宮夢曉,鄧鑫州,沈力,張夢琳,柯青,吳林,劉艷芹,陳曉琳,邱小燕,駱志國
近年來,我國喉癌發(fā)病率及死亡率不斷上升,已成為頭頸部最常見的惡性腫瘤之一[1],晚期喉癌術后同期放化療的5年生存率為68.2%,單純放療的5年生存率僅為48.9%[2]。放療在喉鱗癌的治療中起到至關重要的作用[3]。放射抵抗是導致放療失敗的重要原因[4]。
UBE2N是泛素交聯(lián)酶E2家族的成員之一。泛素交聯(lián)酶E2家族參與泛素-蛋白酶體復合通路(ubiquitin-proteasome pathway, UPP)對底物蛋白的泛素化降解[5]。泛素-蛋白酶體復合通路在調控細胞周期、增殖、信號轉導、DNA損傷修復、免疫應答等方面都發(fā)揮著重要作用[6]。UBE2N是DNA損傷修復通路的成員[7],DNA損傷后,UBE2N與泛素連接酶RNF8及RNF168結合后,促進DNA損傷反應中BRCA1及H2AX的泛素化修飾,從而促進下游DNA損傷反應的進行[8]。研究發(fā)現(xiàn)泛素交聯(lián)酶UBE2N可能調控腫瘤細胞的放療敏感度[9]。本研究沉默喉鱗癌hep-2細胞中UBE2N的表達,通過CCK8法、流式細胞術及克隆形成等實驗,驗證沉默UBE2N表達后對喉鱗癌細胞放射敏感度的影響,為明確UBE2N在調控喉鱗癌細胞放射敏感度中的作用提供實驗依據(jù)。
DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清購自美國Gibco公司;UBE2N siRNA沉默序列和陰性對照序列均由上海吉瑪公司合成。RNA反轉錄試劑盒、PCR擴增試劑盒購自日本TaKaRa公司;蛋白裂解液、蛋白提取試劑盒、BCA蛋白定量試劑盒、細胞周期檢測試劑盒、細胞凋亡檢測試劑盒均購自南通碧云天生物技術研究所;內參GAPDH購自蘇州GenePharma公司。GAPDH抗體、β-actin抗體、UBE2N抗體及各HRP-標記二抗購自英國Abcam公司;ECL化學發(fā)光試劑盒購自美國Thermo公司。Lipofectamine 3000購自美國Invitrogen公司;CCK8試劑盒購自日本同仁公司。流式細胞儀購自美國BD公司;熒光定量PCR儀、酶標儀、凝膠成像系統(tǒng)購自美國Bio-Rad公司。相機購自日本Canon公司。
1.2.1 細胞培養(yǎng) 人喉鱗癌hep-2細胞購自中國科學院上海細胞庫,用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,置于37℃含5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.2.2 UBE2N RNA沉默質粒轉染 實驗分為UBE2N干擾組(UBE2N-siRNA)和陰性對照組(NC),UBE2N RNA沉默靶序列為:5′-AUCCAGAUGAUCCAUUAGCAATT-3′,陰性對照序列為:5′-TTCTCCGAACGTGTCACGT-3′。收集細胞,調整細胞密度至2×105/ml,接種于6孔板。待細胞貼壁生長后,按照Lipofectamine 3000說明書操作轉染siRNA,轉染24、48、72、96 h后,收集細胞進行后續(xù)相關實驗。
1.2.3 qPCR實驗 收集細胞(約1×106個),按照RNA反轉錄試劑盒說明書操作提取RNA。取總RNA 2μg進行反轉錄反應,然后進行qPCR反應,PCR反應條件:95℃預變性1 min,95℃變性15 s,60℃退火1 min,72℃延伸1min,40個循環(huán)。UBE2N引物序列為:F: 5′-GCGTTTGCTGGCAGAACCAG-3′,R: 5′-CTCAAAGGGGGAATCCTGAGGG-3′;GAPDH引物序列為:F: 5′-CCAACCGCGAGAAGATGA-3′,R:5′-CCAGAGGCGTACAGGGATAG-3′。以GAPDH為內參,按照2-ΔΔCt法計算UBE2N相對表達量。
1.2.4 Western blot實驗 收集細胞(約1×106個),按照試劑盒說明書操作提取蛋白,采用BCA法進行蛋白定量。取10 μg總蛋白用10% SDS-PAGE膠電泳,轉膜后置于5%脫脂奶粉中室溫封閉2 h。一抗4℃孵育過夜,二抗室溫孵育2 h,采用ECL 化學發(fā)光試劑盒顯影。以ImagePro Plus 6.0圖像分析軟件計算灰度值,將內參蛋白與目的蛋白兩者灰度值的比值作為目的蛋白的表達量。
1.2.5 CCK8增殖實驗 hep-2細胞經(jīng)siRNA轉染,并用0、2、4、6、8 Gy X線照射或不照射,收集細胞(約1×106個),以每孔3 000個細胞鋪到96孔板中,培養(yǎng)24、48、72和96 h后分別向對應的細胞中加入CCK8,將96孔培養(yǎng)板置于37℃恒溫箱孵育1 h,用酶標儀測450 nm處吸光度值。
1.2.6 細胞凋亡的測定 hep-2細胞經(jīng)siRNA轉染,并用0、2、4、6、8 Gy X線照射后,收集細胞(約1×106個),預冷PBS洗3次。按照細胞凋亡檢測試劑盒說明書操作,采用Annexin V/PI雙染,流式細胞儀檢測細胞凋亡。
1.2.7 細胞周期的測定 hep-2細胞經(jīng)siRNA轉染,并用0、2、4、6、8 Gy X線照射后,收集細胞(約1×106個),預冷PBS洗3次。70%的冷乙醇4℃固定過夜。按照細胞周期檢測試劑盒說明書操作染色,采用流式細胞儀檢測細胞周期。
1.2.8 細胞克隆形成實驗 hep-2細胞經(jīng)siRNA轉染,收集細胞鋪到6孔板中,每孔2 000個細胞。每組3孔平行樣本。 并用0、2、4、6、8 Gy X線照射后,靜置于37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14天。14天后培養(yǎng)板中出現(xiàn)肉眼可見克隆時,終止培養(yǎng),用PBS輕輕沖洗2~3遍,1%結晶紫染色20 min,除去染色液,純水輕輕洗滌2~3遍,晾干,用相機拍照留底,在顯微鏡下計數(shù)克隆個數(shù),≥50個的細胞團作為一個克隆。根據(jù)克隆形成計數(shù)結果計算每組細胞克隆形成率。
使用SPSS 22.0軟件分析數(shù)據(jù)。以上所有實驗至少重復三次,數(shù)據(jù)結果以(x±s)表示,通過配對樣本t檢驗進行計算分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
轉染48 h后qPCR檢測結果顯示:UBE2N-siRNA組UBE2N mRNA表達(0.459±0.044)明顯受到抑制,與NC組(1.000)比較,差異有統(tǒng)計學意義(F=0.10, P=0.01),見圖1A。轉染72 h后Western blot結果顯示:UBE2N siRNA顯著抑制了UBE2N蛋白水平,見圖1B。上述結果表明UBE2N siRNA能夠有效抑制hep-2細胞UBE2N表達。
圖1 qPCR和Western blot法檢測siRNA沉默UBE2N后UBE2N mRNA(A)和蛋白水平(B)Figure1 UBE2N mRNA(A) and protein(B) expression detected by qPCR and Western blot after UBE2N siRNA transfection
CCK8檢測結果顯示:經(jīng)siRNA沉默24 h后,UBE2N-siRNA組和NC組細胞活力指數(shù)分別為(0.31±0.02)和(0.26±0.02)(P=0.042);48 h后, 細胞活力指數(shù)分別為(0.49±0.10)和(0.29±0.02)(P=0.037);72 h后, 細胞活力指數(shù)分別為(0.35±0.00)和(0.23±0.02)(P=0.003);96 h后, 細胞活力指數(shù)分別為(0.27±0.03)和(0.20±0.00)(P=0.009)。說明沉默UBE2N顯著提高hep-2細胞增殖能力,見圖2。
圖2 CCK8檢測沉默UBE2N后hep-2細胞增殖情況Figure2 Effects of UBE2N silence on hep-2 cell proliferation detected by CCK8 assay
經(jīng)0、2、4、6、8 Gy射線照射48 h后,CCK8法結果顯示:4、6 Gy射線照射后,UBE2N-siRNA組hep-2細胞增殖能力顯著高于NC組(F4Gy=0.27,P4Gy=0.04; F6Gy=0.63, P6Gy=0.03),見圖3。提示沉默UBE2N會增強喉鱗癌細胞放射抵抗。
圖3 CCK8檢測沉默UBE2N后hep-2細胞輻射后細胞增殖情況Figure3 Effect of UBE2N silence on proliferation of hep-2 cells detected by CCK8 assay after UBE2N siRNA transfection and different doses of irradiation
經(jīng)0、2、4、6、8 Gy射線照射后,NC組和UBE2N-siRNA組G1期細胞比例差異無統(tǒng)計學意義(均P>0.05);未經(jīng)射線照射(0 Gy),UBE2N-siRNA組G2期細胞比例明顯高于NC組(P=0.043);但經(jīng)2、6 Gy射線照射后,UBE2N-siRNA組G2期細胞比例明顯低于NC組(均P<0.05);經(jīng)0、4、6 Gy射線照射后,UBE2N-siRNA組S期細胞比例明顯高于NC組(均P<0.05),見圖4、表1。結果表明經(jīng)輻射處理后,沉默UBE2N會促進DNA合成,并部分解除G2阻滯,提示沉默UBE2N會增強喉鱗癌細胞放射抵抗。
表1 沉默UBE2N對經(jīng)X射線處理后的hep-2細胞周期的影響Table1 Effects of UBE2N silence on cell cycle of hep-2 cells after X-ray treatment
沉默UBE2N并經(jīng)0、2、4、6、8 Gy射線照射后,Annexin V/PI雙染法結果顯示:UBE2N 干擾組細胞總凋亡率(早期凋亡+晚期凋亡)顯著低于NC組(均P<0.05),見圖5、表2。結果證明沉默UBE2N降低輻射誘導的喉鱗癌細胞凋亡。
圖4 流式細胞術檢測沉默UBE2N基因對輻射后hep-2細胞周期的影響Figure4 Effects of UBE2N silence on cell cycle of hep-2 cells detected by flow cytometry after UBE2N siRNA transfection and different doses of irradiation
表2 沉默UBE2N對X射線誘導的細胞凋亡的影響Table2 Effects of UBE2N silence on X-ray-induced cell apoptosis
沉默UBE2N并經(jīng)0、2、4、6 Gy射線照射后,UBE2N-siRNA組細胞克隆形成能力顯著強于NC組(均P<0.05),見圖6、表3。提示沉默UBE2N會增強喉鱗癌細胞放射抵抗。
近年研究顯示,泛素交聯(lián)酶與腫瘤放療抵抗密切相關。研究發(fā)現(xiàn)使用一種特異性抑制小分子抑制劑NSC697923抑制UBE2N后,P53及JNK通路激活,神經(jīng)母細胞瘤細胞、彌漫性大B淋巴瘤細胞的增殖減慢并促進其凋亡,故而推測UBE2N可能是這兩種腫瘤的潛在治療靶點之一[10-11]。張喜梅等在人喉鱗癌細胞株中發(fā)現(xiàn)UBE2N在放療抵抗株hep-2R中表達明顯高于親本細胞hep-2,提示泛素交聯(lián)酶UBE2N可能調控腫瘤細胞的放射敏感度[9],但未做相關功能實驗進行驗證。
細胞周期調控是決定細胞放射敏感度的一個關鍵因素。輻射誘導DNA損傷,使細胞周期產生阻滯,如G2/M期阻滯[12],為DNA修復提供充足的時間[13]。本研究發(fā)現(xiàn)在細胞周期實驗中,hep-2細胞轉染UBE2N siRNA后,其S期顯著延長,而G2期顯著縮短,增殖實驗也表明沉默UBE2N增強hep-2細胞增殖,因此UBE2N調控細胞增殖和細胞周期可能是調節(jié)放射敏感度的重要機制。
圖5 流式細胞術檢測沉默UBE2N對輻射后hep-2細胞凋亡的影響Figure5 Effects of UBE2N silence on apoptosis of hep-2 cells detected by flow cytometry after UBE2N siRNA transfection and different doses of irradiation
細胞凋亡是影響細胞放射敏感度的重要原因,是一種潛在的放療增敏機制[14-15],輻射可通過多種途徑誘導細胞凋亡。本研究通過AnnexinV/PI雙染法證實,經(jīng)X線照射后,轉染UBE2N siRNA較轉染陰性對照NC的hep-2細胞凋亡比例明顯減少??寺⌒纬陕适欠从臣毎后w依賴性和增殖能力的重要指標。本研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)X線照射后,UBE2N沉默組細胞克隆形成率顯著升高,提示沉默UBE2N能顯著降低喉鱗癌細胞群體依賴性,并增強喉鱗癌細胞增殖能力。
圖6 克隆形成實驗檢測沉默UBE2N對輻射后hep-2細胞克隆形成能力的影響Figure6 Effects of UBE2N silence on clone formation of hep-2 cells detected by clone formation assay after UBE2N siRNA transfection and different doses of irradiation
表3 沉默UBE2N對X射線處理后的細胞克隆形成能力的影響Table3 Effects of UBE2N silence on cell clone formation ability after X-ray treatment
綜上所述,UBE2N通過調控細胞增殖、細胞周期進展、細胞克隆形成能力和細胞凋亡來影響喉鱗癌細胞放射抵抗。本研究在細胞水平探討了UBE2N對人喉鱗癌細胞放射抵抗的影響,但相關動物實驗和機制研究并未完成,因此,在體內外探討UBE2N在人喉鱗癌細胞放射敏感度的機制是我們下一步需要完成的內容,以期為喉鱗癌放療增敏提供新的可靠靶點。