淀粉對微生物的結(jié)合作用及應(yīng)用研究進展

趙國華 張?zhí)N玉 雷 琳 葉發(fā)銀*

（1 西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院 重慶400715 2 重慶市甘薯工程技術(shù)研究中心 重慶400715）

微生物對食品組分或基質(zhì)表面的粘附現(xiàn)象在食品工業(yè)及營養(yǎng)健康領(lǐng)域十分常見[1-2]。食源性致病微生物在食品表面粘附增殖是導(dǎo)致食品腐敗，造成安全問題的首要條件[3]。解決這一問題的有效措施是減少或消除微生物粘附，而研究發(fā)現(xiàn)一些食品成分正好具備抗微生物粘附的活性[4]。對于食品及人體腸道中有益微生物而言，其粘附現(xiàn)象是有益的。乳酸菌在乳品基質(zhì)中并非均勻分布，其空間分布受其與乳品中特定組分相互作用強度的影響。食品級乳酸菌鼠李糖乳桿菌（Lactobacillus rhamnosus）GG 能與β-乳球蛋白特異性結(jié)合，其結(jié)合強度受細胞表面組成成分[5]及環(huán)境pH[6]等因素的影響。在人體腸道黏膜，為更好發(fā)揮益生菌的益生作用，其粘附及定植一直以來都是研究的熱點和難點[7]。采用生物活性成分或其它食品組分減弱或抑制致病微生物在胃、 腸道上皮上粘附定植是防治感染的有效措施[8]。研究表明，微生物能與多糖材料發(fā)生廣泛的相互作用[9]。本文就微生物與淀粉相互作用的規(guī)律和機制進行綜述，歸納二者結(jié)合作用在淀粉分離純化、病原菌清除、益生菌包埋與保護、 淀粉基益生元及合生元加工制造等方面的應(yīng)用，旨在為后續(xù)研究提供參考。

1 微生物在淀粉顆粒上的粘附現(xiàn)象

我國關(guān)于微生物粘附淀粉的報道最早見于酸漿法提取淀粉[13]。在傳統(tǒng)粉絲加工工藝中，人們發(fā)現(xiàn)酸漿（淀粉乳自然發(fā)酵產(chǎn)生的酸性漿液，含有活的微生物）具有凝集淀粉顆粒的作用。1974年，北京市粉絲廠和北京大學(xué)生物系研究指出酸漿中的乳酸乳球菌（Streptococcus lactis）是對加速淀粉沉降起主要作用的因素[13]。酸漿微生物不僅對豆類淀粉具有絮凝作用，對薯類淀粉（甘薯、木薯）、糧谷類淀粉等也有粘附作用。張莉力等[14]從自然發(fā)酵甘薯酸漿中篩選到對甘薯淀粉具有高絮凝活性的乳酸菌L1，經(jīng)鑒定該菌為副干酪乳桿菌副干酪亞種（Lactobacillus paracasei subsp.paracasei）。該菌為革蘭氏陽性，菌落表面光滑，顏色為乳白色。Ampe 等[15]在發(fā)酵木薯淀粉中發(fā)現(xiàn)了對木薯淀粉具有粘附能力的乳酸細菌（圖1a）。Selem 等[16]以大米淀粉為原料，通過普魯蘭酶脫枝、熱壓及反復(fù)凍融處理制備抗性大米淀粉，并從酸奶、香蕉及人乳中分離得到對抗性大米淀粉具有粘附能力的39株乳酸菌，其中有2 株表現(xiàn)出較強的粘附能力（粘附率分別為79%和77%），另有6 株具有中等強度的粘附能力（粘附率40%～70%）。Crittenden 等[17]考察了19 株雙歧桿菌對馬鈴薯、玉米、燕麥和大麥淀粉顆粒的粘附作用，結(jié)果表明：粘附具有一定的種屬特異性，其中青春雙岐桿菌（Bifidobacterium.adolescentis）VTT E-001561在玉米淀粉Hylon VII上粘附最強。兩株雙歧桿菌在高直鏈玉米淀粉顆粒上的粘附分別如圖1b和c所示。圖1d展示了植物乳桿菌在多孔玉米淀粉上的粘附。目前發(fā)現(xiàn)的微生物-淀粉相互作用情況匯總于表1。

圖1 微生物粘附淀粉的顯微鏡照片F(xiàn)ig.1 Micrographs of microorganisms adhered to starch samples

表1 已報道的具有粘附淀粉能力的微生物Table 1 Microorganisms showing adhesion capability towards starch granules

（續(xù)表1）

2 影響微生物與淀粉結(jié)合的因素

2.1 微生物生理、生化特性的影響

微生物生理、 生化特征是影響其與淀粉結(jié)合的重要因素。從表1可知，目前發(fā)現(xiàn)能與淀粉顆粒結(jié)合的主要為乳酸菌和雙歧桿菌，均屬于革蘭氏陽性菌。研究表明，能否產(chǎn)生淀粉酶，雖然并非為與淀粉顆粒結(jié)合所必需，但結(jié)合能力強的細菌都具有產(chǎn)淀粉酶的能力[17，23]。吳企禾[24]研究認為，在甘薯酸漿自然發(fā)酵過程中，細菌種類呈動態(tài)變化，在發(fā)酵中期明串珠菌屬占優(yōu)勢且為絮凝作用菌。對純培養(yǎng)微生物而言，微生物在其生長的各階段粘附淀粉顆粒的能力變化不顯著[17]。

2.2 淀粉顆粒特性的影響

淀粉顆粒的來源、化學(xué)組成、顆粒大小及表面特性是影響微生物結(jié)合的重要因素。對于霍亂弧菌（Vibrio cholerae）O1 而言，大米淀粉、高直鏈玉米淀粉、 蠟質(zhì)玉米淀粉和普通玉米淀粉顆粒對其的結(jié)合量無顯著差異，并顯著高于小麥淀粉和可溶性馬鈴薯淀粉，其結(jié)合量主要決定于淀粉的來源和化學(xué)組成，這是因為這些淀粉樣品在粒度和比表面積等方面不存在重大差異[23]。另有研究[17]指出，對于雙歧桿菌而言，淀粉顆粒比表面積大小與其結(jié)合量呈正相關(guān)（r=0.865），玉米淀粉Hylon VII因比表面積大而結(jié)合能力強，對假長雙歧桿菌（B.pseudolongum）ATCC 25526 和青春雙岐桿菌VTT E-001561 的結(jié)合量在108細胞/g 水平，相比之下，馬鈴薯淀粉、 大麥及燕麥淀粉顆粒因比表面積較小，其結(jié)合量相應(yīng)降低；該研究還發(fā)現(xiàn)Hylon VII經(jīng)胃蛋白酶處理后不影響粘附，由此排除了淀粉顆粒表面結(jié)合區(qū)域的蛋白質(zhì)屬性[17]。

2.3 外界環(huán)境條件的影響

2.3.1 溫度 早期解析酸漿沉淀淀粉原理的文獻[13]指出，在5～45 ℃范圍，隨著溫度升高，活菌絮凝淀粉的速率逐漸增大，然而溫度達到一定值后繼續(xù)升高溫度會導(dǎo)致菌體死亡時，絮凝淀粉的活性喪失。李新華等[25]研究發(fā)現(xiàn)，在30～90 ℃范圍，副干酪乳桿菌對甘薯淀粉的絮凝率隨溫度的升高快速降低，50 ℃時絮凝活性幾乎消失。Crittenden等[17]的研究則表明，青春雙岐桿菌VTT E-001561經(jīng)熱致死（65 ℃、30 min）處理后，其對Hylon VII的粘附量與活菌相比無顯著差異。

2.3.2 pH 值 pH 值是影響微生物對淀粉絮凝活性的重要因素。北京粉絲廠及北大生物系酸漿研究小組[13]研究指出，pH 6.0～6.2 范圍最適合，當pH 值小于5.5 或大于8.5 則喪失絮凝活性。Crittenden 等[17]研究發(fā)現(xiàn)不同雙歧桿菌對淀粉的粘附能力表現(xiàn)出不同的pH 敏感性，在pH 2～8 范圍，青春雙岐桿菌VTT E-001561、 假長雙歧桿菌ATCC 25526 及短雙歧桿菌CIP 64.48 在Hylon VII 的粘附能力隨pH 值增加而增加，而乳雙歧桿菌DSM 10140 則隨之減小。

2.3.3 離子種類及離子強度 溶液中的離子對酸漿中微生物發(fā)揮絮凝活性有一定作用。對于乳酸鏈球菌，一定濃度的堿土金屬離子（Ca2+、Mg2+）對絮凝活性是必需的，而堿金屬離子（K+、Na+）及重金屬離子則無作用[26]。研究發(fā)現(xiàn)，添加0.5 mol/L NaCl 對青春雙岐桿菌VTT E-001561 在Hylon VII 的粘附能力無影響[17]；添加0.111 mol/L NaCl對霍亂弧菌O1 在普通玉米淀粉顆粒上的粘附無影響[23]。

2.3.4 變性劑及其它化學(xué)試劑 O′riordan 等[11]研究發(fā)現(xiàn)，雙歧桿菌PL2 經(jīng)曲拉通X-100（1%，體積分數(shù)）或高碘酸鈉（0.05 mol/L）溶液處理后，對高直鏈玉米淀粉的粘附能力未受到影響；鄭瑋等[27]研究表明高碘酸鈉（0.3 mol/L）或三氯乙酸（3%）處理能夠降低兩株淀粉凝集菌對綠豆淀粉的絮凝活性。Crittenden 等[17]研究表明添加吐溫80（3.0 g/L）不影響青春雙岐桿菌VTT E-001561 在Hylon VII 的粘附。有趣的是，淀粉水解產(chǎn)物（葡萄糖、麥芽糖、麥芽糊精等）能顯著抑制雙歧桿菌在Hylon VII 的粘附，且抑制程度隨著水解產(chǎn)物聚合度的增加而增加，而其它含葡萄糖結(jié)構(gòu)單元又非淀粉水解物的其它糖類（如纖維二糖、海藻糖、乳糖）卻無抑制效應(yīng)[17]。Gancz 等[23]同樣觀察到糖類物質(zhì)能影響霍亂弧菌O1 在玉米淀粉顆粒上的粘附，其影響因糖的種類而異。只有被霍亂弧菌O1 發(fā)酵利用的糖類物質(zhì)才能產(chǎn)生明顯抑制效應(yīng)，而不被利用的則無此效應(yīng)。

2.3.5 外源酶 研究表明，添加蛋白酶制劑能大幅降低甚至消除微生物對淀粉顆粒的粘附能力。副干酪乳桿菌在經(jīng)胰蛋白酶處理后，對甘薯漿液中淀粉絮凝的能力迅速降低[25]。雙歧桿菌活菌經(jīng)蛋白酶K 或胰蛋白酶處理，其粘附淀粉顆粒的能力大幅降低甚至消失[17]。

3 微生物對淀粉顆粒的結(jié)合機制

人們對微生物粘附淀粉顆粒相關(guān)機制的揭示，是從闡明多形擬桿菌 （Bacteroides thetaiotaomicron）如何利用淀粉開始的。多形擬桿菌是人類腸道中一類數(shù)量龐大的革蘭氏陰性細菌，具有降解復(fù)雜碳水化合物的能力，其水解利用淀粉的生理、生化機制已基本明晰[28]。Anderson 等[29]研究發(fā)現(xiàn)，多形擬桿菌能以直鏈淀粉或支鏈淀粉為唯一碳源生長，其利用淀粉的物質(zhì)基礎(chǔ)主要包括細胞外膜上的淀粉結(jié)合位點和周質(zhì)空間（也稱壁膜間隙）的淀粉降解酶（而非胞外酶）。另外，還涉及位于細胞質(zhì)的α-葡萄糖苷酶和麥芽糖酶。通過對淀粉進行14C 標記證實了多形擬桿菌能與其結(jié)合。研究指出，這種細胞外膜與淀粉的結(jié)合作用是該菌利用淀粉的第1 步且為利用淀粉的必需步驟（因為該菌的淀粉降解酶無法外分泌），其結(jié)合淀粉位點為淀粉結(jié)合蛋白，原因之一在于結(jié)合的飽和性，原因之二在于經(jīng)蛋白酶K 處理后，結(jié)合能力顯著下降[29]。通過基因敲除手段能使該菌喪失結(jié)合并利用淀粉的能力，進一步證實了發(fā)揮作用的物質(zhì)基礎(chǔ)是蛋白質(zhì)[30]。Tancula 等[31]分離鑒定出3個外膜蛋白質(zhì)（43，65 ku 和115.3 ku）和一個質(zhì)膜蛋白質(zhì)（80 ku），這些蛋白質(zhì)的基因編碼聚集在該菌染色質(zhì)的一段長度8.5 kbp 序列中，其表達受到誘導(dǎo)物麥芽糖的影響。另外，還有兩個不受麥芽糖調(diào)節(jié)的外膜蛋白質(zhì)（32 ku 和50 ku），其基因編碼位于一段長度7 kbp 的DNA 序列。后續(xù)研究解析了該菌與利用淀粉有關(guān)蛋白質(zhì)的基因簇（cluster），由7 個結(jié)構(gòu)基因（susA-G）和1 個調(diào)節(jié)基因（susR）組成，其中淀粉降解酶由susA、susB 和susG 基因編碼，均不具備結(jié)合淀粉的能力；4 種外膜蛋白質(zhì)由susC、susD、susE 和susF 編碼，它們均檢測不出酶活力，而都是與淀粉結(jié)合有關(guān)的蛋白質(zhì)[32]。研究表明，基因susC 編碼相對分子質(zhì)量115.3 ku 的外膜蛋白質(zhì)，它含有一段長度為20～39 個氨基酸殘基的信號肽；該研究確認susC 不具有淀粉酶水解活性，而為該菌利用麥芽糖和淀粉所必需[33]。相對分子質(zhì)量約62.8，42.7 ku 和52.1 ku 的外膜蛋白質(zhì)分別由susD、susE 和susF 編碼，其中蛋白質(zhì)susC 和susD 是主要的淀粉結(jié)合蛋白，不可或缺。雖然susE 和susF 對結(jié)合淀粉的貢獻不及susC 和susD 重要，但是它們可能通過形成表面受體復(fù)合物（surface receptor complex）協(xié)同發(fā)揮作用[34-35]。該研究組的后續(xù)研究確證了表面受體復(fù)合物的存在，在這個復(fù)合物中，其核心是彼此結(jié)合的susC和susD，而susE 和susF 是可有可無的組分[36]。

在酸漿法生產(chǎn)淀粉的研究中，多項研究結(jié)果表明微生物與淀粉顆粒的結(jié)合機制涉及特異性的細胞表面蛋白質(zhì)[24，27，37-39]。O′riordan 等[11]研究指出，分離自人糞便中的雙歧桿菌PL1 和PL2 能粘附于高直鏈玉米淀粉上，其物質(zhì)基礎(chǔ)是牢牢錨定在細胞壁上的蛋白質(zhì)，這類蛋白質(zhì)對蛋白酶敏感，蛋白酶K 處理后該菌粘附淀粉的能力喪失。研究還表明，該菌粘附淀粉的能力雖受麥芽糖或淀粉粒的誘導(dǎo)，但不受葡萄糖誘導(dǎo)，這表明粘附蛋白質(zhì)的表達受調(diào)節(jié)基因的控制。Niderman-Meyer 等[40]研究發(fā)現(xiàn)，革蘭氏陰性菌霍亂弧菌能夠粘附在玉米淀粉顆粒上，其粘附主要是通過菌體表面的外膜聯(lián)淀粉結(jié)合蛋白（outer membrane-associated starchbinding proteins）。

4 相關(guān)應(yīng)用

4.1 酸漿微生物用于淀粉提取

酸漿法是制取粉絲加工用淀粉的傳統(tǒng)方法。破碎甘薯或綠豆?jié){液自然發(fā)酵形成的酸漿傳統(tǒng)上用于淀粉提取，酸漿中具有絮凝淀粉活性的微生物，可特異性結(jié)合到淀粉顆粒表面，造成淀粉絮凝沉降，加速與雜質(zhì)分離。Zhang 等[41]采用16S rDNA技術(shù)從甘薯酸漿中鑒定出86 種細菌、20 種酵母菌和10 種霉菌，其中僅有8 種乳酸桿菌屬的細菌具有絮凝淀粉活性，其中以副干酪乳桿菌副干酪亞種L1 菌株的絮凝活性最高。將該菌加入淀粉漿液后，引起淀粉絮凝（圖2a），該菌以“鎖鏈”狀粘附在相鄰淀粉顆粒表面，從而形成成團的聚集顆粒（圖2b）。魏鳳鳴等[26]報道在制取綠豆淀粉時，酸漿中絮凝活性微生物需達到3.91×106/mL，添加量一般為每百kg 綠豆添加2.0 kg 酸漿。杜連起等[42]報道乳鏈球菌（8.8×107/mL）和酵母菌（1.9×108/mL）混合處理具有協(xié)同作用，可加速甘薯淀粉沉降。汪龍飛[43]研究了海藻酸鈉凝膠包埋乳酸鏈球菌沉淀綠豆淀粉的工藝，研究指出沉淀淀粉的主要方式為微生物從凝膠中滲漏出來與淀粉作用，同時細胞包埋產(chǎn)生的次級代謝物質(zhì)對淀粉的沉淀也發(fā)揮了作用。張明等[44]從酸漿中分離純化得到具有絮凝活性的副干酪乳桿菌L1，結(jié)果表明純培養(yǎng)酸漿制備條件能顯著影響該菌絮凝淀粉的活性[45]。

圖2 甘薯淀粉漿液在添加副干酪乳桿菌副干酪亞種L1 菌懸液產(chǎn)生聚集的光學(xué)顯微鏡及掃描電鏡照片F(xiàn)ig.2 Optical micrograph and SEM image of starch granule aggregation after the addition of L.paracasei subsp.paracasei L1 cultures to sweet potato starch milk

4.2 淀粉基益生菌包埋載體

益生菌是活的微生物制劑，如何將其以活體形態(tài)加工貯藏并遞送到人體腸道相應(yīng)部位是具有挑戰(zhàn)性的技術(shù)難題[46-48]。淀粉是人體腸道有益微生物發(fā)酵的碳水化合物的來源[49]。研究發(fā)現(xiàn)[50]，生產(chǎn)淀粉降解酶來水解淀粉是雙歧桿菌屬（Bifidobacterium spp.）、擬桿菌屬（Bacteroides spp.）、梭桿菌屬 （Fusobacterium spp.）以及真桿菌（Eubacterium）、梭菌（Clostridium）、鏈球菌（Streptococcus）和丙酸桿菌（Propionibacterium）等人體腸道微生物利用淀粉的主要方式，并且雙歧桿菌屬和丁酸梭菌（Clostridium butyricum）能有效利用高直鏈玉米淀粉顆粒，在相應(yīng)培養(yǎng)基中具有較快生長速率。鑒于淀粉對人體有益微生物的粘附和利用特性，其作為益生菌的包埋和保護的載體具有重要開發(fā)價值[17]。目前研究報道的淀粉基益生菌保護劑主要包括原淀粉顆粒、微孔淀粉、微膠囊、可食膜等形態(tài)，這方面的總結(jié)見表2。

表2 淀粉基益生菌保護劑主要類型Table 2 Main types of starch-based probiotic protectants

（續(xù)表2）

4.2.1 原淀粉顆粒 將微生物細胞懸液直接與生淀粉顆粒懸液混合，在室溫或37 ℃條件下完成吸附，過濾掉上清，得到粘附了微生物的淀粉顆粒。研發(fā)發(fā)現(xiàn)，高直鏈玉米淀粉顆粒能顯著提升雙歧桿菌LaftiTM8B 和LaftiTM13B 經(jīng)口進入小鼠腸道后的存活率[10]。

4.2.2 微孔淀粉 微孔淀粉因其多孔道和較大的比表面積，相比于原淀粉顆粒更具優(yōu)勢。Li 等[57]研究了玉米淀粉對植物乳桿菌的包埋，結(jié)果表明，采用原淀粉時，細胞粘附在淀粉顆粒表面，將玉米淀粉適度水解制得微孔淀粉后，細胞進入孔道內(nèi)部，不僅包封率提高，而且細胞對酸、膽汁鹽和熱的耐受性得到增強。Xing 等[58]研究指出，當微孔淀粉質(zhì)量濃度10 g/100 mL 時可獲得最大包封率（61.2%），微孔淀粉濃度還會影響包封后細胞對酸和熱的耐受性。Benavent-Gil 等[12]研究發(fā)現(xiàn)，將大米淀粉通過酶解加工成多孔淀粉，其對益生菌的包封率約增加10%，而玉米淀粉制備多孔淀粉后包封率的變化不大。將多孔淀粉荷載活菌后用糊化淀粉被膜，包封率（達92%～100%）和耐熱性均明顯提升。

4.2.3 微膠囊 微膠囊一般采用噴霧干燥法或乳化-交聯(lián)法制備，其尺寸5～125 μm，將淀粉與活菌充分混合并封閉在微膠囊壁材中。Cruz-Benítez等[59]采用噴霧干燥法制備戊糖乳桿菌的微膠囊，結(jié)果普通木薯淀粉優(yōu)于蠟質(zhì)木薯淀粉（前者直鏈淀粉含量高），而經(jīng)改性的木薯淀粉更適合作為壁材。相對于酸水解和辛烯基琥珀酸酐改性，蠟質(zhì)木薯淀粉經(jīng)酸水解和三聚磷酸鈉反應(yīng)、 兩步改性后作為壁材，制得的微膠囊具有最大包封率（99.22%）。Ashwar 等[60]以大米淀粉為原料自制的RS4 抗性淀粉為材料，與益生菌（干酪乳桿菌、短乳桿菌和植物乳桿菌）的細胞混合制備懸液，采用吐溫80 乳化（1 500 r/min，10 min）制成乳狀液，將乳狀液滴加到CaCl2溶液（0.1 mol/L）中交聯(lián)固化，最后凍干制得微膠囊。荷載微生物在模擬胃、腸液中存活良好【7.29～8.61 lg（CFU/g）】，在4 ℃貯藏2個月活菌量基本不損失。

4.2.4 可食膜 可食膜是以多糖、 蛋白質(zhì)等食品大分子為主要成膜基質(zhì)，添加可食性助劑（交聯(lián)劑或增塑劑），人工制備而成的薄膜結(jié)構(gòu)材料。其成膜方式有干法或濕法兩種?？墒衬ひ话阋园⑼坎?、浸漬或噴灑等形式覆蓋于食品表面，用于保持或改善食品品質(zhì)。最近，可食膜被用于荷載益生菌。Soukoulis 等[61]以大米及玉米淀粉為成膜材料，采用澆筑平板法制備包埋了鼠李糖乳桿菌（Lactobacillus rhamnosus）GG 的可食膜，在常溫下貯藏半衰期為15～24 d，可保持活菌水平≥9 lg（CFU/g）。

4.3 淀粉顆粒作為病原菌吸附材料

Gancz 等[23]研究發(fā)現(xiàn)將生玉米淀粉顆粒添加到治療腹瀉的口服補水液中，生玉米淀粉顆粒具有對病原菌霍亂弧菌極佳的吸附能力，可在2 min 內(nèi)吸附98%的病原菌細胞，其吸附量達到108細胞/g 淀粉顆粒。

4.4 其它應(yīng)用

微生物來源的有些（約占10%）淀粉水解酶除有1 個催化域（catalytic domain）外，一般還有1個或以上的淀粉結(jié)合域 （starch-binding domain，SBD），這些區(qū)域不具備催化活性，而能與生淀粉顆?；虻矸鄯肿酉嘟Y(jié)合，起到加速淀粉水解的作用[62]。有證據(jù)表明SBD 可以保持相對獨立的功能，運用基因工程手段可將其整合到其它蛋白質(zhì)中發(fā)揮作用。根據(jù)這一性質(zhì)，至少產(chǎn)生3 個潛在應(yīng)用，其一，通過遺傳學(xué)手段，將SBD 融合到淀粉合成酶系中，從生物合成途徑調(diào)整淀粉合成方式，從而得到遺傳改性淀粉顆粒[63-64]；其二，將SBD 整合到益生菌外膜蛋白質(zhì)中，由此賦予或提升這些益生菌粘附和利用抗性淀粉的能力[65]；其三，可利用淀粉顆粒作為親和吸附或定向錨定材料，用于分離純化或固定化帶有SBD 標簽的蛋白質(zhì)[66]。例如，將SBD 融合到β-半乳糖苷酶中并在大腸桿菌中表達，在淀粉柱中進行分離純化，其提純效果甚至優(yōu)于傳統(tǒng)的親和色譜[67]。

5 結(jié)語

綜上所述，淀粉對微生物結(jié)合作用的研究近年來取得顯著進展，尤其在酸漿微生物凝集淀粉以及淀粉作為益生菌保護劑或載體方面?zhèn)涫荜P(guān)注?；诋斍把芯楷F(xiàn)狀，淀粉對微生物結(jié)合作用的研究需從以下方面加強：1）酸漿中具有絮凝淀粉活性的微生物的分離鑒定，這為酸漿法制取淀粉從經(jīng)驗走向科學(xué)奠定基礎(chǔ)，同時篩選出優(yōu)勢菌株，探索其與淀粉結(jié)合的機制和其影響淀粉加工特性的有關(guān)規(guī)律，為進一步開展其工業(yè)應(yīng)用鋪平道路。2）人體腸道有益微生物在淀粉顆粒表面粘附、定植以及對淀粉降解代謝的過程機制研究。3）淀粉基益生元（抗性淀粉）理性設(shè)計和制造。4）淀粉基合生元產(chǎn)品開發(fā)。一方面，探究淀粉結(jié)構(gòu)特征對其作為益生菌保護劑或載體的影響機制，設(shè)計出優(yōu)良的淀粉載體；另一方面，提供遺傳學(xué)手段提升益生菌粘附或利用淀粉的能力[68]，為淀粉基合生元產(chǎn)品的研制奠定基礎(chǔ)。