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    葡萄柚中糖基轉(zhuǎn)移酶對(duì)槲皮素及其類似物催化機(jī)制探討

    2019-07-29 02:50:44葉靜斯竇文芳王程
    生物技術(shù)通報(bào) 2019年7期
    關(guān)鍵詞:糖基糖苷糖基化

    葉靜斯 竇文芳 王程

    (江南大學(xué)藥學(xué)院,無錫 214122)

    植物糖基轉(zhuǎn)移酶(Glycosyltransferase,GT)是一類與多糖、糖脂、糖蛋白、植物次生產(chǎn)物、核酸等生物分子的代謝密切相關(guān)的酶[1-2],在植物細(xì)胞中廣泛存在,其主要作用方式是通過產(chǎn)生糖苷鍵將供體糖分子或相關(guān)基團(tuán)轉(zhuǎn)移到特異性受體上[3]。植物中的糖苷鍵相關(guān)受體很多,如甘露糖(Man)類糖蛋白、糖核苷酸等,形成的糖蛋白與相關(guān)糖核酸在植物的種子萌發(fā)、幼苗生長、生殖和應(yīng)激等生命過程中均起重要作用[4]。

    槲皮素(Quercetin)又名櫟精、槲皮黃素,屬于黃酮類化合物,分子式為C15H10O7,難溶于水,可溶于甲醇、冰醋酸、丙酮和堿等。人類日常食物中不僅含有槲皮素自由形態(tài),還存在糖苷的形式,例如蘆丁和槲皮苷。近年來國內(nèi)外研究表明,槲皮素有很多功效,包括抗癌作用[5-6]、抗氧化作用[7]、抗炎作用[8-9]、抗病毒作用[10-11]及心血管保護(hù)作用[12]等。但是槲皮素的水溶性較差,在一定程度上影響了它們的開發(fā)和利用。因此,需要對(duì)這些化合物進(jìn)行結(jié)構(gòu)改造。而糖基化的主要目的是提高天然產(chǎn)物在水相中的溶解性,從而使一些化合物的理化性質(zhì)和生理活性發(fā)生改變。改變水溶性的方法主要是糖基化,化學(xué)合成的方法存在缺乏區(qū)域、立體化學(xué)選擇性,專一性差等缺點(diǎn),生物轉(zhuǎn)化技術(shù)卻可以彌補(bǔ)化學(xué)合成的不足[13]。

    Ko等[14]以來源于蠟狀芽胞桿菌的糖基轉(zhuǎn)移酶(BcGT-1)對(duì)槲皮素進(jìn)行糖基化反應(yīng),糖基化發(fā)生在槲皮素的3位及7位羥基上,該轉(zhuǎn)化體系以UDP(尿苷二磷酸)-葡萄糖為糖基供體,槲皮素為糖基受體,分別得到槲皮素-3-O-葡萄糖苷和槲皮素-7-O-葡萄糖苷。Lim 等[15]以來源于擬南芥的7種尿苷二磷酸葡萄糖糖基轉(zhuǎn)移酶(UGT)對(duì)槲皮素進(jìn)行糖基化修飾,該轉(zhuǎn)化反應(yīng)以UDP-葡萄糖為糖基供體,糖基化位置分別在槲皮素的3、7、3′和4′位羥基,得到6種不同的糖基化產(chǎn)物。Son等[16]以蔗糖合成酶與糖基轉(zhuǎn)移酶的融合蛋白對(duì)槲皮素進(jìn)行糖基化,反應(yīng)以UDP-葡萄糖為糖基供體,槲皮素為糖基受體時(shí),得到槲皮素-7,3′ -2-O-葡萄糖苷。

    查閱相關(guān)文獻(xiàn)發(fā)現(xiàn)[14-18],糖基化反應(yīng)的酶多是來源于微生物體內(nèi),且其反應(yīng)會(huì)生成多個(gè)產(chǎn)物,這對(duì)產(chǎn)物的純化造成一定的困難,并且天然黃酮類糖基化多發(fā)生在植物當(dāng)中,所以本實(shí)驗(yàn)研究的是葡萄柚中的糖基轉(zhuǎn)移酶(FGT),對(duì)槲皮素、柚皮苷、柚皮素進(jìn)行糖基化。以FGT作為糖基轉(zhuǎn)移酶對(duì)黃酮類化合物進(jìn)行糖基化的研究較少,并且所得到的糖苷產(chǎn)物為單一性產(chǎn)物,簡化了后續(xù)的純化操作。本研究給未來槲皮素糖基化的工業(yè)制備提供了新的思路。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌種的來源 基因工程菌Escherichia coli BL21 / pGEX-4T-1-FGT由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建、保存。

    1.1.2 試劑與儀器 槲皮素、柚皮素、柚皮苷購買于成都德銳可生物科技有限公司;AB-8大孔吸附樹脂、Sephadex LH-20填料購買于北京英萊克科技發(fā)展有限公司;實(shí)驗(yàn)中所涉及的所有試劑均來自于上海生物工程生物科技有限公司,乙腈為HPLC級(jí)別;高效液相色譜(安捷倫公司,規(guī)格型號(hào):1260)。

    1.2 方法

    1.2.1 菌株的表達(dá)與純化 將實(shí)驗(yàn)室已構(gòu)建的工程菌培養(yǎng)在含終濃度0.1 g/L氨芐青霉素的100 mL LB培養(yǎng)基中,37℃。培養(yǎng)基的OD600達(dá)到0.8后,添加異丙基-1-硫代-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)進(jìn)行誘導(dǎo),IPTG的最終濃度為 4×10-4mol/L,20℃下10-12 h。離心收集菌體(10 000 r/min,10 min,4℃),再用 1-2 mL buffer(2×10-2mol/L Tris-HCl,pH7.3)重懸,4℃下5 min,棄上清后-80℃保存菌體。菌體破碎采用反復(fù)凍融的方法,用裂解緩沖液(5×10-2mol/L Tris-HCl,pH 8.0;1×10-1mol/L NaCl;5×10-3mol/L EDTA;1 g/L溶菌酶;1×10-3mol/L DTT)稀釋10倍。目標(biāo)蛋白用GST標(biāo)簽柱純化。該純化的酶用12%聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)檢驗(yàn),并加10%甘油保存于-80℃冰箱中。

    1.2.2 酶濃度的測定 蛋白濃度的測定采用考馬斯亮藍(lán)法(Bradford法)[19]。采用Bradford蛋白濃度試劑盒對(duì)所純化的蛋白進(jìn)行濃度的測定。

    蛋白標(biāo)準(zhǔn)液的制備:把5 mg/L牛血清蛋白,用 1×PBS 稀釋為 :10、20、40、60、80、100、120 μg/mL。

    分光光度法:分別取不同稀釋濃度標(biāo)準(zhǔn)液100 μL,加入到1.5 mL離心管中,再加入1 mL Bradford工作液,迅速混勻。室溫下反應(yīng)5 min后,在分光光度計(jì)上測各管的A595值。根據(jù)所測的數(shù)據(jù)得到線性方程,后續(xù)純化得到的蛋白可以根據(jù)線性方程得到相應(yīng)的蛋白濃度。酶液檢測的A595值帶入下列方程中,可直接得到酶濃度。計(jì)算公式如下:

    1.2.3 酶催化反應(yīng) 將已純化的FGT酶進(jìn)行催化反應(yīng),反應(yīng)體系包括:40 μL 2×10-2mol/L的不同黃酮(槲皮素、柚皮素、柚皮苷)和20 μL 1×10-2mol/L UDP-糖(UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖、UDP-甘露糖),50 μL 5×10-2mol/L pH 7.0的 Tris-HCl緩沖液和 25 μL 5×10-2mol/L MgCl2,85 μL 去離子水,混合后,加入150 μL 0.4 g/L FGT酶。相同體系下不加FGT酶為對(duì)照組。在35℃下反應(yīng)16-24 h。產(chǎn)物用高效液相色譜(HPLC)檢測。

    1.2.4 酶催化反應(yīng)條件的研究

    1.2.4.1 pH對(duì)酶活的影響 研究pH對(duì)酶活性的影響,pH的區(qū)間為3.0-9.0,溫度35℃,采用的緩沖液分別為:5×10-2mol/L檸檬酸緩沖液,pH 3.0-5.0;5×10-2mol/L Na2HPO4-NaH2PO4緩 沖 液,pH 6.0-7.0;5×10-2mol/L Tris-HCl,pH 8.0-9.0。產(chǎn)物的量用HPLC方法來定量。制作出產(chǎn)物的量與反應(yīng)pH的曲線圖。

    1.2.4.2 溫度對(duì)酶活的影響 研究溫度對(duì)酶活性的影響,溫度的測量范圍為20-45℃,底物為槲皮素與UDP-葡萄糖,pH 7.0,產(chǎn)物的量用HPLC方法來定量。制作出產(chǎn)物的量與反應(yīng)溫度的曲線圖。

    1.2.5 槲皮素糖苷分離純化

    1.2.5.1 AB-8大孔吸附樹脂分離純化[20]預(yù)處理方法:先用3%的氫氧化鈉溶液浸泡24 h,再用蒸餾水清洗至pH值為中性,濕法裝柱,用2-3倍柱體積的95%乙醇洗柱,最后用蒸餾水洗去乙醇即可。將反應(yīng)液濃縮,濃縮后的樣品在AB-8大孔吸附樹脂中吸附3 h,后用大量的蒸餾水洗脫,再用80%乙醇洗脫,收集洗脫液。

    1.2.5.2 Sephadex LH-20 柱分離純化[21]預(yù)處理方法:用50%甲醇溶液溶脹填料5 h,濕法裝柱,用10倍柱體積的50%甲醇低流速清洗。乙醇樣品濃縮后,上樣。先用50%甲醇溶液洗脫,收集槲皮素糖苷樣品,再用80%甲醇溶液洗脫槲皮素。

    1.2.6 產(chǎn)物檢測方法

    1.2.6.1 HPLC檢測 得到的反應(yīng)液經(jīng)過0.22 μm孔徑的濾膜過濾,使用安捷倫TC-C18,150×4.6 mm柱。液相檢測方法,槲皮素:緩沖液A為含0.1%磷酸的水溶液,緩沖液B為乙腈,運(yùn)行程序:0 min 75%B到15 min 60% B,流速1 mL/min,進(jìn)樣量為5 μL,370 nm,溫度為30℃。柚皮素、柚皮苷:緩沖液A為含0.1%磷酸的水溶液,緩沖液B為乙腈,運(yùn)行程序:0 min 75% B到30 min 5% B,流速1 mL/min,進(jìn)樣量5 μL,285 nm,溫度30℃。

    1.2.6.2 槲皮素糖苷的液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(LCMS)檢測分析 WATERS MALDI SYNAPT Q-TOF MS(WATERS,UK)進(jìn)行MS分析。采用負(fù)離子化方式,毛細(xì)管電壓為3.5 KV,加熱溫度為100℃。檢測槲皮素糖苷分子量。

    1.2.6.3 槲皮素糖苷的核磁氫譜(NMR)檢測分析 冷凍干燥的樣品用氘代-二甲基亞砜溶解,在Aduance Ⅲ 400 MHZ質(zhì)譜儀上檢測糖苷產(chǎn)物結(jié)構(gòu)。

    2 結(jié)果

    2.1 FGT純化及濃度測定結(jié)果

    根據(jù)實(shí)驗(yàn)室已構(gòu)建的FGT酶信息可得,目的蛋白的大小為76.7 kD。聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDSPAGE)結(jié)果(圖1)顯示,所純化得到的蛋白為目的蛋白FGT酶,圖中在26 kD左右的位置出現(xiàn)的條帶為在純化過程中斷裂的GST標(biāo)簽。

    圖1 FGT酶純化SDS-PAGE結(jié)果

    2.2 酶催化反應(yīng)體系

    用HPLC分別對(duì)9種組合反應(yīng)液進(jìn)行檢測驗(yàn)證(圖2)。圖2-A-C為槲皮素作為底物的反應(yīng),糖基供體依次為UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖、UDP-甘露糖,相同反應(yīng)時(shí)間,HPLC檢測圖譜顯示,以UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖為糖基供體時(shí),在4 min左右出現(xiàn)了一個(gè)新的吸收峰,表示生成了新的產(chǎn)物。11 min左右的吸收峰為未反應(yīng)的槲皮素。而UDP-甘露糖卻沒有生成新的物質(zhì),說明FGT酶可以催化槲皮素與UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖發(fā)生糖基化反應(yīng)。圖2-D-F為柚皮苷作為底物的反應(yīng),糖基供體依次為UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖、UDP-甘露糖,HPLC檢測結(jié)果顯示并沒有新的物質(zhì)生成。圖2-G-I為柚皮素作為底物的反應(yīng),糖基供體依次為UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖、UDP-甘露糖,HPLC檢測結(jié)果顯示沒有新的物質(zhì)生成。

    圖2 FGT催化糖基化反應(yīng)結(jié)果HPLC分析

    2.3 酶催化反應(yīng)條件

    2.3.1 pH對(duì)FGT酶活力的影響 實(shí)驗(yàn)以槲皮素和UDP-葡萄糖作為底物,pH 設(shè)置為 3、4、5、6、7、8、9。通過HPLC結(jié)果分析,pH 7的產(chǎn)物量最高,所以以pH 7產(chǎn)物量做對(duì)照,制作了一個(gè)曲線圖來探究出其他pH值的相對(duì)活性(圖3-A)。pH 3、4相對(duì)活性為0,即在這兩種pH環(huán)境下酶喪失活性,HPLC檢測沒有生成新的產(chǎn)物。pH 5相對(duì)比活為24.87%,pH 6相對(duì)比活為46.15%,pH 8相對(duì)比活為58.97%,pH 9相對(duì)比活為17.44%。

    2.3.2 溫度對(duì)FGT酶活力的影響 實(shí)驗(yàn)以槲皮素和UDP-葡萄糖作為反應(yīng)底物,溫度設(shè)置為20℃、25℃、30℃、35℃、40℃(圖3-B)。以35℃為對(duì)照,計(jì)算其他溫度相對(duì)活性。20℃相對(duì)比活為50%,25℃相對(duì)比活為65%,30℃相對(duì)比活為68%,40℃相對(duì)比活為34%。

    2.4 槲皮素糖苷分離純化結(jié)果

    反應(yīng)液經(jīng)過AB-8大孔吸附樹脂除去雜質(zhì)、Sephadex LH-20柱純化得到槲皮素糖苷,分離的效果用HPLC檢測,得到的結(jié)果如圖4 所示。圖4-A-C為槲皮素與UDP-葡萄糖糖基化反應(yīng)生成的糖苷純化HPLC檢測圖譜,圖4-A為反應(yīng)后的HPLC圖譜,圖中4 min左右出現(xiàn)的峰為目標(biāo)產(chǎn)物槲皮素糖苷,11 min左右出現(xiàn)的峰為槲皮素;圖4-B為經(jīng)過AB-8大孔吸附樹脂純化后的HPLC檢測圖譜,與圖A對(duì)比,去除了2-3 min之間的雜質(zhì);圖4-C為經(jīng)過Sephadex LH-20柱得到的糖苷HPLC檢測圖譜,結(jié)果表明,可以得到較純的槲皮素葡萄糖苷。圖4-D-F為槲皮素與UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖糖基化反應(yīng)生成的糖苷純化HPLC檢測圖譜,圖4-D為反應(yīng)后的HPLC圖譜,圖中4.1 min左右出現(xiàn)的峰為目標(biāo)產(chǎn)物,11 min左右出現(xiàn)的峰為槲皮素;圖4-E為經(jīng)過AB-8大孔吸附樹脂純化后得到的HPLC圖譜,與圖4-D比較,去除了1-3 min的雜質(zhì);圖4-F為經(jīng)過Sephadex LH-20柱純化后得到的糖苷產(chǎn)物的HPLC圖譜,結(jié)果表明,可以得到較純的槲皮素N-乙酰-D-氨基葡萄糖苷產(chǎn)物。HPLC檢測結(jié)果顯示,通過兩種柱分離的方法可以得到純度較高的槲皮素糖苷產(chǎn)物。

    圖3 pH與溫度對(duì)酶活影響

    2.5 槲皮素糖苷的質(zhì)譜分析

    對(duì)能夠產(chǎn)生新物質(zhì)的反應(yīng)體系做進(jìn)一步MS檢測。本實(shí)驗(yàn)中,檢測使用的是負(fù)離子源,槲皮素的分子量為302,葡萄糖分子量為180,當(dāng)葡萄糖分子結(jié)合到槲皮素上時(shí)會(huì)脫去一分子水,故而產(chǎn)物的分子量為464。所以根據(jù)負(fù)離子源時(shí)會(huì)產(chǎn)生失去氫峰,分子量減少1,所以質(zhì)譜圖中顯示的是463(圖5-A),證明反應(yīng)生成的產(chǎn)物為槲皮素-葡萄糖苷。同理,UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖的分子量為221,與槲皮素結(jié)合后脫去一分子水后分子量為505,質(zhì)譜檢測采用的是負(fù)離子源,所以顯示的分子量為504(圖5-B)。證明反應(yīng)生成了槲皮素-N-乙酰-D-氨基葡萄糖苷。

    圖4 酶催化產(chǎn)物的HPLC檢測結(jié)果

    2.6 產(chǎn)物結(jié)構(gòu)分析

    氫原子具有磁性,如電磁波照射氫原子核,它能通過共振吸收電磁波能量,發(fā)生躍遷。用核磁共振儀可以記錄到有關(guān)信號(hào),處在不同環(huán)境中的氫原子因產(chǎn)生共振時(shí)吸收電磁波的頻率不同,在圖譜上出現(xiàn)的位置也不同,各種氫原子的這種差異被稱為化學(xué)位移(ppm)。槲皮素結(jié)構(gòu)如圖 6 所示。槲皮素葡萄糖苷的核磁共振氫譜分別如圖 7 所示。將 6、8、2′、5′位的氫原子的化學(xué)位移分別同槲皮素進(jìn)行對(duì)比,結(jié)果如表1所示。槲皮素 6、8、2′、5′ 化學(xué)位移分別為 6.19、6.41、7.68、6.89 ppm。目標(biāo)產(chǎn)物 A(槲皮素葡萄糖苷)在 6、8、2′、5′ 化學(xué)位移分別為 6.15、6.34、7.57、6.83 ppm,且多了一個(gè)新的化學(xué)位移 5.44ppm,相比較槲皮素,6、8、2′、5′化學(xué)位移幾乎沒有改變,這表明并沒有在A、B環(huán)出現(xiàn)糖苷信號(hào)。出現(xiàn)這種現(xiàn)象表明糖苷分子連接在C環(huán)的3號(hào)位,且是β連接。同理,目標(biāo)產(chǎn)物B(槲皮素-N-乙酰-D-氨基葡萄糖苷)在 6、8、2′、5′ 化學(xué)位移分別為 6.20、6.44、7.64、6.86 ppm,且多了一個(gè)新的化學(xué)位移 5.60ppm,相比較槲皮素 6、8、2′、5′化學(xué)位移幾乎沒有改變,所以根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道[22]得知糖苷分子連接在C環(huán)的3號(hào)位,且是β連接。推測出來的結(jié)構(gòu)圖如圖8 所示。

    圖5 槲皮素糖苷產(chǎn)物質(zhì)譜檢測

    圖6 槲皮素的結(jié)構(gòu)式

    圖7 槲皮素糖苷的1H-NMR譜圖

    表1 槲皮素糖苷的部分氫譜數(shù)據(jù)

    3 討論

    槲皮素大量存在于各種植物以及日常食物和飲料中,如洋蔥、蘋果、漿果、西蘭花、茶和紅葡萄酒。并且槲皮素有很多功效,包括抗癌作用[5-6]、抗氧化作用[7]、抗炎作用[8-9]、抗病毒作用[10-11]、心血管保護(hù)作用[12]等。盡管槲皮素有如此多的生理活性功能,但槲皮素水溶性低,生物利用度差,而對(duì)槲皮素進(jìn)行糖基化修飾后,可以明顯提高水溶性。糖基化方法主要有酶法制備和化學(xué)合成,化學(xué)合成的方法存在缺乏區(qū)域、立體化學(xué)選擇性及專一性差等缺點(diǎn),生物轉(zhuǎn)化技術(shù)卻可以彌補(bǔ)化學(xué)合成的不足[13]。

    本研究采用葡萄柚中的糖基轉(zhuǎn)移酶FGT對(duì)黃酮類化合物進(jìn)行糖基化修飾,發(fā)現(xiàn)FGT酶可以以UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖為糖基供體和槲皮素進(jìn)行反應(yīng),HPLC檢測出新物質(zhì)。根據(jù)槲皮素-3-O-葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品,可以確定以UDP-葡萄糖為糖基供體的反應(yīng)生成了槲皮素糖苷,但是由于沒有槲皮素-N-乙酰-D-氨基葡萄糖苷的標(biāo)準(zhǔn)品作為對(duì)照,所以只能根據(jù)HPLC檢測結(jié)果和槲皮素-3-O-葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的出峰位置,推斷4.1 min左右出峰位置為槲皮素-N-乙酰-D-氨基葡萄糖苷。根據(jù)糖苷性質(zhì)對(duì)兩種產(chǎn)物分離純化,質(zhì)譜檢測后,驗(yàn)證了我們的推斷正確,再用核磁共振氫譜檢測確定兩種糖苷的結(jié)構(gòu)。

    本實(shí)驗(yàn)所采用的是來源于植物中的糖基轉(zhuǎn)移酶,相比來源于微生物體內(nèi)的糖基轉(zhuǎn)移酶(如源于蠟狀芽孢桿菌的糖基轉(zhuǎn)移酶(BcGT-1)對(duì)槲皮素進(jìn)行糖基化反應(yīng),該轉(zhuǎn)化體系以UDP(尿苷二磷酸)-葡萄糖為糖基供體,槲皮素為糖基受體,分別得到槲皮素-3-O-葡萄糖苷和槲皮素-7-O-葡萄糖苷[14]),我們獲得的兩種糖苷都發(fā)生在槲皮素的3號(hào)位上,相比較而言,F(xiàn)GT酶的專一性更強(qiáng),且生成單一產(chǎn)物,有利于簡化產(chǎn)物純化操作過程。

    然而,目前我們的研究還不夠完善,接下來可以進(jìn)行體內(nèi)體外抗氧化活性研究,全方位比較槲皮素與槲皮素糖苷生理活性的差異性。此外還需要對(duì)FGT酶轉(zhuǎn)糖基作用機(jī)理的研究,因?yàn)镕GT酶目前沒有文獻(xiàn)報(bào)道過,所以這有利于為后續(xù)糖基轉(zhuǎn)移酶的研究奠定重要基礎(chǔ)。

    圖8 槲皮素糖苷分子結(jié)構(gòu)圖

    4 結(jié)論

    以FGT作為催化酶,對(duì)黃酮類物質(zhì)進(jìn)行糖基化。參與反應(yīng)的糖基受體為槲皮素、柚皮素、柚皮苷,糖基供體為:UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖、UDP-甘露糖。經(jīng)HPLC檢測結(jié)果顯示,F(xiàn)GT僅可以催化槲皮素作為糖基受體,可與其發(fā)生反應(yīng)的糖基供體為UDP-葡萄糖、UDP-N-乙酰-D-氨基葡萄糖。對(duì)生成物進(jìn)行質(zhì)譜檢測,生成產(chǎn)物的分子量分別為463、504。進(jìn)一步用核磁共振氫譜鑒定結(jié)構(gòu),初步判定兩個(gè)糖苷產(chǎn)物分別為槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、槲皮素3-O-β-D-乙酰-D-氨基葡萄糖苷。酶的最適溫度和pH分別為35℃和7.0。

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