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    布拉酵母高密度發(fā)酵培養(yǎng)基及發(fā)酵工藝優(yōu)化

    2019-05-21 11:58:56劉開放席志文黃林娜惠豐立
    食品科學(xué) 2019年8期
    關(guān)鍵詞:布拉菌體氨氮

    劉開放,席志文,黃林娜,惠豐立*

    (南陽師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,河南 南陽 473061)

    布拉酵母(Saccharomyces boulardii)屬于釀酒酵母亞種[1],具有降解毒素、調(diào)節(jié)腸道菌群和增強(qiáng)消化道免疫等功能,已被臨床用于治療腹瀉等疾病[2-4]。布拉酵母在動物養(yǎng)殖中也表現(xiàn)出良好效果,作為飼料添加劑在很多國家均通過了相關(guān)認(rèn)證[6-8],在畜牧業(yè)中應(yīng)用前景廣闊。但布拉酵母高密度培養(yǎng)產(chǎn)量低、價格昂貴,市場上含有1.3×109CFU的布拉酵母菌粉售價約為40~45 元,這也限制布拉酵母推廣應(yīng)用。因此優(yōu)化布拉酵母高密度發(fā)酵培養(yǎng)基及發(fā)酵工藝,對促進(jìn)布拉酵母的推廣應(yīng)用具有重要意義。

    高密度培養(yǎng)核心在于為菌體提供合適的營養(yǎng)成分和生長條件。目前針對布拉酵母及釀酒酵母屬的培養(yǎng)基優(yōu)化主要采用單因素、正交設(shè)計和響應(yīng)面優(yōu)化法(response surface methodology,RSM)等方法[9-12]。但酵母菌在發(fā)酵過程中需要多種營養(yǎng)成分,各成分間的相互作用復(fù)雜,具有高度的非線性,傳統(tǒng)優(yōu)化方法在處理非線性問題時具有一定局限性。而人工神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)(artificial neural network,ANN)能夠反映復(fù)雜的非線性關(guān)系,表現(xiàn)出很強(qiáng)的非線性映射能力,適用于非線性問題的建模、估計和預(yù)測[13-18]。遺傳算法(genetic algorithm,GA)具有全局尋優(yōu)能力,可對模型進(jìn)行全局性的訓(xùn)練和優(yōu)化,獲得最優(yōu)方案[19-22]。本研究通過ANN與GA相結(jié)合,優(yōu)化獲得最優(yōu)培養(yǎng)基。在此基礎(chǔ)上,對影響布拉酵母菌生長的多種因素進(jìn)行優(yōu)化,建立適宜的高密度培養(yǎng)條件,為布拉酵母的推廣應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株

    布拉酵母菌(Saccharomyces boulardii)為實(shí)驗(yàn)室保存菌種。

    1.1.2 培養(yǎng)基

    斜面培養(yǎng)基:葡萄糖20 g/L、酵母粉10 g/L、蛋白胨20 g/L、瓊脂20 g/L、自然pH值。

    種子培養(yǎng)基:葡萄糖20 g/L、酵母粉10 g/L、蛋白胨20 g/L、自然pH值。

    初始發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖40 g/L、硝酸鉀14 g/L、蛋白胨45 g/L、玉米漿15 g/L、酵母營養(yǎng)鹽3 g/L、磷酸二氫鉀0.6 g/L、硫酸鎂0.8 g/L、自然pH值。

    1.2 儀器與設(shè)備

    ZHWY-200B型全溫?fù)u床 上海智城分析儀器制造有限公司;CT14RD11臺式離心機(jī) 上海天美生化儀器設(shè)備有限公司;FR124CN型分析天平 奧豪斯儀器有限公司;SGD-IV型還原糖測定儀 山東省科學(xué)院生物研究所;GS-F2001-MM 1 L四聯(lián)體玻璃發(fā)酵罐、50 L發(fā)酵罐上海顧信生物科技有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 菌株培養(yǎng)

    搖瓶培養(yǎng):經(jīng)斜面培養(yǎng)基活化后,取一環(huán)轉(zhuǎn)接至種子培養(yǎng)基中,30 ℃、220 r/min培養(yǎng)12 h后獲得種子液。以8%接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基中,自然pH值,30 ℃、220 r/min培養(yǎng)24 h。

    發(fā)酵罐培養(yǎng):初始裝液量為60%,流加1 mol/L的氫氧化鈉和鹽酸溶液維持pH值,接種量、溫度、pH值、溶氧水平等條件根據(jù)實(shí)驗(yàn)情況決定。

    1.3.2 指標(biāo)測定

    菌體布拉酵母產(chǎn)量的測定:取一定量將發(fā)酵液于8 000 r/min離心5 min去上清液,用生理鹽水洗滌菌體2 次,于105 ℃烘干至恒質(zhì)量后稱質(zhì)量。

    葡萄糖質(zhì)量濃度利用全自動還原糖測定儀測定;氨氮質(zhì)量濃度采用甲醛法測定[23]。1.3.3 發(fā)酵培養(yǎng)基的確定

    1.3.3.1 顯著因素篩選及中心組合設(shè)計(central composite design,CCD)試驗(yàn)

    在前期實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,篩選得到葡萄糖(A)、硝酸鉀(B)、蛋白胨(C)、玉米漿(D)、酵母營養(yǎng)鹽(E)、磷酸二氫鉀(F)、硫酸鎂(G)7 種培養(yǎng)基組分,借助Minitab16軟件采用N為12的Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計篩選顯著因素[24-26]。CCD與Box-Behnken試驗(yàn)相比,對各因素的取值范圍更廣,為提高優(yōu)化精確度,借助Design-Expert 8.0對顯著因素進(jìn)行CCD試驗(yàn)。

    1.3.3.2 RSM模型的建立

    借助Design-Expert 8.0.6軟件,對相應(yīng)數(shù)據(jù)進(jìn)行RSM分析,并模擬出關(guān)于布拉酵母產(chǎn)量和培養(yǎng)基組分關(guān)系的回歸方程模型。此外,使用方差(R2)、均方根誤差(root mean squared error,RMSE)和預(yù)測標(biāo)準(zhǔn)誤差(standard error of prediction,SEP)對該模型的擬合精度和預(yù)測精度進(jìn)行評估[27-28],其計算見式(1)~(3):

    式中:Yi,e為實(shí)驗(yàn)值;Yi,p為模型預(yù)測值;n為實(shí)驗(yàn)組數(shù);為實(shí)驗(yàn)平均值。

    1.3.3.3 ANN模型的建立

    通過MATLAB 7.8軟件將顯著因素質(zhì)量濃度作為ANN的輸入值、菌體布拉酵母產(chǎn)量為輸出值,運(yùn)用反向傳播方法建立3 層ANN模型。tansig函數(shù)和purelin函數(shù)分別作為隱含層傳遞函數(shù)和輸出層傳遞函數(shù),訓(xùn)練函數(shù)為trainlm函數(shù),并對模型的擬合精度和預(yù)測精度進(jìn)行評估。

    1.3.3.4 GA尋優(yōu)獲得最優(yōu)配方

    將訓(xùn)練完畢的較優(yōu)模型作為GA的擬合函數(shù),通過MATLAB 7.8軟件中GA工具箱搜尋輸入及輸出變量的最優(yōu)解[28]。具體過程包括:采用二進(jìn)制編碼將各變量的參數(shù)集進(jìn)行編碼;確定群規(guī)模大小,選擇雜交、變異方法和交叉、變異的概率等參數(shù),隨機(jī)產(chǎn)生初始種群;適應(yīng)度評價;判斷是否滿足終止條件,如不滿足則進(jìn)行循環(huán),直到滿足條件;輸出GA最優(yōu)解。

    1.3.4 發(fā)酵工藝優(yōu)化和放大培養(yǎng)

    以布拉酵母菌體產(chǎn)量為考察對象,利用1 L四聯(lián)體發(fā)酵罐對溫度、接種量、pH值、溶氧等發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,繪制其生長曲線。在此基礎(chǔ)上進(jìn)行流加培養(yǎng),控制發(fā)酵過程中的糖含量和氨氮含量,直至發(fā)酵結(jié)束。在前期高密度發(fā)酵培養(yǎng)基和發(fā)酵工藝優(yōu)化的基礎(chǔ)上,利用50 L發(fā)酵罐放大培養(yǎng),并對發(fā)酵過程中菌體布拉酵母產(chǎn)量、葡萄糖和氨氮含量變化進(jìn)行監(jiān)控。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    每組實(shí)驗(yàn)均進(jìn)行3 次平行測定,用借助Minitab 16和Design-Expert 8.0對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析。P<0.05,表明具有顯著性。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 培養(yǎng)基優(yōu)化結(jié)果及分析

    2.1.1 Plackett-Burman試驗(yàn)結(jié)果

    對發(fā)酵基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的7 種成分葡萄糖、硝酸鉀、蛋白胨、玉米漿、酵母營養(yǎng)鹽、磷酸二氫鉀、硫酸鎂質(zhì)量濃度進(jìn)行顯著因素篩選,結(jié)果見表1,各因素分析見表2。

    表 1 Plackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計與結(jié)果Table 1 Plackett-Burman design with experimental results g/L

    表 2 各因素影響的主效應(yīng)分析Table 2 Analysis of main effects of medium components

    由表2可知,培養(yǎng)基各組分對布拉酵母產(chǎn)量影響顯著性次序?yàn)椋浩咸烟牵镜鞍纂耍居衩诐{>硝酸鉀>酵母營養(yǎng)鹽>硫酸鎂>磷酸二氫鉀。P<0.05,在95%的置信區(qū)間內(nèi)對發(fā)酵模型影響顯著,其中葡萄糖、蛋白胨和玉米漿的P值小于0.05,其余因素的P值大于0.05?;貧w方程為:Y=5.182 2+0.727 8A+0.218 9B+0.515 5C+0.411 1D-0.130 0E+0.007 8F+0.102 3G。模型P值為0.006,R2=97.2%,表明擬合程度較好,因此確定葡萄糖、蛋白胨和玉米漿為顯著因素并進(jìn)行CCD試驗(yàn)。

    2.1.2 RSM模型建立及分析

    借助Design-Expert 8.0.6軟件,對表3數(shù)據(jù)進(jìn)行RSM分析,并獲得模擬回歸方程,結(jié)果見表4。

    表 3 CCD試驗(yàn)設(shè)計與結(jié)果Table 3 Central composite design with experimental and predicted results g/L

    該模型的回歸方程Y1=7.53-0.59A+0.058C+0.76D-0.19AC+0.53AD-0.62CD-0.53A2-0.29C2-0.93D2。從表4可以看出,P<0.05,說明該項在95%的置信區(qū)間內(nèi)顯著,失擬項P值小于0.000 1,說明該模型對布拉酵母發(fā)酵過程的模擬能力較差,不能準(zhǔn)確反映布拉酵母產(chǎn)量預(yù)測值與試驗(yàn)值之間的關(guān)系。

    表 4 RSM方差分析Table 4 Analysis of variance of response surface quadratic regression model

    2.1.3 ANN模型及分析

    以CCD數(shù)據(jù)作為樣本,使用trainlm算法對神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)進(jìn)行訓(xùn)練。采用反向傳播方法建立ANN模型。為防止過度擬合,在保證訓(xùn)練精度的情況下,盡量減少中間隱含層數(shù)量,訓(xùn)練后比較發(fā)現(xiàn),當(dāng)隱含層神經(jīng)元為6時,能對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確擬合。所以本實(shí)驗(yàn)選擇拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)為3-6-1的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)。由圖1可以看出,經(jīng)過200 次迭代后網(wǎng)絡(luò)收斂精度達(dá)到10-2,樣本訓(xùn)練能較快達(dá)到收斂。

    圖 1 BP神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)訓(xùn)練過程Fig. 1 Training course of BP neural network

    2.1.4 RSM模型和ANN模型的對比

    圖 2 ANN和RSM模型預(yù)測產(chǎn)量與實(shí)驗(yàn)值對比Fig. 2 ANN and RSM prediction versus experimental values

    由圖2可以看出,ANN模型的預(yù)測值與實(shí)驗(yàn)值的擬合程度較好,RSM模型的預(yù)測值則更多地分散于實(shí)驗(yàn)值附近。為進(jìn)一步比較建立RSM模型和ANN模型的擬合能力、預(yù)測能力,分別計算2 個模型的R2、RMSE和SEP。根據(jù)表3計算得出,RSM模型R2=0.89,RMSE=0.46 g/L,SEP=7.26%,ANN模型R2=0.99,RMSE=0.03 g/L,SEP=0.55%。ANN模型擁有更大R2和更小的RMSE、SEP,模型表現(xiàn)出較好的擬合能力以及預(yù)測能力。可能原因是RSM通過二次多項式建立模型,擬合能力不足,不能較好地反映培養(yǎng)基各組分間的非線性關(guān)系。而ANN模型是根據(jù)現(xiàn)有的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行迭代計算,不像RSM模型需要預(yù)先給定函數(shù),所以處理非線性問題的能力更強(qiáng)。

    2.1.5 GA優(yōu)化

    GA可直接對結(jié)構(gòu)對象進(jìn)行相關(guān)操作,不存在求導(dǎo)和函數(shù)連續(xù)性的限定,具有全局尋優(yōu)的優(yōu)勢。綜合考慮精度、收斂速度以及計算規(guī)模等條件,將每代染色體種群設(shè)為30,在求出所有染色體適應(yīng)度后,通過輪盤賭選擇法對種群進(jìn)行選擇,最大迭代次數(shù)為500,采用單點(diǎn)交叉和單點(diǎn)變異,交叉概率為0.5,變異概率為0.08。GA尋優(yōu)過程見圖3。

    圖 3 GA優(yōu)化過程中最佳適應(yīng)值和平均適應(yīng)值的變化過程Fig. 3 Evolution of the best and mean fitness in GA

    經(jīng)過63 次GA優(yōu)化計算后,GA優(yōu)化得到的布拉酵母產(chǎn)量最大值為8.28 g/L,并獲得3 種成分最佳組成:葡萄糖40.52 g/L、蛋白胨36.8 g/L、玉米漿17.32 g/L。最終得到最優(yōu)培養(yǎng)基配方:葡萄糖40.52 g/L、蛋白胨36.8 g/L、玉米漿17.32 g/L、硝酸鉀14 g/L、酵母營養(yǎng)鹽1.5 g/L、磷酸二氫鉀0.6 g/L、硫酸鎂0.8 g/L。在該培養(yǎng)條件下,經(jīng)過3 次重復(fù)實(shí)驗(yàn)得到布拉酵母平均產(chǎn)量為8.21 g/L,說明ANN-GA預(yù)測具有較好的預(yù)測能力。

    2.2 發(fā)酵罐培養(yǎng)條件的優(yōu)化結(jié)果

    在確定的最優(yōu)搖瓶培養(yǎng)條件基礎(chǔ)上,利用1 L四聯(lián)體發(fā)酵罐對發(fā)酵過程中的溫度、pH值、接種量、溶氧水平等因素進(jìn)行優(yōu)化。

    由圖4A可知,布拉酵母在發(fā)酵第21小時進(jìn)入穩(wěn)定期。當(dāng)培養(yǎng)溫度達(dá)到30 ℃時,布拉酵母產(chǎn)量達(dá)到最大值,超過30 ℃則有下降的趨勢,可能原因是在30 ℃時布拉酵母內(nèi)環(huán)境較為穩(wěn)定,新陳代謝所需酶的活性達(dá)到較高水平,因此確定30 ℃為布拉酵母最適培養(yǎng)溫度。由圖4B可知,當(dāng)接種量為6%時布拉酵母生長較為緩慢,當(dāng)接種量為10%時布拉酵母產(chǎn)量達(dá)到最大,當(dāng)繼續(xù)增加接種量,布拉酵母產(chǎn)量則有下降趨勢。因此確定接種量為10%,后續(xù)優(yōu)化在該基礎(chǔ)上進(jìn)行。

    圖 5 pH值(A)及溶氧量(B)對布拉酵母產(chǎn)量的影響Fig. 5 Effect of pH (A) and dissolved oxygen level (B) on dry biomass yield of S. boulardii

    由圖5A可知,當(dāng)發(fā)酵過程中pH值為4.0~5.0時,布拉酵母產(chǎn)量呈現(xiàn)出上升的趨勢,pH 5.0時達(dá)到16.63 g/L;當(dāng)培養(yǎng)基初始pH 5.5時,布拉酵母產(chǎn)量降至15.21 g/L,可能原因是在pH 5.0條件下,培養(yǎng)基中各成分的溶解程度較好,細(xì)胞能夠很好地利用并進(jìn)行生長代謝,過高或者過低的pH值環(huán)境都不利于該酵母菌的生長,因此確定pH 5.0時為最適值。在布拉酵母發(fā)酵過程中,需氧量受菌體濃度、培養(yǎng)基各種成分濃度等多種因素的影響。通過調(diào)節(jié)空氣流量、罐壓和攪拌速率分別控制溶氧量為30%、35%、40%、45%,由圖5B看出,溶氧量控制在40%(空氣流量控制在0.6~1 L/(L·min),攪拌速率400~600 r/min,罐壓0.05~0.07 MPa)的情況下,發(fā)酵水平較為理想。綜上可得,布拉酵母最佳培養(yǎng)條件為溫度30 ℃、接種量10%、恒定pH 5.0、溶氧量40%,在該條件下菌體產(chǎn)量達(dá)到19.43 g/L,后續(xù)優(yōu)化在該基礎(chǔ)上進(jìn)行。

    2.3 流加培養(yǎng)方式對布拉酵母發(fā)酵的影響

    碳源是異養(yǎng)型微生物所需要的重要能量來源,碳源過低會導(dǎo)致營養(yǎng)不足,菌體無法正常生長代謝,而過高的碳源又會影響細(xì)胞滲透壓[29]。利用1 L發(fā)酵罐研究發(fā)酵過程中碳源質(zhì)量濃度對布拉酵母生長的影響,由圖6A可知,發(fā)酵至第8小時葡萄糖基本消耗完畢,通過流加葡萄糖溶液,控制發(fā)酵液中糖質(zhì)量濃度為1、3、5、7 g/L,菌體產(chǎn)量較未流加時分別提高55.94%、89.50%、80.65%和59.55%。當(dāng)葡萄糖質(zhì)量濃度增大到5 g/L時,布拉酵母產(chǎn)量呈下降趨勢,可能是由于培養(yǎng)基中糖質(zhì)量濃度過高對細(xì)胞造成滲透壓脅迫。因此確定3 g/L為最適殘?zhí)琴|(zhì)量濃度。

    圖 6 葡萄糖質(zhì)量濃度(A)及氨氮質(zhì)量濃度(B)對布拉酵母產(chǎn)量的影響Fig. 6 Effect of glucose (A) and ammoniacal nitrogen concentration (B)on dry biomass yield of S. boulardii

    前期Plackett-Burman試驗(yàn)表明蛋白胨對布拉酵母發(fā)酵培養(yǎng)影響顯著,因此選擇蛋白胨為流加氮源。由圖6B可知,當(dāng)控制發(fā)酵中后期氨氮質(zhì)量濃度為0.06 g/L時,布拉酵母產(chǎn)量達(dá)到最大值(42.36 g/L),較未流加蛋白胨時提高15.05%,因此確定最適氨氮質(zhì)量濃度為0.06 g/L。

    2.4 50 L發(fā)酵罐放大培養(yǎng)

    由圖7可知,布拉酵母在0~2 h生長緩慢,菌體產(chǎn)量較低,葡萄糖質(zhì)量濃度由40.52 g/L下降到35.32 g/L。從第2小時開始菌體布拉酵母產(chǎn)量迅速提高,布拉酵母對葡萄糖和氨氮的消耗大幅增加。第8小時時發(fā)酵液中葡萄糖基本消耗完畢,通過流加葡萄糖溶液維持殘?zhí)橇繛? g/L。發(fā)酵至12 h菌體布拉酵母產(chǎn)量為36.25 g/L,此時通過流加蛋白胨溶液維持氨氮質(zhì)量濃度為0.06 g/L,直到第28小時發(fā)酵結(jié)束,菌體布拉酵母產(chǎn)量達(dá)到51.21 g/L。

    圖 7 布拉酵母補(bǔ)料培養(yǎng)生長曲線Fig. 7 Growth curve of S. boulardii in fed-batch fermentation

    3 討 論

    本實(shí)驗(yàn)對顯著因素進(jìn)行篩選,并采用CCD,通過構(gòu)建ANN模型和RSM模型預(yù)測培養(yǎng)基的組成。結(jié)果表明,在處理該非線性問題時,ANN模型比RSM模型有著更好的擬合和預(yù)測能力。陸震鳴等[13]分別采用ANN模型和RSM模型對樟芝發(fā)酵建立模型,結(jié)果證明,ANN模型的擬合性和預(yù)測能力更強(qiáng),與本實(shí)驗(yàn)所得結(jié)論一致。

    培養(yǎng)基組成和質(zhì)量濃度是影響布拉酵母生長的重要因素。本研究在ANN模型的基礎(chǔ)上,通過GA尋優(yōu)獲得最佳培養(yǎng)基配方,搖瓶培養(yǎng)后菌體產(chǎn)量可達(dá)8.21 g/L。雷張?zhí)賉9]利用RSM法優(yōu)化培養(yǎng)基,布拉酵母菌體布拉酵母產(chǎn)量為6.56 g/L。杜曉蒙等[10]通過正交法優(yōu)化布拉酵母培養(yǎng)基,菌體布拉酵母產(chǎn)量為6.5 g/L,為本實(shí)驗(yàn)結(jié)果的79.9%。本研究將有機(jī)氮源和無機(jī)氮源相結(jié)合,能滿足菌體的不同生長階段需求。酵母營養(yǎng)鹽中含有多種離子,玉米漿含有多種生長因子和前體物質(zhì),能夠?yàn)椴祭湍妇纳L代謝提供豐富的營養(yǎng)[31]。此外在菌種代謝過程中培養(yǎng)基成分之間作用復(fù)雜,具有高度的非線性,而傳統(tǒng)優(yōu)化方法難以解決該問題,本實(shí)驗(yàn)利用ANN模型與GA優(yōu)化相結(jié)合,提高了優(yōu)化精度。

    在布拉酵母的高密度發(fā)酵工藝基礎(chǔ)上,流加葡萄糖和蛋白胨控制適宜的葡萄糖和氨氮濃度,培養(yǎng)28 h后布拉酵母產(chǎn)量達(dá)到51.21 g/L。雷張?zhí)賉9]僅流加單一葡萄糖溶液培養(yǎng)至42 h,菌體布拉酵母產(chǎn)量僅為12.76 g/L,為本實(shí)驗(yàn)結(jié)果的75%。由此可見在高密度發(fā)酵過程僅流加碳源難以滿足菌體的營養(yǎng)。氮源是構(gòu)成蛋白質(zhì)、核酸及其他氮素化合物的重要物質(zhì),同時控制適當(dāng)?shù)奶荚春桶钡磕苡行嵘祭湍府a(chǎn)量。

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