mg/L時(shí)抑制作用達(dá)到最大,隨后抑制作用存在但隨著劑量的增大而開始減小。取濃度對數(shù)為橫坐標(biāo),對Sr2+濃度為0~400 mg/L時(shí)的大腸桿菌生長抑制率進(jìn)行擬合,可估算Sr2+對大腸桿菌生長半致死量約為251 mg/L。在試驗(yàn)階段發(fā)現(xiàn),當(dāng)Sr2+濃度超過400 mg/L后,培養(yǎng)液中出現(xiàn)了肉眼可見的渾濁,并且隨著氯化鍶配制濃度的增加,渾濁度呈現(xiàn)增加的趨勢。這可能是由于培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質(zhì)與Sr2+形成部分沉淀,降低了溶液中游離態(tài)Sr2+的存在,削弱了氯化鍶對大腸桿菌的毒害作用。

    2.3 3種核素離子對大腸桿菌堿性磷酸酶活性的影響

    由圖7可知,在1、2、4 mg/L Co2+濃度處理下,大腸桿菌胞外菌液中的堿式磷酸酶活性稍有增強(qiáng),由0.11 U/L增加到0.17 U/L,增幅約50%。隨著Co2+濃度從4 mg/L增大至 10 mg/L, 大腸桿菌胞外堿式磷酸酶活性由0.17 U/L增大至0.79 U/L,酶活性提高約4倍。由圖8可知,在0~800 mg/L Cs+濃度下,大腸桿菌胞外堿式磷酸酶活性也出現(xiàn)提升,其活力由0.29 U/L上升至0.47 U/L,但當(dāng)Cs+濃度大于 800 mg/L 時(shí),其胞外堿式磷酸酶活力基本不變。Sr2+對大腸桿菌胞外堿式磷酸酶活性的影響較小,在0~50 mg/L Sr2+濃度范圍內(nèi),大腸桿菌胞外堿式磷酸酶活性由0.26 U/L上升到0.33 U/L,隨后隨著Sr2+濃度的升高,其胞外堿式磷酸酶活性小幅波動(dòng),平均保持在0.33 U/L左右(圖9)。

    2.4 3種核素離子對大腸桿菌菌體活性氧含量的影響

    圖10顯示,在Co2+的作用下,大腸桿菌菌體活性氧含量隨著Co2+濃度升高呈現(xiàn)先緩慢增高后緩慢減弱的趨勢,與對照組相比,其相對熒光強(qiáng)度沒有明顯變化。而在Cs+、Sr2+的影響下,隨著金屬離子濃度的增加,大腸桿菌活性氧含量快速上升。由圖11可知,與對照組相比,400 mg/L Cs+濃度下,活性氧含量升高9.7%,1 600 mg/L Cs+濃度下活性氧含量升高74%,結(jié)合大腸桿菌在Cs+培養(yǎng)基中的存活率可以看出,Cs+的抑菌效應(yīng)與活性氧含量可能存在正相關(guān)關(guān)系。由圖12可知, 與對照組相比, 10 mg/L Sr2+濃度下, 活性氧含量相對減

    少4.7%,隨后增加Sr2+濃度,活性氧含量隨之上升;其中,與對照組相比,50 mg/L試驗(yàn)組中活性氧含量上升14.7%,200 mg/L 試驗(yàn)組中活性氧含量上升55.1%,此時(shí)繼續(xù)增加Sr2+濃度,活性氧含量的增加量基本趨于平緩,與大腸桿菌在Sr2+作用下的存活率可能存在一定的正相關(guān)關(guān)系。

    3 討論與結(jié)論

    目前在環(huán)境污染物生物監(jiān)測方向,主要監(jiān)測污染物為Pb2+、Ag+、Hg+、Cd2+、Cu2+、Zn2+,相關(guān)研究表明急性毒性由強(qiáng)到弱依次為Cd2+>Cu2+>Zn2+[12]。本試驗(yàn)以核電站的泄漏污染檢測為出發(fā)點(diǎn),主要研究Co2+、Cs+、Sr2+ 3種穩(wěn)定核素對大腸桿菌的影響,后續(xù)通過MTT法定量研究了大腸桿菌在3種核素下的抑制效應(yīng),反映了Co2+、Cs+、Sr2+ 3種核電站常見污染物對環(huán)境的毒性。

    研究發(fā)現(xiàn),Co2+的毒性最強(qiáng),在濃度為10 mg/L即可對大腸桿菌造成明顯的毒害作用,能夠抑制90%以上細(xì)菌生長,徐芳芳的研究表明Co2+濃度在11 mg/L時(shí)已經(jīng)具有明顯的抑菌作用[13],本試驗(yàn)結(jié)果與之相符。而Cs+的毒性最小,Sr2+則表現(xiàn)出了雙向性,在10 mg/L濃度下對大腸桿菌的生長表現(xiàn)了促進(jìn)作用,隨著濃度增高,促進(jìn)作用削弱抑制作用增強(qiáng),在400 mg/L時(shí)抑制作用最大,為48%。近年來有許多關(guān)于Sr2+對植物生長影響的報(bào)道,大多數(shù)研究成果表明,低濃度的Sr2+促進(jìn)植物生長而高濃度的鍶抑制植物生長[14-15],本試驗(yàn)中鍶對大腸桿菌生長作用與之類似。Cs+比Sr2+、Co2+對大腸桿菌的毒性稍小,500 mg/L Cs+對大腸桿菌生長抑制率低于20%。董新姣等通過最小抑菌濃度反映重金屬對大腸桿菌的毒性,發(fā)現(xiàn)Hg+(1 mg/L)>Cd2+(50 mg/L),Pb2+(50 mg/L)>Cu2+(100 mg/L)>Zn2+(200 mg/L)[16]。由此可以得出,Co2+對大腸桿菌毒性較強(qiáng),介于Hg+與Pb2+之間,而Sr2+、Cs+毒性較小。

    金屬離子對細(xì)菌的毒害表現(xiàn)為多方面聯(lián)合作用。Avery等研究發(fā)現(xiàn),Sr2+能夠改變酵母菌的細(xì)胞壁通透性[17]。細(xì)菌細(xì)胞壁具有抑制機(jī)械和滲透損傷的作用,能夠保持細(xì)胞外形,阻止大分子入侵。堿性磷酸酶主要存在于細(xì)菌的細(xì)胞壁與細(xì)胞膜之間,正常情況下細(xì)菌的培養(yǎng)液中檢測不到堿性磷酸酶的存在[18-19]。侯偉峰等通過測定菌液堿式磷酸酶活性,結(jié)合電導(dǎo)率的測定反映了植酸對大腸桿菌細(xì)胞壁的損壞情況[20]。Sun等研究結(jié)果證實(shí),Al3+的脅迫作用能改變植物細(xì)胞壁的通透性,致使磷酸酶外泄[21]。碳酸鹽礦物中的陽離子主要包括鈣、鎂、鐵、銅等元素。陳武研究表明,碳酸鹽礦物與大腸桿菌作用后堿性磷酸酶大量溢出,并通過電鏡掃描證明了這種堿性磷酸酶的溢出源自于大腸桿菌細(xì)胞壁被破壞后通透性增大導(dǎo)致[22]。本試驗(yàn)中,在Co2+作用下,大腸桿菌胞外堿性磷酸酶活性隨著Co2+濃度增加迅速上升,表明Co2+對大腸桿菌的細(xì)胞壁具有破壞作用,使得大腸桿菌的細(xì)胞壁通透性增加,繼而在胞外出現(xiàn)大量AKP??梢酝茰yCo2+對大腸桿菌的至毒機(jī)理可能是破壞細(xì)胞壁完整性,使細(xì)菌內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定性受到破壞,從而抑制細(xì)菌生長。Cs+、Sr2+試驗(yàn)組中大腸桿菌胞外堿式磷酸酶活性變化不大,其抑菌作用與細(xì)胞壁的通透性完整性變化相關(guān)性不大。

    金屬離子對微生物的毒性還體現(xiàn)在氧化損傷層面,研究表明金屬離子會(huì)誘導(dǎo)活性氧的產(chǎn)生,通過線粒體呼吸鏈引起細(xì)胞氧化應(yīng)激,導(dǎo)致氧化損傷[23]。金屬離子也能抑制抗氧化酶系統(tǒng),從而對細(xì)胞造成不可逆的損傷[24]。馮德玉等在油菜對鍶脅迫的生理生態(tài)響應(yīng)中發(fā)現(xiàn),Sr2+對細(xì)胞同樣具有氧化損傷作用,在Sr2+脅迫作用下其氧化損傷作用增強(qiáng),POD酶和SOD酶等抗氧化系統(tǒng)酶活性都出現(xiàn)了增高的現(xiàn)象[25]。本試驗(yàn)中在Co2+試驗(yàn)組中發(fā)現(xiàn)各組樣本中活性氧含量隨著Co2+濃度上升出現(xiàn)了先升后降的現(xiàn)象,但其變化幅度均在10%之內(nèi)。而Cs+、Sr2+試驗(yàn)組中活性氧含量檢測結(jié)果表明,外源添加的Cs+和Sr2+這2種金屬離子明顯提高了大腸桿菌菌體內(nèi)部活性氧含量,結(jié)合2種離子培養(yǎng)下的抑菌率可以推測Cs+與Sr2+對大腸桿菌的致毒效應(yīng)與其活性氧含量的積累有關(guān)。

    本試驗(yàn)結(jié)果表明,Co2+對大腸桿菌半致死濃度約為 3.38 mg/L,Sr2+對大腸桿菌半致死濃度約為251 mg/L,Cs+對大腸桿菌半致死濃度約為1 600 mg/L。Sr2+對大腸桿菌生長影響表現(xiàn)了雙向性,即低濃度(小于10 mgL)是表現(xiàn)為刺激生長,而高濃度下表現(xiàn)為抑制生長。Co2+的脅迫作用使大腸桿菌壁膜通透性發(fā)生改變造成堿性磷酸酶出現(xiàn)大量泄漏,表明Co2+毒性機(jī)理與其改變細(xì)胞壁膜通透性有關(guān)。Cs+與Sr2+的毒性與氧化損傷有關(guān),離子誘導(dǎo)胞內(nèi)活性氧的積累,達(dá)到了抑菌作用。

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