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    七氟醚后處理對失血性休克復(fù)蘇大鼠海馬氧化應(yīng)激及SIRT1/PGC-1α表達的影響

    2019-09-24 08:11:36王妍妍黃春霞朱守峰楊青青胡憲文
    中國藥理學(xué)通報 2019年10期
    關(guān)鍵詞:失血性貨號七氟醚

    王妍妍,張 麗,黃春霞,朱守峰,楊青青,胡憲文

    (安徽醫(yī)科大學(xué)第二附屬醫(yī)院麻醉與圍術(shù)期醫(yī)學(xué)科,安徽 合肥 230601)

    失血性休克是臨床常見的危重癥之一,再灌注策略是治療失血性休克的基本方法,但液體復(fù)蘇的同時可能會加重缺血組織的功能障礙,誘發(fā)缺血/再灌注損傷。腦組織,尤其是海馬組織,對缺血缺氧更加敏感,也更易發(fā)生缺血/再灌注損傷,而氧化應(yīng)激是腦缺血/再灌注損傷發(fā)生、發(fā)展過程中重要的一環(huán)[1]。

    七氟醚是一種揮發(fā)性吸入全身麻醉藥物,我們前期的研究表明,七氟醚后處理可通過減輕海馬CA1區(qū)膽堿能神經(jīng)元損傷,從而改善缺血/再灌注大鼠空間學(xué)習(xí)與記憶能力[2]。然而,七氟醚后處理對失血性休克復(fù)蘇大鼠海馬氧化應(yīng)激的影響尚未可知。有研究表明,上調(diào)沉默信息調(diào)節(jié)因子1 (silent information regulation 1,SIRT1)和過氧化物酶體增殖物激活受體γ共激活因子1α(peroxisome proliferator-activated receptor γ coactivator-1α,PGC-1α)蛋白的表達,可減輕氧化應(yīng)激反應(yīng)和線粒體功能障礙[3]。本實驗擬研究七氟醚后處理對失血性休克復(fù)蘇大鼠海馬氧化應(yīng)激及抗氧化應(yīng)激相關(guān)蛋白SIRT1和PGC-1α表達的影響,以探討七氟醚后處理發(fā)揮腦保護作用的初步分子機制,為臨床預(yù)防和治療腦缺血/再灌注損傷提供新的思路和實驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1實驗動物 健康成年♂ SD大鼠,清潔級,體質(zhì)量(300~350) g,由安徽醫(yī)科大學(xué)動物實驗中心提供,動物合格證號:SCXK(皖)2005-001。自由進食飲水,保持動物房內(nèi)溫度(20~25) ℃,濕度50%~55%,黑暗和光照各12 h。

    1.1.2試劑 七氟醚(貨號:83291),購自艾伯維公司;線粒體提取試劑盒(貨號:GMS10006.2),購自美國GENMED公司;超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活性測定試劑盒(貨號:A001-3),購自南京建成生物工程研究所;丙二醛(malonaldehyde,MDA)檢測試劑盒(貨號:S0131)、RIPA裂解液(貨號:P0013B)、BCA蛋白濃度測定試劑盒(貨號:P0012),購自碧云天生物技術(shù)有限公司;β-actin單克隆抗體(貨號:66009-I-Ig)、PGC-1α單克隆抗體(貨號:66369-I-Ig),均購自Proteintech公司;SIRT1單克隆抗體(貨號:9475S),購自美國Cell Signaling Technology公司;ECL顯影液(貨號:34095),購自美國Thermo Fisher Scientific公司。

    1.1.3儀器 雙向全自動輸液泵(美國Genie Touch公司);生物機能系統(tǒng)(上海奧爾科特生物科技有限公司);氣體監(jiān)測儀(深圳邁瑞生物醫(yī)療電子股份有限公司);七氟醚揮發(fā)罐(Grager公司);多功能酶標(biāo)儀(美國Thermo Fisher Scientific公司);凝膠成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司)。

    1.2 方法

    1.2.1動物分組 將大鼠按隨機數(shù)據(jù)表法分為3組(每組12只):假手術(shù)組(Sham 組)、失血性休克復(fù)蘇組(Shock組)、七氟醚后處理組(Sevo 組)。

    1.2.2大鼠失血性休克復(fù)蘇模型的制備 模型制備前,大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d,術(shù)前禁食8~12 h,可自由飲水。稱重后,腹腔注射3%戊巴比妥鈉(50 mg·kg-1)麻醉,仰臥位固定于實驗臺,經(jīng)口氣管內(nèi)插管,保持自主呼吸。消毒后,取頸正中切口,分離出右頸總動脈和左頸靜脈后,分別向近心端置入PE50管,連接三通后連接生物機能系統(tǒng),監(jiān)測平均動脈壓(mean arterial pressure,MAP)。通過頸靜脈輸注肝素500 U·kg-1,觀察10 min后,利用雙向全自動輸液泵經(jīng)右頸總動脈持續(xù)勻速抽血30 min,抽出的血液存儲于無菌10 mL注射器中,抽血量為大鼠總血容量的40%。抽血結(jié)束后1 h,于30 min內(nèi)經(jīng)左頸靜脈回輸全部抽血量,建立失血性休克復(fù)蘇模型。Sham組動靜脈置管等手術(shù)操作同Shock組,但不放血。

    1.2.3七氟醚后處理 參照文獻[4]介紹的方法實施七氟醚后處理。將即將接受血液回輸?shù)拇笫笾糜谧灾瓢朊荛]有機玻璃容器(30 cm×20 cm×20 cm)內(nèi),容器相對的兩面各留一直徑約2 cm的圓孔,分別作為進氣孔和出氣孔。出氣孔接呼氣末麻醉藥濃度監(jiān)測儀,持續(xù)監(jiān)測七氟醚、O2及CO2的濃度。容器底部鋪上適量鈉石灰,利用(95% O2,5% CO2)混合氣體帶動七氟醚通過進氣孔進入有機玻璃容器內(nèi),調(diào)節(jié)七氟醚揮發(fā)罐,使七氟醚呼氣末濃度達到2.4%,并維持30 min。Sham組和Shock組在相應(yīng)時間點被放入容器內(nèi),吸入95% O2,5% CO2混合氣30 min。

    1.2.4MAP的監(jiān)測 監(jiān)測并記錄放血即刻(T0)、放血結(jié)束即刻(T1)、血液回輸即刻(T2)和血液回輸結(jié)束即刻(T3)三組的MAP。

    1.2.5血氣分析 在上述T0、T1、T2、T3時間點,取0.2 mL動脈血進行血氣分析,記錄血pH值、堿剩余(base excess,BE)和乳酸(Lac)濃度。從動脈抽取0.2 mL血的同時,經(jīng)靜脈輸注0.2 mL生理鹽水,以作補充。

    1.2.6海馬線粒體的提取 自體血回輸24 h后,各組隨機選取6只大鼠,按50 mg·kg-1劑量腹腔注射3%戊巴比妥鈉,迅速斷頭取腦,分離出海馬組織。稱重后剪碎,加入按照線粒體分離試劑盒說明書配制的海馬線粒體裂解液,研磨后,將混合物置于1.5 mL EP管中,4 ℃、1 500×g離心10 min后取上清,10 000×g離心10 min,棄上清,所得沉淀即為線粒體,加入儲存液,重懸混勻后,置于4 ℃冰上待用。

    1.2.7海馬線粒體SOD活性檢測 取上述提取的海馬線粒體,利用BCA試劑盒測定線粒體蛋白濃度后,根據(jù)SOD測定試劑盒說明書,依次加樣對照孔、對照空白孔、測定孔、測定空白孔,37 ℃孵育20 min,測定各孔在450 nm處的吸光度,再根據(jù)相應(yīng)公式計算出相應(yīng)線粒體樣品的SOD活性。

    1.2.8海馬組織MDA含量測定 自體血回輸結(jié)束24 h后,取各組剩余的6只大鼠的海馬組織,保存于-80 ℃冰箱備用。將適量海馬組織剪碎后,置于玻璃勻漿器中,加入RIPA裂解液,研磨充分后冰浴30 min;混合物4 ℃、13 200 r·min-1離心30 min后,取上清。留部分上清做BCA蛋白定量,剩下部分上清液依據(jù)MDA檢測試劑盒說明書,基于MDA和硫代巴比妥酸反應(yīng)產(chǎn)生紅色產(chǎn)物的顯色反應(yīng),通過比色法,用酶標(biāo)儀分別測定不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品和各樣品在532 nm的吸光度,計算各樣品中的MDA含量。

    1.2.9Western blot法檢測SIRT1和PGC-1α蛋白的表達 取上述提取的剩余各組海馬組織蛋白,加入上樣緩沖液,100 ℃變性10 min,保存于-20 ℃。取蛋白進行8% SDS-PAGE電泳分離,并轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,TBST洗滌后,分別加入β-actin一抗(稀釋度1∶10 000)、SIRT1一抗(稀釋度1∶1 000)、PGC-1α一抗(稀釋度1∶1 000),4 ℃孵育過夜。次日TBST洗滌,用辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗室溫孵育1 h,TBST漂洗后,在暗室進行ECL顯影。采用凝膠成像系統(tǒng)拍照,通過Image J軟件測定蛋白條帶灰度值,以目的蛋白條帶灰度值與β-actin條帶灰度值的比值,反映目的蛋白的相對表達水平。

    2 結(jié)果

    2.1 各組不同時間點MAP的變化如Tab 1所示,T0時和T3時3組大鼠MAP比較無明顯差異(P>0.05);與Sham組比較,Shock組和Sevo組在T1和T2時MAP降低(P<0.05)。

    Tab 1 MAP during hemorrhagic shock and resuscitation

    2.2 各組動脈血氣分析結(jié)果如Tab 2所示,T0時和T3時3組大鼠pH值、BE和Lac值比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與Sham組比較,Shock組和Sevo組在T1和T2時pH值降低,BE值降低,Lac升高(P<0.05),且兩組間無明顯差異(P>0.05)。

    2.3 七氟醚后處理對失血性休克復(fù)蘇大鼠海馬線粒體SOD活性的影響SOD活性檢測結(jié)果顯示(Fig 1),與Sham組相比,Shock組海馬線粒體SOD活性明顯降低(P<0.05);與Shock組相比,Sevo組SOD活性增加(P<0.05)。

    Fig 1 Effects of sevoflurane postconditioning on activity of SOD in mitochondria isolated from hippocampus

    2.4 七氟醚后處理對海馬MDA含量影響MDA檢測結(jié)果顯示(Fig 2),與Sham組相比,Shock組MDA含量明顯增加(P<0.05);與Shock組相比,Sevo組MDA含量降低(P<0.05)。

    2.5 七氟醚后處理對失血性休克復(fù)蘇大鼠海馬SIRT1和PGC-1α蛋白表達的影響Western blot檢測結(jié)果顯示(Fig 3),與Sham組相比,Shock組SIRT1和PGC-1α表達增加(P<0.05);與Shock組相比,Sevo組SIRT1和PGC-1α表達增加(P<0.05)。

    3 討論

    七氟醚是近年來臨床常用的吸入麻醉劑,基礎(chǔ)和臨床研究證實,七氟醚預(yù)處理和后處理均能發(fā)揮腦保護作用。在Dang等[5]的研究中,七氟醚預(yù)處理可以影響腦缺血/再灌注后早期小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞的遷移、吞噬和增殖,從而改善腦神經(jīng)功能。也有實驗表明,七氟醚后處理可以抑制線粒體膜通透性轉(zhuǎn)換孔的開放,縮短缺血/再灌注大鼠在水迷宮實驗中的逃避潛伏期,下調(diào)促凋亡蛋白Bax,上調(diào)抗凋亡蛋白Bcl-2的表達,提示七氟醚后處理可以通過減輕線粒體功能障礙,減輕腦缺血/再灌注損傷[6]。

    Fig 2 Effects of sevoflurane postconditioning on content of MDA in hippocampus

    Fig 3 Effects of sevoflurane postconditioning on expression of SIRT1 and PGC-1α

    本實驗采用經(jīng)右頸總動脈放血30 min,缺血1 h后,在30 min內(nèi)回輸全部自體血的方法,制備大鼠失血性休克復(fù)蘇模型,模擬全身性缺血/再灌注過程。結(jié)果表明,與Sham組比較,Shock組和Sevo組放血后MAP明顯降低,pH值和BE降低,Lac升高,提示大鼠失血性休克模型制備成功?;剌斪泽w血后,MAP升高,pH值、BE和Lac與放血前無明顯差異,且大鼠均存活,提示復(fù)蘇成功。

    Tab 2 Arterial blood gases results

    腦缺血/再灌注損傷是一個多因素參與的病理生理過程,包括炎癥反應(yīng)、細胞內(nèi)鈣離子超載、興奮性氨基酸毒性作用,以及與ATP生成減少、活性氧(ROS)蓄積、線粒體功能障礙等有關(guān)的氧化應(yīng)激[7-8]。MDA是機體內(nèi)氧化應(yīng)激損傷的產(chǎn)物之一,對細胞的代謝和功能均有明顯的影響,其含量的高低也能體現(xiàn)機體受ROS攻擊和損傷的程度[9]。本實驗中,Shock組大鼠海馬組織MDA含量明顯增加,其原因可能是失血性休克復(fù)蘇增加了大鼠腦內(nèi)ROS的產(chǎn)生,蓄積的ROS引發(fā)了脂質(zhì)過氧化反應(yīng)。而七氟醚后處理減少了MDA的產(chǎn)生,改善了腦組織氧化應(yīng)激損傷。SOD是機體關(guān)鍵的抗氧化超氧歧化物酶類,其水平可以間接反映機體抗氧化應(yīng)激能力[10]。檢測失血性休克與復(fù)蘇大鼠海馬線粒體SOD活性發(fā)現(xiàn),與Sham組相比,其活性明顯降低,而七氟醚后處理可以增加線粒體SOD活性,表明七氟醚后處理可能通過線粒體相關(guān)信號途徑,提高機體抗氧化應(yīng)激能力。

    為了進一步探討七氟醚后處理減輕失血性休克復(fù)蘇大鼠氧化應(yīng)激可能的分子機制,本實驗采用Western blot法檢測海馬組織中SIRT1和PGC-1α蛋白的表達。SIRT1是NAD+依賴的組蛋白去乙?;?,在抵抗氧化應(yīng)激、抑制細胞凋亡及神經(jīng)細胞保護等方面發(fā)揮調(diào)控作用[11]。PGC-1α是SIRT1的作用底物之一,參與線粒體生物合成及功能維持,是在抗氧應(yīng)激作用中有重要作用的轉(zhuǎn)錄因子。研究表明,SIRT1表達增加可以激活PGC-1α的轉(zhuǎn)錄,從而增加線粒體密度,進而通過誘導(dǎo)抗氧化酶的表達、清除活性氧、抗線粒體損傷等,提高機體抗氧化應(yīng)激能力[12-13]。本研究發(fā)現(xiàn),與Shock組相比,Sevo組SIRT1和PGC-1α蛋白表達增加,表明七氟醚后處理可以促進SIRT1和PGC-1α蛋白的表達,增強機體抗氧化應(yīng)激能力。而Shock組的SIRT1和PGC-1α表達量高于Sham組,可能是失血性休克復(fù)蘇刺激了內(nèi)源性SIRT1和PGC-1α的表達,以抵抗缺血/再灌注損傷過程中的氧化應(yīng)激等損傷。

    綜上所述,七氟醚后處理可以通過上調(diào)SIRT1、PGC-1α蛋白的表達,減輕失血性休克復(fù)蘇大鼠海馬的氧化應(yīng)激反應(yīng)。有研究證實[14],PGC-1α可與下游的核呼吸因子1結(jié)合,再激活線粒體轉(zhuǎn)錄因子A,產(chǎn)生更多的生物學(xué)效應(yīng)。本課題組也將深入研究SIRT1/PGC-1α及下游分子在七氟醚后處理減輕腦缺血/再灌注損傷中的作用。

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