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    大鼠誘發(fā)性骨關(guān)節(jié)炎模型構(gòu)建研究進展

    2016-03-10 03:24:46周炎鄧明賀斌劉世清
    國際骨科學雜志 2016年5期
    關(guān)鍵詞:半月板造模韌帶

    周炎 鄧明 賀斌 劉世清

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    大鼠誘發(fā)性骨關(guān)節(jié)炎模型構(gòu)建研究進展

    周炎鄧明賀斌劉世清

    隨著社會人口老齡化,骨關(guān)節(jié)炎(OA)發(fā)病率呈逐年上升趨勢,已演變成為嚴重影響老年人健康及生活質(zhì)量的疾病之一。OA的病因及發(fā)病機制尚不明確,構(gòu)建大鼠OA模型是研究OA發(fā)病機制、病理過程及治療方法的重要手段之一。目前可通過機械制動或運動損傷、關(guān)節(jié)腔藥物注射、外科手術(shù)等方法構(gòu)建大鼠OA模型。不同誘發(fā)因素構(gòu)建出的大鼠OA模型具有不同特性,各有優(yōu)勢,需根據(jù)實驗條件和研究目的等合理選擇。該文就大鼠誘發(fā)性O(shè)A模型構(gòu)建研究進展作一綜述。

    骨關(guān)節(jié)炎;模型;動物;大鼠

    骨關(guān)節(jié)炎(OA)是一種以慢性、進展性軟骨變性及軟骨下骨重塑為特點的退行性骨關(guān)節(jié)病,常伴有不同程度的滑膜炎癥,臨床表現(xiàn)為關(guān)節(jié)腫脹、疼痛、僵硬及活動受限[1-2]。隨著社會人口老齡化,OA發(fā)病率呈逐年上升趨勢,嚴重影響老年人健康及生活質(zhì)量,進而演變成嚴重的社會問題,值得關(guān)注。近年來,多學者[3-4]對OA開展了大量動物體內(nèi)實驗研究,大多通過構(gòu)建實驗動物OA模型研究其發(fā)病機制、病理過程以及防治方法等。大鼠作為嚙齒目鼠科中體型較大的動物,生存及抗感染能力較強,能耐受關(guān)節(jié)手術(shù),常用于構(gòu)建OA模型,進行OA疼痛及療效評估等方面的研究。據(jù)統(tǒng)計[5],目前超過1/4的動物OA模型選擇大鼠作為實驗動物。根據(jù)OA模型的構(gòu)建方法可將其分為自發(fā)模型和人工誘發(fā)模型兩類。其中自發(fā)模型基本為自然條件下產(chǎn)生或通過基因突變的異常表現(xiàn)獲得,如STRPort小鼠、Harthy豚鼠等[6],而更多研究選擇人工誘發(fā)構(gòu)建大鼠OA模型,主要通過機械制動或運動損傷、關(guān)節(jié)腔內(nèi)藥物注射、外科手術(shù)干預等方法進行構(gòu)建。不同誘發(fā)因素構(gòu)建的大鼠OA模型具有不同特性,各具優(yōu)勢,需根據(jù)實驗條件及研究目的合理選擇OA模型構(gòu)建方法。理想的動物OA模型構(gòu)建方法應(yīng)能準確、良好地模擬人類OA病理過程,此時緩慢性進展模型或自發(fā)性模型優(yōu)勢尤為明顯。但實際科研工作中由于經(jīng)費及時間等限制,難以獲得理想的OA模型,選擇具有操作方便易行、穩(wěn)定性高、干擾因素少等特性的造模方法更為現(xiàn)實。本文對大鼠誘發(fā)性O(shè)A模型構(gòu)建研究進展作一綜述。

    1 機械制動或運動損傷

    機械制動后關(guān)節(jié)軟骨喪失壓力泵作用,關(guān)節(jié)滑膜向關(guān)節(jié)軟骨浸潤并與之粘連,關(guān)節(jié)囊、關(guān)節(jié)周圍肌肉攣縮等導致關(guān)節(jié)軟骨面壓力增高及關(guān)節(jié)軟骨失營養(yǎng)萎縮,為機械制動造成關(guān)節(jié)軟骨退行性變發(fā)生的相關(guān)因素。通過機械制動或運動損傷建立大鼠OA模型避免了關(guān)節(jié)穿刺及手術(shù)創(chuàng)傷對關(guān)節(jié)腔的干擾作用,受其他干擾因素少,但大鼠關(guān)節(jié)長期制動依從性差,難以長時間維持固定效果,且易發(fā)生僵硬膝。Ando等[7]將成年雄性SD大鼠膝關(guān)節(jié)屈曲150°固定,并根據(jù)其脛骨與股骨關(guān)節(jié)接觸情況,在矢狀面上將膝關(guān)節(jié)分為接觸區(qū)、中間區(qū)及非接觸區(qū),固定至少2周后通過HE及番紅O染色發(fā)現(xiàn),接觸區(qū)軟骨面萎縮,中間區(qū)軟骨細胞肥大,而非接觸區(qū)除番紅O染色強度減弱外,無其他結(jié)構(gòu)性改變。Gu等[8]采用克氏針將SD大鼠膝關(guān)節(jié)屈曲150°固定,2周后拆除外固定,拆除后4周觀察發(fā)現(xiàn),其膝關(guān)節(jié)軟骨光澤度下降,軟骨面不平整,組織形態(tài)學顯示軟骨細胞肥大,軟骨形態(tài)不規(guī)則,番紅O染色顯示軟骨上層及中間層細胞基質(zhì)中蛋白聚糖(PG)含量明顯減少,且改良Mankin評分升高。Maerz等[9]應(yīng)用機械裝置將成年大鼠膝關(guān)節(jié)屈曲100°固定,機械加壓或松弛(8 mm/s)作用于脛骨使其軸向移位3 mm,制備創(chuàng)傷后OA模型,其構(gòu)建機制為機械應(yīng)力誘發(fā)前交叉韌帶損傷且同時伴有外側(cè)副韌帶損傷,導致大鼠膝關(guān)節(jié)不穩(wěn)定,該方法不僅可構(gòu)建創(chuàng)傷性O(shè)A模型,還可構(gòu)建前交叉韌帶損傷模型。

    關(guān)節(jié)運動損傷由關(guān)節(jié)軟骨持續(xù)異常負荷引起,可導致關(guān)節(jié)軟骨基質(zhì)降解及PG丟失,形成OA。關(guān)節(jié)運動損傷構(gòu)建的OA模型可模擬人類運動性關(guān)節(jié)損傷,此類OA模型關(guān)節(jié)軟骨可發(fā)生進行性退變,符合OA自然發(fā)病過程,但造模周期長、工作量大,難以廣泛普及應(yīng)用。de Souza等[10]采用跑步機誘導成年雄性Wistar大鼠OA模型,對大鼠進行每周5 d、持續(xù)6周的被動跑步活動(預計每只大鼠活動總距離為35 km),之后采用拉曼光譜學檢查進行組織形態(tài)分析,結(jié)果顯示大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨礦化及組織重塑增加。Lee等[11]采用各軌道角度在0°~15°范圍、跑步速率為1~30 m/min的自動化多軌道跑步器對大鼠進行每日1 h、每周5 d的功能訓練,10周后HE及番紅O染色顯示,大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨出現(xiàn)垂直裂縫,關(guān)節(jié)軟骨受侵蝕及骨贅形成,TUNEL染色顯示軟骨細胞凋亡增加。

    2 關(guān)節(jié)腔藥物注射

    關(guān)節(jié)腔藥物注射構(gòu)建大鼠OA模型的報道較多,該方法具有操作簡單、關(guān)節(jié)腔穿刺創(chuàng)傷小、干擾因素單一、模型相對穩(wěn)定且造模周期較短等特性,尤其在誘發(fā)觸覺疼痛方面具有獨特優(yōu)勢。但關(guān)節(jié)腔藥物注射構(gòu)建大鼠OA模型早期即易出現(xiàn)關(guān)節(jié)軟骨破壞發(fā)展迅速、軟骨細胞廣泛死亡等現(xiàn)象,與骨關(guān)節(jié)進行性退變病程相悖,難以準確模擬OA關(guān)節(jié)軟骨的結(jié)構(gòu)性改變,不能體現(xiàn)人類自發(fā)性及創(chuàng)傷性O(shè)A的發(fā)病特點。目前,關(guān)節(jié)腔藥物注射構(gòu)建大鼠OA模型在觸覺疼痛方面的研究中獲得了高度認可。以下將介紹關(guān)節(jié)腔注射構(gòu)建大鼠OA模型常用藥物。

    2.1膠原酶

    膠原酶可從溶組織梭狀細胞芽孢桿菌中提取,具有水解結(jié)締組織中膠原蛋白的作用,能在較短時間內(nèi)誘導關(guān)節(jié)軟骨炎性反應(yīng),但對溫度、pH值及刺激蛋白質(zhì)變性的各種因素均極為敏感,易受外界條件影響而變性。Liu等[12]將50 μL膠原酶(6 mg/mL)注射至5周齡SD大鼠膝關(guān)節(jié)腔,4 d后重復注射1次,30 d后觀察發(fā)現(xiàn),其膝關(guān)節(jié)腫脹及僵硬程度明顯加重,HE及番紅O染色顯示軟骨面破壞,PG含量明顯減少,免疫組化染色結(jié)果顯示軟骨關(guān)節(jié)面白細胞介素(IL)-1β含量明顯升高。Adaes等[13]將25 μL Ⅱ型膠原酶(500 U/mL)注射至大鼠膝關(guān)節(jié)腔,1周后觀察發(fā)現(xiàn)其運動刺激疼痛明顯增加,并伴有膝關(guān)節(jié)腫脹等炎性反應(yīng),6周后出現(xiàn)軟骨細胞集群及肥大、軟骨侵蝕、PG丟失等。Mangueira等[14]通過膝關(guān)節(jié)注射膠原酶構(gòu)建大鼠OA模型,19 d后采用拉曼光譜學檢查進行組織形態(tài)定量分析,結(jié)果顯示其膝關(guān)節(jié)軟骨中Ⅱ型及Ⅲ型膠原含量明顯降低。

    2.2碘乙酸鹽

    碘乙酸鹽(IAA)是甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)的抑制劑,可導致軟骨基質(zhì)降解及丟失、滑膜炎性改變,多用于大鼠膝關(guān)節(jié)腔注射誘導OA模型。Chandran等[15]將50 μL IAA(60 mg/mL)注射至大鼠膝關(guān)節(jié)腔,通過后肢握力評估疼痛,結(jié)果顯示20 d后大鼠出現(xiàn)持久的抗壓握力運動引起的疼痛。Bianchi等[16]將25 μL谷氨酸鈉碘乙酸(MIA,80 mg/mL)注射至大鼠膝關(guān)節(jié)腔,14 d后組織學觀察發(fā)現(xiàn)其膝關(guān)節(jié)表面不連續(xù),軟骨中層出現(xiàn)垂直裂隙,軟骨細胞部分壞死,同時基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)-13表達明顯增高。Mohan等[17]將低劑量MIA(0.2 mg)注射至8周齡雄性Wistar大鼠膝關(guān)節(jié)腔,2周后出現(xiàn)早期OA表現(xiàn),膝關(guān)節(jié)骨小梁消失,6、10周后膝關(guān)節(jié)軟骨發(fā)生退變、軟骨下骨硬化及骨贅形成。Boudenot等[18]對大鼠膝關(guān)節(jié)腔注射100 μL IAA(10 mg/mL)構(gòu)建OA模型并使其進行間斷性功能鍛煉,4周后觀察其骨密度及軟骨下骨小梁微體系結(jié)構(gòu),結(jié)果發(fā)現(xiàn)間斷性功能鍛煉可提高IAA構(gòu)建的大鼠OA模型骨密度,同時可增加完整骨細胞陷窩表面積。Naveen等[19]分別采用IAA關(guān)節(jié)腔注射與前交叉韌帶切斷構(gòu)建大鼠OA模型,1~2周后對其進行組織學、生化及生物力學比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn)兩組出現(xiàn)相當?shù)能浌峭俗儽憩F(xiàn),但由于IAA關(guān)節(jié)腔注射快速、微創(chuàng)及可重復性高,更值得推薦。目前IAA關(guān)節(jié)腔注射構(gòu)建大鼠OA模型主要用于觸覺疼痛等方面的研究,多從后肢負重、機械痛覺過敏及后肢握力等方面進行評估,但用于延緩OA軟骨病變及抗OA藥物等方面的研究有一定局限性[20-22]。

    2.3木瓜蛋白酶

    木瓜蛋白酶是一種蛋白水解酶,能有效去除軟骨細胞膜上的有絲分裂抑制因子,使軟骨基質(zhì)內(nèi)PG發(fā)生降解,從而導致軟骨細胞與水結(jié)合功能破壞及PG減少。Siebelt等[23]將木瓜蛋白酶-半胱氨酸溶液30 μL(40 mg/mL)注射至16周齡雄性Wistar大鼠膝關(guān)節(jié)腔,并讓其在自動嚙齒動物跑步機中活動,活動頻率為500 m/d、每周活動5 d,6周后番紅O染色顯示軟骨下骨板明顯變薄,脛骨平臺中軟骨硫酸化糖胺聚糖(GAG)含量明顯減少,12周后軟骨細胞外基質(zhì)丟失嚴重。Pomonis等[24]分別采用50 μL木瓜蛋白酶(30 mg/mL)和50 μL IAA(60 mg/mL)對大鼠膝關(guān)節(jié)腔進行注射,比較兩者對大鼠后肢負重及關(guān)節(jié)退變影響的差異,結(jié)果發(fā)現(xiàn)注射木瓜蛋白酶后大鼠后肢負重明顯減輕,并可持續(xù)15 d,但28 d后X線檢查膝關(guān)節(jié)未見明顯異常,而注射IAA大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨退變更為明顯,且后肢負重減輕持續(xù)時間更長,但木瓜蛋白酶誘導的大鼠OA模型關(guān)節(jié)軟骨的損傷程度在不同注射濃度及觀察時間下有所不同。

    2.4完全弗氏佐劑

    完全弗氏佐劑(CFA)是由抗原水溶液與油劑等量混合,再添加乳化劑制成油包水抗原乳劑,之后加入分枝桿菌制備而成,是目前常用的實驗動物免疫佐劑,主要用于誘導炎性及疼痛反應(yīng)。Koo等[25]將0.125 mL CFA對成年雄性SD大鼠膝關(guān)節(jié)腔進行注射,10 h后測量大鼠負重情況,結(jié)果顯示大鼠疼痛反應(yīng)明顯增強并持續(xù)14 d,膝關(guān)節(jié)軟骨形態(tài)學染色顯示軟骨血管翳形成,軟骨及軟骨下骨侵蝕。Yu等[26]利用關(guān)節(jié)腔注射CFA構(gòu)建大鼠OA模型,6周后觀察發(fā)現(xiàn),大鼠膝關(guān)節(jié)腫脹明顯,酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)分析顯示其血清MMP-13及IL-1含量明顯增高,組織形態(tài)學檢查顯示軟骨中PG含量減少,透明軟骨層變薄,提示軟骨退變。

    2.5重組人腫瘤壞死因子-α

    重組人腫瘤壞死因子(rhTNF)-α是一種由單核-巨噬細胞及其他多類細胞合成、釋放,可引起全身系統(tǒng)性炎性反應(yīng)的多效炎性細胞因子。Malfait等[27]分別將不同劑量rhTNF-α(5、10 μg)注射至成年雄性Wistar大鼠膝關(guān)節(jié)腔,番紅O染色顯示隨著時間推移,關(guān)節(jié)軟骨中PG含量逐漸降低(0~16 h),且股骨髁部優(yōu)先于脛骨平臺發(fā)生PG降解并在16 h達到高峰,24 h后PG含量逐漸升高,72 h升高最為明顯,且脛骨平臺中PG含量升高優(yōu)先于股骨髁部。

    2.6IL-1β

    IL-1β是一種重要的促炎介質(zhì),當組織受損后,其在炎癥部位濃度升高,同時可誘導其他促炎因子的釋放,維持及促進炎性反應(yīng),引發(fā)炎性疼痛。Hu等[28]將10 ng IL-1β溶解至50 μL磷酸鹽緩沖液(PBS)中并將其注射至4周齡SD大鼠膝關(guān)節(jié)腔,72 h后進行軟骨組織學染色,結(jié)果發(fā)現(xiàn)軟骨細胞數(shù)量減少,中性粒細胞浸潤,番紅O染色程度降低。

    2.7角叉菜膠

    角叉菜膠是從海藻中提取的含硫酸多糖物質(zhì),可引起多種炎性因子如緩激肽(BK)、前列腺素、5-羥色胺(HT)等的釋放,從而誘導熱痛覺過敏及炎性反應(yīng),已用于構(gòu)建多種組織炎癥模型。Arun等[29]將40 μL角叉菜膠(20 mg/mL)注射至雄性SD大鼠膝關(guān)節(jié)腔,4、8 h后觀察發(fā)現(xiàn)大鼠膝關(guān)節(jié)直徑明顯增寬,但其活動度、后肢負重及關(guān)節(jié)靈活性明顯受限。

    3 外科手術(shù)

    外科手術(shù)干預主要通過破壞關(guān)節(jié)穩(wěn)定性、改變關(guān)節(jié)應(yīng)力及骨內(nèi)壓、促進炎性反應(yīng)等構(gòu)建大鼠OA模型,手術(shù)方式較多,其構(gòu)建的大鼠OA模型可重復性高,易快速獲得OA發(fā)病及進展,可良好地模擬人類創(chuàng)傷性O(shè)A的發(fā)病特點。但手術(shù)造模同時可引起關(guān)節(jié)外的其他損傷,導致關(guān)節(jié)外出血、創(chuàng)傷及炎性反應(yīng),影響OA模型早期軟骨及滑膜的生化代謝。因此,手術(shù)造模方式不適用于檢測關(guān)節(jié)軟骨早期炎性介質(zhì)、觀察早期OA軟骨病理改變以及研究藥物對OA早期生化代謝的影響。

    3.1單純內(nèi)側(cè)副韌帶或前交叉韌帶切斷及半月板切除術(shù)

    單純內(nèi)側(cè)副韌帶、前交叉韌帶切斷及半月板切除術(shù)主要通過破壞膝關(guān)節(jié)穩(wěn)定性使軟骨發(fā)生退變來構(gòu)建大鼠OA模型。此3種手術(shù)造模方式導致的關(guān)節(jié)軟骨退變程度及特點不盡相同,其中半月板切除所致的軟骨損傷發(fā)生最早且程度最嚴重,易引起軟骨下骨病變及骨贅形成。Nielsen等[30]采用部分內(nèi)側(cè)半月板切除構(gòu)建大鼠OA模型,術(shù)后8周進行組織形態(tài)學檢查,結(jié)果顯示軟骨表面明顯侵蝕,有嗜酸性鈣化軟骨及軟骨下骨損傷表現(xiàn),脛骨平臺未鈣化的軟骨層變薄,軟骨基質(zhì)丟失明顯且Ⅱ型膠原發(fā)生降解。Iijima等[31]采用內(nèi)側(cè)半月板切除構(gòu)建大鼠OA模型,術(shù)后第1、2、4周行膝關(guān)節(jié)微型CT檢查,結(jié)果顯示脛骨平臺中間區(qū)域出現(xiàn)軟骨下骨缺損,進一步檢測顯示關(guān)節(jié)軟骨MMP-13及血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)表達明顯增高。Bagi等[32]采用微型CT檢查內(nèi)側(cè)半月板切除術(shù)后10周的大鼠膝關(guān)節(jié),結(jié)果發(fā)現(xiàn)軟骨受損區(qū)域的軟骨下骨質(zhì)增厚,脛骨干骺端松質(zhì)骨丟失以及骨贅形成等病理表現(xiàn)。Tsai等[33]將大鼠前交叉韌帶切斷構(gòu)建OA模型,術(shù)后16周動態(tài)增強MRI檢查顯示,髕骨及股骨軟骨下骨髓灌注指數(shù)明顯增高,術(shù)后32周出現(xiàn)關(guān)節(jié)軟骨侵蝕。

    Nwosu等[34]比較分別采用內(nèi)側(cè)半月板切除與IAA關(guān)節(jié)腔注射構(gòu)建的大鼠OA模型,結(jié)果顯示兩種造模方法均能導致軟骨結(jié)構(gòu)性改變,但采用IAA構(gòu)建的大鼠OA模型主要特征為內(nèi)外側(cè)脛股間室結(jié)構(gòu)改變,而采用內(nèi)側(cè)半月板切除構(gòu)建的大鼠OA模型主要特征為內(nèi)側(cè)脛股聯(lián)合處軟骨病變。Allen等[35]比較單純采用內(nèi)側(cè)副韌帶切斷與單純采用內(nèi)側(cè)半月板切除構(gòu)建的大鼠OA模型,術(shù)后9、16、23 d觸覺疼痛過敏反應(yīng)、步態(tài)檢查顯示,相比于內(nèi)側(cè)副韌帶切斷組,內(nèi)側(cè)半月板切除組患肢足收縮反射閥值更低,步態(tài)不協(xié)調(diào)更明顯,行走時地面垂直和推進反作用力更低,組織學觀察顯示內(nèi)側(cè)脛骨平臺軟骨損傷表現(xiàn)更嚴重,更符合OA發(fā)病的相關(guān)特征。Afara等[36]比較單純采用內(nèi)側(cè)半月板切除、前交叉韌帶切斷及IAA關(guān)節(jié)腔注射構(gòu)建的大鼠OA模型,8周后組織形態(tài)學結(jié)果顯示,前交叉韌帶切斷組大鼠軟骨退變最輕,其次是內(nèi)側(cè)半月板切除組,IAA關(guān)節(jié)腔注射組大鼠軟骨退變最嚴重,采用近紅外光譜學檢查進行改良Mankin評分,結(jié)果與組織形態(tài)學檢查一致。Mapp等[37]比較單純采用內(nèi)側(cè)半月板切除與IAA關(guān)節(jié)腔注射構(gòu)建的大鼠OA模型,術(shù)后14 d兩組均出現(xiàn)滑膜炎癥、軟骨退變及骨贅形成等,內(nèi)側(cè)半月板切除組大鼠滑膜炎癥及骨贅更嚴重,并出現(xiàn)步態(tài)不協(xié)調(diào),而IAA關(guān)節(jié)腔注射組大鼠足觸覺疼痛過敏反應(yīng)更嚴重。

    3.2前交叉韌帶及(或)內(nèi)側(cè)副韌帶切斷聯(lián)合內(nèi)側(cè)半月板切除術(shù)

    前交叉韌帶及(或)內(nèi)側(cè)副韌帶切斷聯(lián)合內(nèi)側(cè)半月板切除造模的原理是破壞膝關(guān)節(jié)正常的力學軸線及膝關(guān)節(jié)穩(wěn)定性,從而增加關(guān)節(jié)軟骨面摩擦力,且內(nèi)側(cè)半月板緩沖作用缺失,關(guān)節(jié)軟骨的最大壓應(yīng)力承受平面由外側(cè)脛骨平臺向內(nèi)側(cè)脛骨平臺及股骨內(nèi)髁轉(zhuǎn)移,使關(guān)節(jié)軟骨局部承受的壓應(yīng)力相對增加,從而導致關(guān)節(jié)軟骨發(fā)生退變,類似于人類OA生物力學及形態(tài)學變化,該建模方法已被廣泛應(yīng)用。Ferland等[38]采用前交叉韌帶切斷聯(lián)合部分內(nèi)側(cè)半月板切除術(shù)破壞一組成年雄性SD大鼠膝關(guān)節(jié)穩(wěn)定性,4周后組織學觀察顯示軟骨PG含量及軟骨細胞數(shù)量輕度減少,在股骨外側(cè)髁發(fā)生不同程度的透明軟骨侵蝕,并伴有脛骨內(nèi)側(cè)平臺軟骨表面番紅O染色程度降低;另選一組大鼠采用IAA關(guān)節(jié)腔注射構(gòu)建OA模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)后者軟骨結(jié)構(gòu)破壞更嚴重,脛骨及股骨表面均發(fā)生透明軟骨侵蝕,并伴有軟骨下骨重塑及骨贅形成,且疼痛反應(yīng)更嚴重。Hamilton等[39]采用切斷前交叉韌帶及切除部分內(nèi)側(cè)半月板構(gòu)建大鼠OA模型,術(shù)后4周甲苯胺藍染色顯示關(guān)節(jié)軟骨退變及骨贅形成,患側(cè)肢體負重明顯降低,且垂直活動趨勢變小。Xie等[40]將SD大鼠膝關(guān)節(jié)前交叉韌帶切斷及內(nèi)側(cè)半月板切除,術(shù)后每日活動1 h,8周后X線檢查顯示大鼠膝關(guān)節(jié)骨贅形成,關(guān)節(jié)軟骨表面變薄及破壞,同時存在軟骨硬化及變形等表現(xiàn),HE染色顯示軟骨表面不平整,并有不規(guī)則軟骨細胞聚集,免疫組化定量顯示軟骨MMP-3含量明顯增高。Kim等[41]采用切斷前交叉韌帶及內(nèi)側(cè)副韌帶、完整切除內(nèi)側(cè)半月板、不損傷關(guān)節(jié)軟骨面的方法構(gòu)建大鼠OA模型,術(shù)后大鼠在跑步器上進行每日20 min、每周5 d的功能鍛煉,術(shù)后6周組織學檢查顯示軟骨表面明顯變薄并侵蝕,PG含量明顯減少,TUNEL染色顯示軟骨細胞凋亡明顯增多。有研究[42-43]采用前交叉韌帶切斷聯(lián)合部分內(nèi)側(cè)半月板切除構(gòu)建大鼠OA模型,術(shù)后將大鼠置入跑步器中進行功能鍛煉,頻率為30 min/d,計算活動距離約為280 m/d,4周后組織學染色顯示關(guān)節(jié)軟骨面不平整及變薄。研究[44]表明,相比于內(nèi)側(cè)半月板完整切除,采用前交叉韌帶切斷聯(lián)合部分內(nèi)側(cè)半月板切除構(gòu)建的大鼠OA模型發(fā)生軟骨退變時間更晚,大多發(fā)生在術(shù)后4~12周,軟骨病變集中在脛骨內(nèi)側(cè)平臺外1/3處及股骨內(nèi)側(cè)髁,且易發(fā)生軟骨下骨硬化。

    3.3跟腱離斷術(shù)

    跟腱離斷術(shù)是通過改變負重關(guān)節(jié)生物力學的方式構(gòu)建大鼠OA模型,該方法克服了關(guān)節(jié)內(nèi)手術(shù)易發(fā)生創(chuàng)傷性滑膜炎對實驗的干擾,為觀察OA早期病理變化及篩選治療藥物提供了良好的OA模型,但造模周期長,易發(fā)生同側(cè)髖、踝關(guān)節(jié)OA病變,難以進行大鼠步態(tài)檢查。Ou等[45]將成年Wistar大鼠左側(cè)跟腱切除,導致同側(cè)膝關(guān)節(jié)軟骨壓應(yīng)力降低、膝關(guān)節(jié)不穩(wěn)定及異常關(guān)節(jié)負荷,術(shù)后3個月觀察發(fā)現(xiàn)其膝關(guān)節(jié)應(yīng)力集中區(qū)表面軟骨粗糙,雙側(cè)柱狀和嵌套的軟骨細胞增生,術(shù)后6個月其膝關(guān)節(jié)軟骨表面脫落,并伴有大量軟骨細胞增生,術(shù)后9個月其關(guān)節(jié)軟骨面破壞更為嚴重,軟骨細胞數(shù)量明顯減少,甲苯胺藍染色及免疫組化染色定量顯示PG含量明顯減少,Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型膠原含量均不同程度減少。

    4 關(guān)節(jié)軟骨組織病理學評價標準

    關(guān)節(jié)軟骨組織病理學評分是動物OA模型結(jié)局評估的金標準,理想的評價標準應(yīng)囊括對整個關(guān)節(jié)組織的評估,包括軟骨組織及非軟骨組織,其中非軟骨組織(如滑膜、半月板、軟骨下骨、肌腱及韌帶等)在OA的發(fā)生、發(fā)展過程中與軟骨組織起到同樣重要作用。關(guān)節(jié)軟骨組織病理學評分應(yīng)具有簡單、科學、實用、穩(wěn)定、可擴展性及可比性高等特點。目前應(yīng)用較多的關(guān)節(jié)軟骨組織病理學評價方法主要包括改良Mankin評分系統(tǒng)及國際骨關(guān)節(jié)研究協(xié)會(OARSI)評分系統(tǒng)。改良Mankin評分系統(tǒng)主要從軟骨結(jié)構(gòu)、軟骨細胞特性、番紅O染色、潮線完整性等方面進行評估,已被較多學者應(yīng)用,但該評價標準用于評估早期OA病理改變時有一定局限性,易受觀察者自身及觀察者之間差異影響,且不同研究之間的可比性差,限制了其廣泛應(yīng)用[44]。OARSI評分系統(tǒng)較改良Mankin評分系統(tǒng)更復雜,包涵了對關(guān)節(jié)軟骨基質(zhì)丟失寬度、整體軟骨退變寬度、軟骨侵蝕或破壞范圍、軟骨病變帶狀深比、生長板厚度及內(nèi)側(cè)關(guān)節(jié)囊修復厚度等方面定量,同時對軟骨變性、軟骨鈣化、軟骨下骨損傷、骨贅范圍及滑膜反應(yīng)等方面半定量,從膝關(guān)節(jié)額狀面、冠狀面及矢狀面中選出最嚴重的損傷平面進行評價,能更全面地反映關(guān)節(jié)軟骨病變程度,值得廣泛推廣應(yīng)用[46]。

    5 結(jié)語

    大鼠OA模型在一定程度上能模擬人類OA發(fā)病機制和病理過程,為更深入研究人類OA提供了良好實驗條件,但畢竟嚙齒類動物與人類之間存在差異,任何單一的大鼠OA模型都難以完美概括人類OA特性,但運用多種大鼠OA模型在一定范圍內(nèi)可彌補其不足。理想的造模標準應(yīng)表現(xiàn)為允許足夠的時間建立輕中度關(guān)節(jié)軟骨退變、符合人類關(guān)節(jié)軟骨退變過程以及輕中度軟骨退變采取保守療法有效。關(guān)節(jié)腔藥物注射構(gòu)建OA模型具有造模時間短、造模穩(wěn)定、受其他因素影響小等優(yōu)點,尤其在誘導觸覺疼痛方面優(yōu)勢明顯,而手術(shù)造模方式更接近人類創(chuàng)傷性O(shè)A表現(xiàn)??蒲泄ぷ髡咝韪鶕?jù)研究目的及倫理學要求等合理選擇造模方式,并采用標準化評價方法,對模型的組織學、形態(tài)學、影像學等方面進行合理評估,最大限度地發(fā)揮動物OA模型價值,為人類OA的研究奠定良好基礎(chǔ)。

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    (收稿:2016-03-18;修回:2016-06-19)

    (本文編輯:李圓圓)

    國家自然科學基金(81301056)

    430060,武漢大學人民醫(yī)院骨科

    劉世清E-mail: liusqrm@163.com

    10.3969/j.issn.1673-7083.2016.05.009

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