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    復(fù)合誘變篩選高產(chǎn)檸檬酸黑曲霉及其發(fā)酵研究

    2019-08-27 08:46:26孫士健王麗娟秦酈畢付提王德培
    食品研究與開發(fā) 2019年17期
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)酸黑曲霉氮源

    孫士健,王麗娟,秦酈,畢付提,王德培,3,*

    (1.工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津300457;2.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津300457;3.省部共建食品營養(yǎng)與安全國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津300457)

    檸檬酸(citric acid)又名枸櫞酸,學(xué)名2-羥基丙烷-1,2,3-三羧酸,白色晶體,含一分子結(jié)晶水,無臭,具有令人愉快的強(qiáng)烈的酸味,入口爽快,無后酸味,安全無毒,被廣泛用作食品和飲料的酸味劑[1]。自1945年美國Miles公司借鑒深層發(fā)酵青霉素工廠,采用無菌空氣供給系統(tǒng)和機(jī)械攪拌通風(fēng)發(fā)酵罐的成功經(jīng)驗(yàn)基礎(chǔ)上,首先成功開發(fā)了深層發(fā)酵法工業(yè)化生產(chǎn)檸檬酸[2]。檸檬酸已成為全球產(chǎn)量和需求量最大的有機(jī)酸品種。世界檸檬酸工業(yè)的集約化程度非常高,除中國外,全球主要的檸檬酸制造商只有5家~6家[3](美國、奧地利、加拿大、巴西等),而中國的產(chǎn)量為最大,2017年,全球檸檬酸及其鹽產(chǎn)量達(dá)到212萬噸,我國產(chǎn)量達(dá)到152萬噸,占全球近70%,是檸檬酸主要生產(chǎn)國和出口國。

    國內(nèi)外檸檬酸工業(yè)化生產(chǎn)主要采用液體深層發(fā)酵法、表面發(fā)酵法及固體發(fā)酵法。上世紀(jì)90年代至今,我國利用玉米發(fā)酵檸檬酸,將玉米粉調(diào)漿,高溫液化加入高溫淀粉酶,快速過濾去除部分玉米渣后進(jìn)行發(fā)酵,使檸檬酸發(fā)酵過程溶氧好、產(chǎn)酸快、發(fā)酵周期短,單罐產(chǎn)酸提高到16%,發(fā)酵指數(shù)在2.4 kg/(m3·h)~2.8 kg/(m3·h)之間。決定檸檬酸產(chǎn)能優(yōu)勢的兩個(gè)關(guān)鍵技術(shù)是高產(chǎn)檸檬酸菌株和發(fā)酵工藝的優(yōu)化。

    自從上世紀(jì)初開始用微生物生產(chǎn)檸檬酸以來,人們對生產(chǎn)檸檬酸的菌種進(jìn)行持續(xù)不斷的誘變研究。我國在檸檬酸生產(chǎn)菌黑曲霉的育種方面積累了豐富的經(jīng)驗(yàn),20世紀(jì)50年代末和60年代初,金其榮等進(jìn)行了檸檬酸發(fā)酵的菌種研究,從土壤中經(jīng)酸性平板分離獲得的野生黑曲霉628作為出發(fā)菌株,經(jīng)多次γ射線(Co60)和硫酸二乙脂等復(fù)合誘變,獲得了高產(chǎn)檸檬酸菌株Co827,可直接利用薯干粉發(fā)酵,產(chǎn)酸達(dá)12%~13%,平均轉(zhuǎn)化率為95%,發(fā)酵周期54 h~64 h,發(fā)酵指數(shù)1.8 kg/(m3·h)~2.0kg/(m3·h)[4]。無錫工業(yè)大學(xué)以黑曲霉H-142為出發(fā)菌株,通過γ射線、硫酸二乙脂、高溫單獨(dú)或復(fù)合誘變處理,通過高溫、高酸及高滲培養(yǎng)條件的定向篩選獲得HQL-601菌種,發(fā)酵溫度為40℃~41℃,周期60 h~64 h,20%薯干粉搖瓶產(chǎn)酸13%,其檸檬酸純度明顯優(yōu)于出發(fā)酵菌[5]。復(fù)合誘變的方法比用單一的物理方法或化學(xué)方法更為有效[6]。黑曲霉育種較為有效的誘變因子有:γ-射線、x-射線、紫外線、激光、亞硝基胍(nitroso-guanidin,NTG)、亞硝基脲、乙基胺等,此外還有高能電子流、電磁場等[7]。

    本文以江蘇國信協(xié)聯(lián)能源有限公司天津分公司保藏的菌種zs-10為出發(fā)株,經(jīng)過γ射線(Co60)及亞硝基胍復(fù)合誘變,得到一株高產(chǎn)檸檬酸且遺傳穩(wěn)定性高的誘變菌株。通過對該菌株發(fā)酵工藝的優(yōu)化,提高了檸檬酸產(chǎn)量,縮短了發(fā)酵周期。試驗(yàn)結(jié)果在50 L發(fā)酵罐中試試驗(yàn)中得到驗(yàn)證。

    1 材料與方法

    1.1 菌種

    黑曲霉(Aspergillus niger)zs-10:江蘇國信協(xié)聯(lián)能源有限公司天津分公司保藏。

    1.2 試劑

    無水葡萄糖、酵母粉、瓊脂粉、大豆蛋白胨:分析純,天津市北方天醫(yī)試劑公司;(NH4)2SO4、KH2PO4、MgSO4、CaCl2、KCl、FeSO4:分析純,天津市四通化工廠;玉米漿(試劑級):金豐玉米有限公司;糖化酶(100 000 U/mL):上海源葉生物科技有限公司;耐高溫的α-淀粉酶(20 000 U/mL):諾和諾德(中國)生物技術(shù)有限公司;玉米蛋白粉、麩皮粉、豆餅粉:鄢陵勝源豆業(yè)有限公司。

    1.3 儀器與設(shè)備

    LS-B50L型立式壓力蒸汽滅菌鍋、SPX-250B-Z型生化培養(yǎng)箱:上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;CX23型光學(xué)顯微鏡:OLYMPUS公司;HZQ-QX恒溫振蕩器:中國哈爾濱市東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司;FA2004N電子天平:上海精密科學(xué)儀器有限公司;50 L發(fā)酵罐:鎮(zhèn)江東方生物工程設(shè)備技術(shù)有限公司。

    1.4 培養(yǎng)基

    馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:馬鈴薯削皮切塊,稱取200 g,加入適量蒸餾水煮沸30 min,4層紗布過濾除渣,取清液加蒸餾水定容至1L,加入2%葡萄糖充分溶解,加入瓊脂粉20 g,121℃,20 min滅菌。制成斜面或平板備用。

    篩選培養(yǎng)基(g/L)[8]:馬鈴薯的煮汁 200 mL,K2HPO43.6 g,MgSO4·7H2O1.5 g,葡萄糖60 g,瓊脂20 g,溴甲酚綠0.05 g;121℃滅菌20 min;制成平板備用。

    種子液培養(yǎng)基:4.8 g玉米粉,40 mL水,2滴耐高溫的α-淀粉酶加入250 mL三角瓶中,121℃滅菌0.5 h,冷卻后備用。

    玉米液化液的制備:玉米粉與水以質(zhì)量比1∶4的比例混合,攪拌均勻后加熱到70℃,加入耐高溫α-淀粉酶(0.5 kg/t),保溫10 min后加熱到90℃保溫4 h~5 h,趁熱經(jīng)兩層紗布過濾得糖化清液。過濾清液冷卻后加水調(diào)整總糖到要求的濃度[9]。

    搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基:18%濃度玉米粉液化液,每250 mL三角瓶裝量35 mL液化液,1.93 g玉米粉末,1滴耐高溫的α-淀粉酶,121℃滅菌30 min,冷卻后備用。

    1.5 誘變方法

    1.5.1 孢子懸浮液的制備

    用10 mL無菌水洗脫新鮮斜面孢子,置于預(yù)先滅菌的帶玻璃珠的20 mL無菌水中,于旋轉(zhuǎn)式搖床上180 r/min振蕩40 min至鏡檢為分散的單孢子,用兩層無菌濾紙加一層滅菌的脫脂棉過濾,得到單孢子懸液,將孢子懸液離心稀釋,用血球計(jì)數(shù)板對單孢子懸液進(jìn)行鏡檢計(jì)數(shù),調(diào)節(jié)孢子濃度約為106個(gè)/mL[10-11]。

    1.5.2 γ射線(Co60)-亞硝基胍復(fù)合誘變

    取106孢子/毫升Co60照射(劑量為1 400 Gy)輻照不同時(shí)間后的孢子懸浮液與亞硝基胍誘變劑混合不同時(shí)間,誘變后均與涂布于篩選平板,35℃恒溫培養(yǎng)60 h后進(jìn)行初篩。

    1.6 篩選方法

    1.6.1 誘變菌株的初篩

    從經(jīng)過γ射線(Co60)-亞硝基胍復(fù)合誘變高濃度孢子液中取0.1 mL稀釋涂布于初篩平板中,以黑曲霉未經(jīng)離子注入的存活率為100%,將制好的平板與35℃培養(yǎng)36 h后開始觀察,每6 h觀察1次,至產(chǎn)酸為止,統(tǒng)計(jì)致死率、突變率及正負(fù)突變率,挑取高產(chǎn)菌落于斜面上傳代培養(yǎng)。

    致死率/%=(處理前菌落數(shù)-處理后菌落數(shù))/處理前菌落數(shù)×100

    突變率/%=突變菌落數(shù)/處理后菌落數(shù)×100

    正突變率/%=發(fā)生正突變菌落數(shù)/處理后菌落數(shù)×100

    負(fù)突變率/%=發(fā)生負(fù)突變菌落數(shù)/處理后菌落數(shù)×100

    式中:突變菌落數(shù)為黃色透明圈直徑與對照樣相比出現(xiàn)差異的菌落數(shù);發(fā)生正突變的菌落數(shù)為黃色透明圈直徑比對照樣大的菌落數(shù);發(fā)生負(fù)突變的菌落數(shù)為黃色透明圈直徑比對照樣小的菌落數(shù)[12-13]。

    1.6.2 誘變菌株的復(fù)篩

    從初篩得到的斜面菌株上挑取適量的黑曲霉孢子于總糖為18%的玉米發(fā)酵液中,500 mL三角瓶中裝入50 mL培養(yǎng)液,搖床轉(zhuǎn)速350 r/min,36℃振蕩培養(yǎng)72 h。測定發(fā)酵液總酸。

    1.7 檸檬酸發(fā)酵工藝優(yōu)化

    1.7.1 種子液的培養(yǎng)條件

    1.7.1.1 種子培養(yǎng)氮源種類優(yōu)化

    氮源分別為玉米蛋白粉、麩皮粉、豆餅粉,分別稱取一定量溶于50 mL水中,2滴液化酶,121℃滅菌30 min,冷卻后接入1環(huán)黑曲霉孢子于250 mL三角瓶中,搖床200 r/min,35℃恒溫培養(yǎng)24 h,測定種子液中18 h pH值并觀察菌球形態(tài)。

    1.7.1.2 種子培養(yǎng)總糖源濃度優(yōu)化

    在氮源一定的情況下,將種子液總糖濃度分別調(diào)至3%、6%、10%、15%、20%,50mL種子培養(yǎng)液,121℃滅菌30 min,冷卻后接入1環(huán)黑曲霉孢子于250 mL三角瓶中,搖床200 r/min,35℃恒溫培養(yǎng)24 h,測定種子液中菌球數(shù)量。

    1.7.2 發(fā)酵工藝的優(yōu)化

    1.7.2.1 溫度對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    采用搖瓶培養(yǎng)基,無菌接入一環(huán)孢子,分別在溫度為 26、29、32、35、38 ℃條件下進(jìn)行搖瓶發(fā)酵培養(yǎng),轉(zhuǎn)速為350 r/min,發(fā)酵72 h后測定不同溫度條件下的發(fā)酵液中總酸的含量,確定黑曲霉檸檬酸發(fā)酵的最適溫度。

    1.7.2.2 初始pH值對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    調(diào)整搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基初始pH值分別為2.5、3.5、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0 后滅菌。無菌環(huán)境下接入一環(huán)黑曲霉孢子,在35℃發(fā)酵72 h后測定不同初始pH值條件下檸檬酸的生成量,確定檸檬酸發(fā)酵的最適初始pH值。

    1.7.2.3 氮源種類對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基中分別加入不同種類的蛋白質(zhì)含量為0.6%的氮源后滅菌,氮源分別為蛋白胨、玉米漿、豆餅粉、硫酸銨、尿素、氯化銨、硝酸銨,在35℃發(fā)酵72 h后測定在不同的氮源條件下發(fā)酵液中總酸的含量,確定檸檬酸發(fā)酵的最適氮源。

    1.7.2.4 氮源含量對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基中分別加入不同含量的最適氮源后滅菌,氮源加量為0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%、1.2%,35℃發(fā)酵72 h后測定在最適氮源的不同含氮量下發(fā)酵液中檸檬酸的含量,確定檸檬酸發(fā)酵的最適氮源的用量。

    1.8 50L發(fā)酵罐中試試驗(yàn)

    將7.84 kg玉米粉與水混合至28 L,加入液化酶進(jìn)行液化,液化后過濾后取清液21 L,再加入30%濃度玉米液化混液4.5 L作為氮源,采用二級接種,10%接種量,發(fā)酵溫度35℃,罐壓0.08 MPa,通氣量0.12 V/V·M~0.15 V/V·M (V/V·M 表示通風(fēng)比),轉(zhuǎn)速350 r/min。

    1.9 分析方法

    1.9.1 還原糖和總糖的測定

    采用菲林法測定。

    1.9.2 發(fā)酵液中總酸的測定

    取1 mL發(fā)酵過濾液于250 mL錐形瓶中,再加入約100 mL蒸餾水,加入2滴0.1%酚酞指示劑,用0.142 9 mol/L的NaOH溶液滴定至變紅為止,記錄所消耗NaOH溶液的體積V[14]。

    式中:V為滴定時(shí)消耗NaOH的體積,mL;0.142 9為滴定系數(shù)。

    1.10 數(shù)據(jù)處理方法

    Excel 2007數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)處理,SPSS17.0軟件進(jìn)行單因子方差分析

    2 結(jié)果與討論

    2.1 Co60與亞硝基胍復(fù)合誘變黑曲霉

    2.1.1 γ 射線(Co60)誘變

    由于此前黑曲霉zs-10是經(jīng)過γ射線(Co60)誘變后篩選得到的菌株,因此采用高劑量γ射線(Co60)進(jìn)行孢子懸浮液誘變,選用γ射線(Co60)處理的劑量分別為 1000、1200、1400 Gy,其致死率與正突變率見表 1。

    表1 不同劑量下Co60誘變黑曲霉的致死率及正突變率Table1 Death rate and positive rate of Co60mutagenesis Aspergillus niger at different doses

    由表1可以看出,Co60誘變的致死率和菌種正變率都隨著處理時(shí)間的增加而升高,在處理劑量為1 400 Gy時(shí),正變率達(dá)到30.6%。所以選取誘變劑量為1 400 Gy。

    2.1.2 亞硝基胍誘變黑曲霉

    NTG誘變孢子存活率與時(shí)間的關(guān)系見圖1。

    圖1 NTG誘變孢子存活率與時(shí)間的關(guān)系Fig.1 Relation between the survival rate of NTG mutagenesis spores and time

    由圖1可以看出,隨著NTG誘變時(shí)間的延長,菌株存活率在下降。當(dāng)誘變時(shí)間為4 min時(shí)存活率為25%,致死率在75%左右。因此當(dāng)用濃度為1 mg/mL的NTG做誘變劑時(shí),誘變時(shí)間為4 min。

    2.1.3 Co60與亞硝基胍復(fù)合誘變

    通過Co60和亞硝基胍單獨(dú)誘變確定最適的誘變劑量,進(jìn)行Co60與亞硝基胍復(fù)合誘變黑曲霉孢子。通過挑選圏徑比大的菌株進(jìn)行初篩,初篩后得到30株然后進(jìn)行第一輪復(fù)篩結(jié)果見表2,將第一輪復(fù)篩產(chǎn)酸高于15.2 g/dL菌株進(jìn)行第二輪復(fù)篩見表3。

    表2 誘變黑曲霉孢子復(fù)篩結(jié)果Table 2 Results of mutagenic Aspergillus niger spore screening

    表3 誘變黑曲霉孢子二次復(fù)篩結(jié)果Table 3 Secondary screening results of mutagenic Aspergillus niger spores

    通過表2和表3可以看出,經(jīng)過二次復(fù)篩得到平均產(chǎn)酸為15.5 g/dL的菌株zs-10-5,接下對其遺傳穩(wěn)定性進(jìn)行考察。黑曲霉zs-10-5的傳代培養(yǎng)情況見表4。

    表4 黑曲霉zs-10-5的傳代培養(yǎng)情況Table 4 Subculture of Aspergillus niger zs-10-5

    從表4可以看出,經(jīng)過10次傳代培養(yǎng)后,黑曲霉zs-10-5仍保留了較高產(chǎn)酸能力,具有較好的遺傳穩(wěn)定性。經(jīng)過初篩、復(fù)篩和傳代培養(yǎng),獲得產(chǎn)酸有較大提高且遺傳性狀穩(wěn)定的突變株zs-10-5。

    2.2 種子液的培養(yǎng)條件

    2.2.1 氮源對種子的影響

    種子搖瓶中添加不同的氮源對種子發(fā)酵液的pH值,菌球的形成時(shí)間及菌球的形態(tài)產(chǎn)生了不同的影響結(jié)果見表5。

    表5 氮源對種子的影響Table 5 Influence of nitrogen source on seed

    由表5可以看出,添加豆餅粉的種子液菌種生長較快,在同樣時(shí)間下pH值下降幅度大,因此,在使用豆餅粉的工藝中,可以縮短種子的培養(yǎng)時(shí)間3 h~4 h,而且菌球形態(tài)有利于發(fā)酵。

    2.2.2 碳源濃度對種子的影響

    種子液的初糖濃度的高低直接影響黑曲霉菌體的生長與發(fā)育,影響產(chǎn)酸效率。從黑曲霉發(fā)酵檸檬酸的過程分析,如果種子液初糖濃度過高,會(huì)對孢子的生長發(fā)育有抑制作用。同時(shí)過高的糖濃度還會(huì)使發(fā)酵培養(yǎng)基濃度過高,嚴(yán)重影響發(fā)酵液溶氧。由于種子生長初期,孢子發(fā)育耗氧量非常大,所以種子液初期糖濃度過高會(huì)嚴(yán)重影響菌絲球成型。但是,如果種子液初總糖過低,則菌絲球會(huì)長的很大,且形狀不規(guī)則,生長不正常。以下是不同糖濃度下,菌球生長情況。糖濃度與菌球數(shù)的關(guān)系見圖2。

    由圖2可以看出在一定范圍內(nèi)隨著糖濃度的升高菌球數(shù)也隨之增加,當(dāng)糖濃度為10%時(shí),菌球數(shù)達(dá)到最大值。糖濃度超過10%時(shí),菌球數(shù)隨之下降,說明糖濃度過大會(huì)抑制孢子的萌發(fā)和菌球的形成。

    圖2 糖濃度與菌球數(shù)的關(guān)系Fig.2 Relationship between sugar concentration and mycosphere number

    2.3 黑曲霉檸檬酸發(fā)酵工藝優(yōu)化

    2.3.1 溫度對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    溫度是影響黑曲霉發(fā)酵過程的一個(gè)重要因素。溫度過低,細(xì)胞內(nèi)控制酶合成的關(guān)鍵酶的活性受到抑制,合成檸檬酸的生物反應(yīng)趨向停滯狀態(tài),溫度偏高,可能會(huì)造成微生物細(xì)胞中關(guān)鍵酶的不可逆失活,是微生物代謝減慢。在不同的溫度下,黑曲霉發(fā)酵72 h后檸檬酸的生成情況見圖3。

    圖3 不同溫度對黑曲霉產(chǎn)酸的影響Fig.3 Effects of different temperatures on acid production by Aspergillus niger

    從圖3可以看出,黑曲霉進(jìn)行檸檬酸發(fā)酵時(shí),在26℃~35℃范圍內(nèi),隨著溫度的升高,發(fā)酵液中檸檬酸的含量逐漸升高,當(dāng)溫度大于35℃時(shí),發(fā)酵液中檸檬酸的含量明顯降低,因此黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)生檸檬酸的最適溫度為35℃。

    2.3.2 初始pH值對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    實(shí)驗(yàn)室內(nèi)的搖床三角瓶發(fā)酵,調(diào)節(jié)合適的發(fā)酵初始pH值十分重要。特別是像檸檬酸發(fā)酵這種以淀粉作為發(fā)酵原料的發(fā)酵,發(fā)酵液初始pH值的高低會(huì)直接影響到菌體糖化酶的活力,由于檸檬酸發(fā)酵是以玉米粉為原料的發(fā)酵過程,屬于邊糖化邊生長邊產(chǎn)酸的過程。初始pH值過低,會(huì)直接導(dǎo)致糖化酶活性低,淀粉不能完全水解,反之如果發(fā)酵液初始pH值較高,會(huì)使發(fā)酵過程中草酸和葡萄糖酸大量積累,使發(fā)酵液中雜酸含量過高。不同發(fā)酵液初始pH值對檸檬酸發(fā)酵產(chǎn)量的影響見圖4。

    圖4 不同pH值對黑曲霉的產(chǎn)酸影響Fig.4 Effects of different pH on acid production by Aspergillus niger

    如圖4所示,黑曲霉在進(jìn)行檸檬酸發(fā)酵時(shí),只有發(fā)酵液初始pH值為5~6時(shí),產(chǎn)酸最高。究其原因主要是,糖化酶的活性最高pH值為4.0~4.6,如果起始pH值低于糖化酶的作用最適范圍,會(huì)使得發(fā)酵原料得不到充分利用,進(jìn)而影響最終產(chǎn)酸率。反之如果發(fā)酵液初始pH值過高,則黑曲霉菌絲球會(huì)出現(xiàn)老化現(xiàn)象,提前進(jìn)入衰老期。所以,發(fā)酵液初始最適pH值為5~6。

    2.3.3 氮源種類對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    菌體利用發(fā)酵液中的氮源是為了合成自身生長發(fā)育所需要的各種蛋白質(zhì)、核酸和各種氨基酸。在菌體的生長過程中,不同菌體利用各種有機(jī)氮或無機(jī)氮的種類是不同的。但是黑曲霉的生長過程比較粗放,可以利用各種有機(jī)或無機(jī)氮源作為其自身氮源。檸檬酸產(chǎn)酸與氮源種類的關(guān)系見圖5。

    結(jié)果如圖5所示,以豆餅粉為氮源時(shí)菌株的產(chǎn)酸能力高于其它氮源。

    圖5 檸檬酸產(chǎn)酸與氮源種類的關(guān)系Fig.5 Relation between citric acid production and nitrogen source species

    2.3.4 氮源含量對黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)酸的影響

    檸檬酸產(chǎn)酸與氮源含量的關(guān)系見圖6。

    圖6 檸檬酸產(chǎn)酸與氮源含量的關(guān)系Fig.6 Relation between acid production and nitrogen source content

    從圖6可以看出,黑曲霉進(jìn)行檸檬酸發(fā)酵時(shí),當(dāng)?shù)吹挠昧繛?.8%時(shí),檸檬酸的產(chǎn)量最高。因此,在以豆餅粉為氮源的條件下,黑曲霉利用進(jìn)行發(fā)酵產(chǎn)生檸檬酸的最適氮源含量為0.8%。

    2.4 50 L發(fā)酵罐中試試驗(yàn)

    50 L中試試驗(yàn)結(jié)果見表6。

    表6 50L中試試驗(yàn)結(jié)果Table 6 50L pilot test results

    由表6可以看出,通過優(yōu)化檸檬酸發(fā)酵工藝,中試罐發(fā)酵產(chǎn)酸17.94%,周期63 h、發(fā)酵指數(shù)2.85 kg/(m3·h)及轉(zhuǎn)化率99.7%都達(dá)到較好的發(fā)酵水平。

    3 結(jié)論

    以菌種zs-10為出發(fā)株,經(jīng)過γ射線(Co60)及亞硝基胍復(fù)合誘變,得到一株高產(chǎn)檸檬酸且遺傳穩(wěn)定性高的誘變菌株zs-10-5。通過對種子培養(yǎng)條件和發(fā)酵條件的優(yōu)化,最終發(fā)現(xiàn)種子以豆餅粉為氮源,初總糖濃度10%培養(yǎng)24 h左右形成菌絲球性能最好。發(fā)酵最適溫度35℃,初始發(fā)酵在pH5~6,以豆餅粉為氮源為0.8%,通過50 L發(fā)酵罐進(jìn)行了驗(yàn)證,其發(fā)酵結(jié)果為周期63 h,產(chǎn)酸17.94 g/100 mL,發(fā)酵指數(shù)為2.85 kg/(m3·h),轉(zhuǎn)化率為99.7%。比出發(fā)菌株發(fā)酵周期縮短3 h,產(chǎn)酸提高10%,轉(zhuǎn)化率提高5%。

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