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    不同氣相條件對(duì)單株產(chǎn)氫菌降解煤制氫的影響*

    2019-09-24 00:59:58趙偉仲
    煤炭轉(zhuǎn)化 2019年5期
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)氫氦氣煤樣

    李 丹 趙偉仲 李 楓

    0 引 言

    為適應(yīng)當(dāng)今時(shí)代綠色發(fā)展,氫氣作為一種高效清潔能源,它的開(kāi)發(fā)利用將成為世界各國(guó)發(fā)展的主旋律。生物發(fā)酵產(chǎn)氫作為一種有廣闊發(fā)展前景的能源制備技術(shù)應(yīng)運(yùn)而生。生物暗發(fā)酵制氫技術(shù)因成本低、耗能小以及發(fā)展前景優(yōu)越引起廣泛關(guān)注,眾多學(xué)者對(duì)生物發(fā)酵產(chǎn)氫從宏觀到微觀進(jìn)行了廣泛的研究。HARUHIKO et al[1-2]培養(yǎng)的高效產(chǎn)氫菌取得了顯著成效。有學(xué)者利用基因敲除法從小球藻抽脂殘留物中獲得了產(chǎn)氣腸桿菌工程菌,產(chǎn)氫效率為54.61 mL/g[3]。目前,發(fā)酵產(chǎn)氫技術(shù)的底物僅僅限于有機(jī)廢水[4]或秸稈[5]等,也有一些進(jìn)行聯(lián)合發(fā)酵制氫的研究[6],但以煤為發(fā)酵底物的產(chǎn)氫技術(shù)報(bào)道較鮮見(jiàn)。蘇現(xiàn)波等[7]研究了煤厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫條件,包括不同的培養(yǎng)基底物以及不同量的輔助菌種等,這對(duì)于生物采煤和生物采殘煤有重要意義,為煤炭資源的安全和有效開(kāi)采開(kāi)辟了一條新的途徑,具有增加能源儲(chǔ)備和溫室減排的社會(huì)效益和環(huán)境效益。

    本實(shí)驗(yàn)在前期研究的基礎(chǔ)上,從礦井水中對(duì)煤層本源菌進(jìn)行富集篩選,成功分離出一株高效產(chǎn)氫菌,對(duì)菌株進(jìn)行了鑒定,優(yōu)選出最適碳源作為富集培養(yǎng)的底物。以煤為發(fā)酵底物,不同氣相條件作為發(fā)酵產(chǎn)氫菌的影響因子,進(jìn)行發(fā)酵產(chǎn)氫實(shí)驗(yàn),測(cè)定菌種生長(zhǎng)特性及發(fā)酵產(chǎn)氫能力。通過(guò)對(duì)產(chǎn)氫速率及產(chǎn)氫量來(lái)確定最優(yōu)質(zhì)的氣相條件,對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)束的煤樣進(jìn)行蘭氏體積和密度分析,探討單株產(chǎn)氫菌對(duì)煤樣的降解情況,以便為煤發(fā)酵制氫工程提供參考依據(jù)。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 樣品的制備及菌種來(lái)源

    采集塊狀煤樣,按照GB/T 474-2008《煤樣制備方法》,利用粉碎機(jī)將煤樣破碎、研磨,最后篩選粒徑為0.180 mm~0.250 mm的煤樣顆粒。以義馬礦井水作為菌種來(lái)源。

    1.2 培養(yǎng)基配方

    為分離出產(chǎn)氫菌群,采用以下配方對(duì)義馬礦井水中的菌群進(jìn)行富集與培養(yǎng):胰化酪蛋白,1.0 g;MgCl2·6H2O,0.1 g;K2HPO4·3H2O,0.4 g;NH4Cl,1 g;NaCl,2.0 g;酵母膏,1.0 g;EDTA二鈉,2.0 g;L-鹽酸半胱氨酸,0.5 g;NaHCO3,2.0 g;超純水,1 000 mL;煤,10 g;微量元素液,10 mL;pH=7.0[8]。添加的碳源為:葡萄糖、乳糖、甘露醇,10 g。為了進(jìn)一步篩選出單一產(chǎn)氫菌株,在富集培養(yǎng)基中加入瓊脂粉制作篩選平板。

    1.3 氣體收集方法

    采用倒置排水集氣法對(duì)生成的氣體進(jìn)行收集。為避免集水瓶中液體因重力流入反應(yīng)瓶造成反應(yīng)液鹽度增高而影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果,集氣瓶中采用超純水。

    1.4 實(shí)驗(yàn)方案

    1.4.1 分離菌種

    利用義馬礦井水進(jìn)行微生物暗發(fā)酵產(chǎn)氫實(shí)驗(yàn),取產(chǎn)氣高峰期菌液備用。

    將初次分離的產(chǎn)氫菌液均勻涂布于平板培養(yǎng)基,放置于30 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),觀測(cè)菌落生長(zhǎng)情況,按菌落的形態(tài)學(xué)特征使用接種環(huán)挑取形態(tài)一致、生長(zhǎng)完好的單菌落進(jìn)行多次重復(fù)篩選,取得單一菌株作為產(chǎn)氫實(shí)驗(yàn)的菌種來(lái)源。

    1.4.2 菌種鑒定

    按SK8255(細(xì)菌)試劑盒進(jìn)行基因組DNA提取。采用通用引物7F1540R和27F1492R,將得到的細(xì)菌基因組16SrDNA作為模板進(jìn)行PCR(體外基因擴(kuò)增技術(shù))擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系為:Template(基因組DNA 20 ng/μL~50 ng/μL)0.5 μL,10×Buffer(with Mg2+)2.5 μL,脫氧核糖核苷酸三磷酸dNTP(2.5 mmol/L)1 μL,酶0.2 μL,上游引物F(10 μmol/L)0.5 μL,下游引物R(10 μmol/L)0.5 μL、加雙蒸H2O至25 μL。PCR循環(huán)條件為:94 ℃預(yù)變性4 min,94 ℃高溫變性45 s,55 ℃低溫退火45 s,72 ℃引物延伸1 min,進(jìn)行30個(gè)循環(huán),72 ℃修復(fù)延伸10 min,4 ℃保存,并用1%瓊脂糖電泳(150 V,100 mA,20 min)觀察結(jié)果?;厥盏腜CR產(chǎn)物用PCR引物直接測(cè)序,在NCBI上進(jìn)行blast比對(duì)分析。

    1.4.3 優(yōu)選營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)

    為保證實(shí)驗(yàn)成功,選取鑒定出的高效產(chǎn)氫菌可利用的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)[9-11],對(duì)這些物質(zhì)進(jìn)行控制單一變量產(chǎn)氫實(shí)驗(yàn),選擇能使菌種發(fā)揮最大產(chǎn)氫能力的碳源。

    1.4.4 發(fā)酵產(chǎn)氫

    利用富集后的高效產(chǎn)氫菌進(jìn)行產(chǎn)氫實(shí)驗(yàn),培養(yǎng)基使用優(yōu)選出來(lái)的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。樣品分裝情況見(jiàn)表1。在反應(yīng)瓶左側(cè)通入相應(yīng)氣體,檢測(cè)其產(chǎn)氣速率,利用分光光度計(jì)定期測(cè)定菌液濃度的變化。對(duì)原煤與實(shí)驗(yàn)結(jié)束后的煤樣進(jìn)行密度及蘭氏體積測(cè)試,烘干煤樣,進(jìn)行脫酸處理,測(cè)定反應(yīng)前后煤樣密度與蘭氏體積值。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 菌種分離純化結(jié)果

    利用產(chǎn)氫培養(yǎng)基,從義馬礦井水中分離篩選得到形態(tài)清晰完好,生長(zhǎng)狀況穩(wěn)定,繁殖迅速,兼性厭氧型的單菌落,形態(tài)如圖1所示。

    圖1 單菌落照片F(xiàn)ig.1 Photo of bacterial colonies

    2.2 菌種鑒定結(jié)果

    以分離純化得到的單一菌株基因組16SrDNA作為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增lip基因,經(jīng)1%瓊脂糖電泳檢測(cè)得到約為1 495 bp的DNA片段(見(jiàn)圖2)。

    圖2 菌株lip PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 Electrophoresis result of PCR product of lip genes

    一般認(rèn)為,序列相似率在95%~99%之間定義為屬,序列相似率達(dá)到99%定義為種[12]。菌株的16SrDNA測(cè)序結(jié)果見(jiàn)表2。由表2可知,在NCBI相關(guān)序列中blast對(duì)比后表明,該菌株屬于腸桿菌屬(Enterobacter)與Enterobactercloacaestrain AR0093 的序列同源性達(dá)到100%,為革蘭陰性粗短桿菌,最適生長(zhǎng)溫度為30 ℃,兼性厭氧細(xì)菌,可利用大部分醇類(lèi)和糖類(lèi)作為底物產(chǎn)氫[13-14],已廣泛用于研究生物降解制氫領(lǐng)域,本實(shí)驗(yàn)命名為EnterobactercloacaeYM-01。

    2.3 不同碳源培養(yǎng)條件下菌種的產(chǎn)氫能力

    為比較EnterobactercloacaeYM-01在不同碳源條件下的產(chǎn)氫能力,本實(shí)驗(yàn)選取三種成本低廉、能被多數(shù)細(xì)菌利用的糖類(lèi)及醇(甘露醇、葡萄糖和乳糖)為底物。不同碳源條件下累積產(chǎn)氣量見(jiàn)圖3。由圖3可知,在100 h之前,菌群降解不同的碳源得到的氫氣產(chǎn)量差別較小,甘露醇先結(jié)束產(chǎn)氫。葡萄糖和乳糖的產(chǎn)氫周期相同,但葡萄糖在整個(gè)實(shí)驗(yàn)中始終處于領(lǐng)先地位,產(chǎn)氫速率最快,累積產(chǎn)氣量達(dá)到127 mL。說(shuō)明該菌對(duì)葡萄糖的利用更高效,此條件下的產(chǎn)氫能力最強(qiáng)。

    表2 菌株16SrDNA核苷酸序列結(jié)果
    Table2Strainsof16SrDNAnuclearacidsequence

    2.4 不同氣相條件下菌種濃度及其產(chǎn)氣量的變化

    本實(shí)驗(yàn)選用氦氣、空氣、一氧化碳和二氧化碳作為不同氣相條件,控制通氣速率和時(shí)間,研究它們對(duì)反應(yīng)液中EnterobactercloacaeYM-01繁殖能力的不同氣相條件下的累積產(chǎn)氣量見(jiàn)圖5。由圖5可以看出,對(duì)于空氣和一氧化碳來(lái)說(shuō),產(chǎn)氣量開(kāi)始較低,之后出現(xiàn)小幅度的提高,但產(chǎn)氣量仍然很小,最大值分別為86 mL和98 mL。在氦氣和二氧化碳條件下,產(chǎn)氫能力明顯提高,產(chǎn)氣速率較快,其最大產(chǎn)氫速率分別達(dá)到1.87 mL/h和1.30 mL/h,累計(jì)產(chǎn)氣量分別為224 mL和156 mL,是空氣條件下的2倍。由圖4和圖5還可以看出,相應(yīng)產(chǎn)氣總量的變化和菌液濃度值呈現(xiàn)較好的對(duì)應(yīng)關(guān)系(菌液濃度越高,產(chǎn)氣量越大)。

    圖3 不同碳源條件下累積產(chǎn)氣量Fig.3 Cumulative gas production at different carbon sources

    影響。用分光光度計(jì)(設(shè)定波長(zhǎng)為420 nm)測(cè)定OD值表征不同氣相條件下菌種濃度的變化(見(jiàn)圖4)。由圖4可知,在以空氣和一氧化碳為氣相條件下,隨著時(shí)間的推移菌群濃度變化相似,均呈現(xiàn)先增后減的趨勢(shì),在45 h時(shí)達(dá)到峰值,之后菌群濃度下降,繁殖能力減弱;在以氦氣和二氧化碳為氣相條件下,菌種濃度與時(shí)間呈現(xiàn)正相關(guān)關(guān)系,分別達(dá)到0.983 Abs和0.732 Abs。

    圖4 不同氣相條件下菌液OD值Fig.4 OD value of bacterium at different gas phases

    圖5 不同氣相條件下累積產(chǎn)氣量Fig.5 Cumulative of gas production at different gas phases

    綜上分析,四種氣相條件下細(xì)菌的生長(zhǎng)繁殖能力均不同:1) 該菌在以空氣為氣相條件時(shí)仍能生長(zhǎng),但與煤反應(yīng)產(chǎn)生的氫氣量很少,這說(shuō)明在該氣相條件下菌種能夠生長(zhǎng)。當(dāng)發(fā)酵時(shí)間足夠長(zhǎng)時(shí),菌液濃度降低,菌株的生長(zhǎng)代謝受到抑制,可能與氧氣濃度有關(guān):首先,空氣中存在78%的氮?dú)?,但該條件下細(xì)菌的生長(zhǎng)繁殖能力沒(méi)有顯著增強(qiáng),氮?dú)鈱?duì)其沒(méi)有影響,說(shuō)明該菌株為非固氮菌;其次,空氣中存在21%的氧氣,說(shuō)明該氧氣濃度下不利于菌株的生長(zhǎng);2) 以CO為氣相時(shí),細(xì)菌生長(zhǎng)繁殖及產(chǎn)氫能力和以空氣為氣相時(shí)的情況類(lèi)似,在反應(yīng)時(shí)間達(dá)到45 h左右時(shí),達(dá)到峰值,而后持續(xù)下降,說(shuō)明細(xì)胞代謝繁殖受到抑制,CO累積到一定量使產(chǎn)氫菌細(xì)胞內(nèi)的氫化酶處于抑制狀態(tài)[15],因此菌液濃度下降;3) 以二氧化碳和氦氣作為氣相條件時(shí),菌液濃度一直呈上升趨勢(shì),這是因?yàn)?,反?yīng)裝置中的氧被吹脫,能使培養(yǎng)基中保持較低的氧化還原電位和厭氧環(huán)境,有利于厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫反應(yīng)的進(jìn)行[16],能夠比較充分地發(fā)揮細(xì)菌的產(chǎn)氫能力;4) 與氦氣相比,以二氧化碳為氣相時(shí),細(xì)菌的產(chǎn)氫能力較弱一些,這是由于二氧化碳溶解度較高,可以與培養(yǎng)基中的水進(jìn)行反應(yīng)生成碳酸,改變發(fā)酵環(huán)境的pH值,從而對(duì)細(xì)胞的代謝起到抑制作用[17]。氣相中較高的二氧化碳濃度會(huì)產(chǎn)生反饋抑制,其對(duì)產(chǎn)氫反應(yīng)的抑制性甚至高于氫氣的抑制性。另外,從反應(yīng)機(jī)制上分析,二氧化碳的濃度與NADH的殘量成反比,而NADH途徑是產(chǎn)氫反應(yīng)重要途徑之一[18],NADH的殘量是產(chǎn)氫發(fā)酵細(xì)菌提高氫氣釋放的重要基礎(chǔ),所以較高的二氧化碳濃度減少了NADH殘量,減少了總氣量的產(chǎn)生;5) 以氦氣作為通氣氣源時(shí)菌種的生長(zhǎng)情況最好,氦氣屬于稀有氣體較穩(wěn)定,最大程度地保護(hù)了產(chǎn)氫菌的代謝環(huán)境。

    2.6 煤樣的變化

    于不同氣相條件下的產(chǎn)氣實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,煤樣的密度與蘭氏體積較原煤已經(jīng)發(fā)生了顯著的變化(見(jiàn)圖6)。由圖6a可知,蘭氏體積變化波動(dòng)較大,除了CO2氣氛,其他氣氛下的蘭氏體積均較原煤的蘭氏體積有所增加,尤其是通入氦氣后變化最顯著,比原煤增大近2 cm3/g。由圖6b可知,和原煤比較,實(shí)驗(yàn)結(jié)束后煤樣密度均有所增加,通入空氣、CO和CO2,煤樣密度反應(yīng)前后變化波動(dòng)不明顯,均在1.2 g/cm3~1.3 g/cm3之間,通入氦氣后的煤樣密度值變化最大,超過(guò)1.3 g/cm3。

    由圖6還可以看出,反應(yīng)后煤樣密度均有所增加,說(shuō)明經(jīng)過(guò)微生物的作用改變了煤體結(jié)構(gòu),相比其他氣氛,氦氣條件下煤樣密度變化最大,說(shuō)明該狀態(tài)下的細(xì)菌對(duì)煤樣的利用率更高,反應(yīng)較徹底,但其變化值不明顯,所以并不能由此推斷煤樣結(jié)構(gòu)的具體變化情況。通入氦氣后與原煤樣相比蘭氏體積的變化最明顯,說(shuō)明通入氦氣后,驅(qū)趕了煤厭氧發(fā)酵的氧氣,使得細(xì)菌能夠在專(zhuān)性厭氧條件下生長(zhǎng)繁殖,經(jīng)過(guò)產(chǎn)氫菌的作用改變了煤樣吸附甲烷的能力,反應(yīng)后煤樣的開(kāi)放型孔增加,孔隙連通性增強(qiáng)[19],該條件下細(xì)菌對(duì)煤的利用更徹底。

    圖6 不同氣相條件下發(fā)酵結(jié)束后煤樣蘭氏體積及密度Fig.6 Langmuir volume and density of coal after fermentation at different gas phases a—Langmuir volume;b—Density

    3 結(jié) 論

    1) 通過(guò)涂布平板法重復(fù)實(shí)驗(yàn)有效篩選出一株高效產(chǎn)氫菌,該菌株與腸桿菌屬(Enterobacter)的Enterobactercloacaestrain AR0093同16SrDNA序列同源性最高。

    2) 改變產(chǎn)氫菌可利用的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),優(yōu)選出最適宜該菌的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)為葡萄糖。

    3) 氣相條件對(duì)產(chǎn)氫菌的生長(zhǎng)和產(chǎn)氫量有著重要影響,通氣條件下的菌濃度由強(qiáng)到弱依次為氦氣、二氧化碳、空氣、一氧化碳。累積產(chǎn)氫量與其也有相同次序,兩者之間具有較好的相關(guān)性。

    4) 氧分子對(duì)產(chǎn)氫菌的發(fā)酵產(chǎn)氫過(guò)程有明顯的抑制作用,在進(jìn)行發(fā)酵細(xì)菌的產(chǎn)氫實(shí)驗(yàn)過(guò)程中應(yīng)盡量采用其他氣體如氮?dú)?、氬氣和二氧化碳?lái)吹脫空氣中的氧氣。

    5) 在反應(yīng)前后煤樣密度變化不大,對(duì)反應(yīng)前后的煤樣進(jìn)行等溫吸附后,發(fā)現(xiàn)通入氦氣后蘭氏體積變化較明顯,說(shuō)明氦氣條件下產(chǎn)氫菌對(duì)煤的利用更充分更徹底。

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