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    口服AdipoRon對2型糖尿病小鼠脾臟和胰腺功能的影響*

    2019-05-22 02:18:56謝克儉屈小虎王少杰
    中國應用生理學雜志 2019年1期
    關鍵詞:胰島脾臟灰度

    謝克儉, 黃 玲, 屈小虎, 李 雪, 王少杰, 肖 敏

    (溫州醫(yī)科大學檢驗醫(yī)學院、生命科學學院, 浙江 溫州 325035)

    2型糖尿病(type 2 diabetes melliters,T2DM)發(fā)病率逐年上升。據報道,全世界糖尿病患者已超過2億,而且在未來20年內可能突破3億[1]。T2DM是一種糖代謝紊亂的代謝性疾病,其發(fā)病機制主要分為:(1)胰島β細胞功能受損導致胰島素分泌缺失;(2)肝臟和肌肉組織對胰島素的敏感性下降,對葡萄糖的攝取和利用發(fā)生障礙。2型糖尿病的臨床特征主要是高血糖,發(fā)病原因復雜,常見因素有肥胖、缺乏鍛煉和應激反應[2]。T2DM發(fā)展到后期,嚴重影響腎功能,可引發(fā)腎衰竭和其他并發(fā)癥,嚴重影響患者的身體健康和生命安全。目前,該疾病的治療方式是藥物治療(口服降糖藥及胰島素治療)和非藥物治療(運動治療和飲食治療)[3]。T2DM仍然無法根治,臨床上使用的藥物只能相對控制血糖,所以開發(fā)新藥是非常必要的。研究報道:脂聯素(源于脂肪細胞)是一種脂肪細胞因子,脂聯素能改善胰島素抵抗,并且改正異常的糖脂代謝[4-5]。2013年,Okada-Iwabu M等發(fā)現AdipoRon(與脂聯素作用相似的小分子化合物)能夠降低2型糖尿病小鼠的胰島抵抗,減弱脂肪組織炎癥反應[6-7]。本課題組致力于研究AdipoRon,前期發(fā)現該小分子化合物能夠促進骨骼肌細胞的胰島素敏感性,減弱肝臟的氧化應激反應,降低2型糖尿病小鼠的胰島素抵抗反應。本研究通過檢測口服AdipoRon(50 mg/kg、20 mg/kg)對2型糖尿病小鼠胰腺和脾臟腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、胰島素受體(insulin receptor,INSR)、胰島素受體底物1(insulin receptor substrate 1,IRS-1)、脾臟系數,以及對胰腺磷酸化胰島素受體底物1(phosphorylation insulin receptor substrate 1,p-IRS-1)和胰島素(insulin)mRNA表達的影響,探討AdipoRon對糖尿病小鼠脾臟和胰腺組織的保護作用機制,以期為臨床治療2型糖尿病提供新方案。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物

    SPF級雄性C57/BL6小鼠40只,體重(25.0~26.0)g,購自上海史萊克公司。

    1.2 實驗儀器

    血糖測試儀A-3型(三諾),全自動生化分析儀(日本日立公司),小型臺式高速冷凍離心機(Thermo),NanoDrop 2000核酸蛋白分析儀(Thermo),S1000TMThermal Cycler梯度PCR儀(Bio-Rad),CFX ConnectTM熒光定量PCR檢測系(Bio-Rad)。

    1.3 主要試劑

    鏈脲佐菌素(STZ)、AdipoRon(購自上海恩美科技有限公司);Trizol(invitrogen),小鼠INSR、IRS-1和TNF-α的ELISA試劑盒(購自上海源葉生物科技有限公司);Insulin和actin primers(上海生工設計);PrimeScriptTM RT reagent Kit with gDNA Eraser(TakaRa);SYBR Green(Bio-Rad)。

    1.4 模型制備及分組

    40只SPF級雄性C57/BL6小鼠(由本院實驗動物中心提供)體重25~26 g,隨機分為正常對照組(NC)10只,造模組30只。造模組小鼠喂以高糖高脂飼料35 d后,每只小鼠在禁食12 h后腹腔注射鏈脲佐菌素40 mg/kg (臨用前用0.1 mol/L檸檬酸鈉緩沖液配成1% STZ、pH 4.2 的溶液),隔周再注射1次。注射后72 h取尾血測空腹血糖,血糖濃度≥11.6 mmol/L為糖尿病小鼠。造模成功小鼠隨機分為糖尿病模型(DM)組、低劑量AdipoRon(DM+L)組、高劑量AdipoRon(DM+H)組,每組10只。

    1.5 給藥、標本采集及計算脾臟系數

    使用去離子水溶解AdipoRon至終濃度1 mg/mL,DM+L組小鼠灌胃20 mg/kg AdipoRon,DM+H組小鼠灌胃50 mg/kg AdipoRon,NC、DM組則灌胃等體積去離子水,每日1次,共10日。末次干預后禁食12 h,稱量小鼠體重。摘除眼球法取血液樣本,3 500 r/min離心5 min,取上清,保存于4℃。取各組小鼠脾臟、胰腺。用電子天平稱量小鼠脾臟質量,計算脾臟系數=脾臟質量(mg)/體重(g)。將部分胰腺放入對應編號的包埋盒中,以4%多聚甲醛溶液進行固定;剩余胰腺放入對應編號的冷凍管中,置-80℃冰箱中保存。

    1.6 胰腺和脾臟INSR、IRS-1和TNF-α蛋白質含量測定

    剪取30~50 mg的胰腺或脾臟(約綠豆大小),放于2 ml EP管中,加入800 μl PBS溶液,于8 000 r/min,4℃離心3 min,棄去PBS,反復清洗3次。每管樣本加入500 μl RIPA裂解液,使用臺式電動勻漿器研磨組織,13 000 r/min,4℃離心20 min,取上清至新的EP管中。采用BCA法測定上清蛋白質濃度,使用PBS將蛋白質濃度調至2 mg/ml。嚴格按照ELISA試劑盒說明書操作,測定胰腺和脾臟INSR、IRS-1和TNF-α蛋白質含量。

    1.7 病理學觀察

    取各組4%多聚甲醛固定的胰腺標本,經梯度酒精脫水、二甲苯透明、浸蠟、石蠟包埋,切成4 μm厚切片,HE染色。用ECTIPSE 50I顯微圖像處理系統觀察并采集圖像,觀察各組胰腺組織形態(tài)變化。

    1.8 胰腺組織中p-IRS-1蛋白質水平測定

    采用Western blot方法檢測p-IRS-1蛋白質水平,使用Image J軟件對各組條帶進行灰度分析,各組樣本灰度值比內參β-actin灰度值以相對量表示蛋白質量,使用SPSS 18.0軟件進行統計學分析。

    1.9 胰腺Insulin mRNA表達量測定

    采用Trizol一步法提取小鼠胰腺總RNA,逆轉錄合成cDNA,操作嚴格遵照試劑盒說明書進行。用實時熒光定量PCR測定insulin mRNA表達量,以β-actin為內參。insulin mRNA上游引物序列 5’-GAC CCA GTA ACC ACC AGC CCT AAG T-3’,Insulin mRNA下游引物序列 5’-GAA CCA CAA AGG TGC TGC TTG AC-3’。嚴格按照熒光定量試劑盒操作,上機,擴增結果以△CT值表示,各組小鼠樣本mRNA表達量以樣本中β-actin的△Ct值為基準進行標準化計算,得到相對表達量,結果用2-△△Ct表示。

    1.10 統計學處理

    2 結果

    2.1 各組胰腺INSR、IRS-1、TNF-α水平比較

    與正常對照組比較,DM組、DM+H組、DM+L組小鼠胰腺TNF-α均升高,INSR和IRS-1水平均明顯降低(P<0.05);與DM組比較,DM+H組、DM+L組小鼠胰腺TNF-α水平下降,INSR和IRS-1水平均明顯升高(P<0.05);與DM+L組比較,DM+H組胰腺TNF-α水平明顯下降,INSR和IRS-1水平均明顯升高(P<0.05,表1)

    NC: Normal control; DM: Diabetes model control; DM+L: Diabetes model control with low AdipoRon; DM+H: Diabetes model control with high AdipoRon

    *P<0.05vsNC group;#P<0.05vsDM group;△P<0.05vsDM+L group

    2.2 各組脾臟INSR、IRS1、TNF-α水平及脾臟系數的比較

    與正常對照組比較,DM組、DM+H組、DM+L組小鼠脾臟TNF-α均明顯升高,INSR、IRS-1水平和脾臟系數均明顯降低(P<0.05);與DM組比較,DM+H組、DM+L組小鼠脾臟TNF-α下降,INSR、IRS-1水平和脾臟系數均明顯升高(P<0.05);與DM+L組比較,DM+H組脾臟TNF-α明顯下降,INSR和IRS-1水平均明顯升高(P<0.05,表2)。

    2.3 小鼠胰腺病理學觀察

    光鏡檢查正常對照組小鼠胰腺組織未見明顯異常,細胞排列緊密、飽滿、胰島體積大;DM組小鼠胰腺細胞排列較為疏散、胰島體積較??;DM+H組、DM+L組小鼠脾臟病理變化有不同程度減輕(圖1)。

    Group INSR(ng/ml) IRS-1(pg/ml)TNF-α(pg/ml)Spleen coefficient(mg/g)NC7.87±0.722683.72±230.53220.74±19.655.07±0.65DM3.98±0.38*1650.67±154.31*387.43±33.05*3.11±0.73*DM+L4.95±0.48*#1987.32±185.64*#320.94±30.97*#3.97±0.41*#DM+H6.39±0.70*#△2335.74±254.83*#△287.97±29.66*#△4.40±0.51*#

    NC: Normal control; DM: Diabetes model control; DM+L: Diabetes model control with low AdipoRon; DM+H: Diabetes model control with high AdipoRon; INSR: Insulin receptor; IRS-1: Insulin substrate 1

    *P<0.05vsNC group;#P<0.05vsDM group;△P<0.05vsDM+L group

    Fig.1Comparison of hematoxylin-eosin (HE) staining on pancreas tissues in the four groups(×200)

    NC: Normal control; DM: Diabetes model control; DM+L: Diabetes model control with low dipoRon; DM+H: Diabetes model control with high AdipoRon

    2.4 各組胰腺組織中p-IRS-1蛋白質水平的比較

    小鼠胰腺p-IRS-1蛋白質的免疫印跡灰度值統計分析結果顯示,DM組小鼠p-IRS-1灰度值(0.54±0.05)明顯低于NC組小鼠(1.42±0.15,P<0.01),DM+H組小鼠p-IRS-1灰度值(0.85±0.09)明顯高于DM組小鼠(0.54±0.05,P<0.05),DM+L組小鼠p-IRS-1灰度值(0.70±0.06)與DM組小鼠(0.54±0.05)之間無顯著性差異(P>0.05, 圖2)。

    Fig.2The comparison of p-IRS-1 level in pancreas among the four groups

    NC: Normal control; DM: Diabetes model control; DM+L: Diabetes model control with low AdipoRon; DM+H: Diabetes model control with high AdipoRon; p-IRS-1: Phosphorylation insulin receptor substrate 1

    **P<0.01vsNC group;#P<0.05vsDM group

    2.5 各組胰腺組織Insulin mRNA表達的比較

    對小鼠胰腺insulin mRNA表達量檢測結果顯示,DM組小鼠insulin mRNA相對表達量(0.54±0.06)較NC組小鼠(0.98±0.03)顯著下降(P<0.01)。與DM組小鼠相比較,DM+H組小鼠insulin mRNA的相對表達量(0.87±0.08)均顯著上升(P<0.05),DM+L組insulin mRNA的相對表達量(0.67±0.07)與DM組小鼠(0.54±0.06)無顯著差異(圖3)。

    Fig.3Comparison of insulin expression in the tissues among four groups

    NC: Normal control; DM: Diabetes model control; DM+L: Diabetes model control with low AdipoRon; DM+H: Diabetes model control with high AdipoRon

    **P<0.01vsNC group;#P<0.05vsDM group

    3 討論

    據文獻報道,機體在高血糖和高游離脂肪酸刺激下會產生大量自由基,從而引起氧化應激,進而發(fā)生胰島素抵抗、胰島素分泌受損的情況。胰島素抵抗可能先于糖尿病發(fā)生,當胰島素抵抗增強時,血糖才開始升高;而高血糖則會加重氧化應激,同時也可能激活應激敏感信號通路,進一步加重胰島素抵抗[8-9]。胰島β細胞是氧化應激的靶點,胰島β細胞內抗氧化酶活性下降到低水平時,氧化應激敏感性增強,進而損傷β細胞,促進細胞凋亡。同時,氧化應激可間接抑制β細胞功能(作用于胰島素信號轉導通路),使得機體內胰島素分泌水平降低,血糖升高[10]。胰島素受體(INSR)和磷酸化的胰島素受體底物1(p-IRS-1)是胰島素信號轉導通路中的兩個重要介質,在胰島功能受損、胰島素信號轉導障礙、胰島素抵抗和2型糖尿病的形成過程中發(fā)揮重要作用[11]。研究發(fā)現,腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor α,TNF-α)可以使細胞攝取葡萄糖減少,導致以肌肉、脂肪組織的胰島素受體自身磷酸化水平下降,胰島素信號轉導受到干擾,胰島素的拮抗激素增多等多種方式來參與胰島素抵抗,TNF-α被認為是觀察胰島素抵抗發(fā)生、發(fā)展及治療效果的關鍵指標[11-12]。據報道,脂聯素的作用為改善胰島素抵抗,糾正糖脂代謝紊亂[4-5],同時可抑制TNF-α[6]。日本東京大學的研究人員認為,50 mg/kg AdipoRon能夠激活AMPK受體,從而發(fā)揮其治療作用[7]。本課題組前期實驗探索表明,更低劑量的AdipoRon能增加細胞的耗糖量[13],故設計低劑量20 mg/kg和高劑量50 mg/kg藥物組,選取高糖高脂飼料喂養(yǎng)并注射鏈脲佐菌素(STZ)誘導的2型糖尿病小鼠模型進行動物水平研究。此實驗通過建立2型糖尿病小鼠模型,檢測口服AdipoRon(50 mg/kg、20 mg/kg)對2型糖尿病小鼠胰腺和脾臟組織中INSR、IRS-1和TNF-α蛋白質含量,小鼠脾臟系數,胰腺組織中p-IRS-1蛋白和insulin mRNA表達水平的影響,旨在探討AdipoRon對糖尿病小鼠脾臟和胰腺組織的保護作用及機制。

    脾臟是機體的最重要的免疫器官,2型糖尿病會影響機體正常的免疫功能。而胰腺是機體負責消化液分泌和胰島素分泌的重要器官。在本實驗中,高糖高脂飼料喂養(yǎng)1個月加小劑量STZ(40 mg/kg)腹腔注射建立的糖尿病小鼠模型,斷尾取血,空腹血糖均大于11.6 mmol/L,符合2型糖尿病的發(fā)病特點。形態(tài)學觀察可見正常組小鼠胰腺組織細胞排列緊密、飽滿、胰島體積大;DM組小鼠胰腺組織細胞排列較為疏散、胰島體積較??;口服AdipoRon組小鼠胰腺組織細胞基本緊密、飽滿、胰島體積略小,表明成功構建2型糖尿病小鼠模型。灌胃AdipoRon后發(fā)現:口服AdipoRon組小鼠胰腺和脾臟TNF-α含量明顯下降,脾臟系數升高。結果提示:AdipoRon可能通過下調胰腺和脾臟TNF-α的表達,保護脾臟來調節(jié)機體自身免疫功能,進而抵御氧化應激對胰島β細胞的損傷。與DM組比較,給予高劑量AdipoRon組小鼠胰腺和脾臟INSR和IRS-1水平均升高,胰腺p-IRS-1蛋白質水平和insulin mRNA表達均升高,均具有統計學意義(P<0.05)。結果提示:(1)AdipoRon可通過上調INSR和IRS-1的蛋白質表達水平,緩解糖尿病小鼠胰島素信號轉導障礙;(2)AdipoRon可通過上調胰腺p-IRS-1蛋白質水平和insulin mRNA的表達,對維持糖尿病小鼠胰島β細胞正常功能有一定作用??诜嗀dipoRon通過下調糖尿病小鼠胰腺和脾臟TNF-α,上調INSR和IRS-1的蛋白質表達水平以及胰腺p-IRS-1蛋白,insulin mRNA的表達,對糖尿病小鼠脾臟和胰腺組織有一定的保護作用。

    綜上所述,本研究通過構建2型糖尿病小鼠模型,探討胰腺及脾臟相關指標變化,證實AdipoRon對糖尿病小鼠胰腺和脾臟組織有一定的保護作用。

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