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    Mn2+對DNS法測定右旋糖酐發(fā)酵液中果糖含量的影響

    2019-05-13 08:24:44問清江孫曉宇
    陜西農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年4期
    關(guān)鍵詞:右旋糖酐吸光蒸餾水

    慕 娟,問清江,孫曉宇,丁 浩

    ( 陜西省微生物研究所, 陜西 西安 710043)

    右旋糖酐(Dextran)是一種由若干葡萄糖聚合而成的高分子聚合物,也稱葡聚糖,是一種非常重要的多糖,可用于醫(yī)藥、食品、輕工等多領(lǐng)域,例如血漿代用品,乳化劑和增稠劑,高黏度膠水,炸藥,鉆井添加劑,土壤改良劑等[1~2]。目前右旋糖酐主要是微生物發(fā)酵生產(chǎn),腸膜狀明串珠菌(Leuconstoc mesenteriodes)以蔗糖為原料,產(chǎn)生右旋糖酐蔗糖酶(Dextransucrase, EC2.4.5.1),該酶以蔗糖為底物,切斷D-葡萄糖基與果糖基的糖苷鍵,形成D-葡萄糖基與酶的復(fù)合物,釋放出果糖,最后將葡糖糖基單元主要以α-1,6糖苷鍵連接形成右旋糖酐,產(chǎn)生果糖[3~6]。因此,右旋糖酐發(fā)酵液中的主要代謝產(chǎn)物有右旋糖酐、果糖和右旋糖酐蔗糖酶。在右旋糖酐發(fā)酵檢測中,由于右旋糖酐是高黏度的多糖,必須通過乙醇沉淀,烘干得出其含量,而果糖是一種還原糖,易于檢測,再者右旋糖酐蔗糖酶酶活檢測也是通過酶作用所產(chǎn)生的果糖來衡量的,因此果糖作為右旋糖酐發(fā)酵的主要檢測指標(biāo)。3,5-二硝基水楊酸(DNS)分光光度法測定還原糖,操作簡便快速、試劑消耗少、重現(xiàn)性好、準(zhǔn)確度易達到檢測要求,因此果糖的測定采用3,5-二硝基水楊酸試劑法(DNS)[7~8]。

    在研究金屬離子對右旋糖酐發(fā)酵影響中發(fā)現(xiàn),按照常規(guī)DNS 測定還原糖法檢測,Mn2+對發(fā)酵液中的果糖和右旋糖酐兩種代謝產(chǎn)物的影響結(jié)果不同,前者隨發(fā)酵液中Mn2+濃度的增加一直增加,而后者則相反,出現(xiàn)異?,F(xiàn)象。隨后在研究金屬離子對右旋糖酐蔗糖酶作用的影響時,不同Mn2+濃度的酶反應(yīng)體系作用結(jié)果檢測時,偶然發(fā)現(xiàn),對照管的光吸收值隨Mn2+濃度的增加而增加,說明Mn2+也在檢測過程中發(fā)生反應(yīng)。本文主要通過Mn2+對右旋糖酐發(fā)酵過程中果糖和右旋糖酐蔗糖酶的檢測的影響及Mn2+和DNS的定量發(fā)應(yīng)等進行探索研究,改進DNS法測定右旋糖酐發(fā)酵液中果糖含量,為還原糖測定樣品中含有氧化還原性其他物質(zhì)時的檢測提供參考,如果檢測樣品中含有待測還原糖外的其它具有還原性的物質(zhì)時,在DNS測定還原糖時,一定要考慮其產(chǎn)生的氧化還原反應(yīng),消除其對檢測結(jié)果的影響。

    1 實驗部分

    1.1 試劑、材料與儀器

    1.1.1 試劑與材料 果糖(D -(-)- fructose)(Sigma 公司);3,5-二硝基水楊酸(DNS)(化學(xué)純,上??曝S化學(xué)試劑有限公司);苯酚(重蒸酚,北京鼎國生物技術(shù)有限責(zé)任公司);蔗糖、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、氫氧化鈉、酒石酸鉀鈉、無水亞硫酸鈉、氯化錳、乙酸鈉、冰醋酸、(分析純,廣東光華科技股份有限公司);蛋白胨(北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司);白砂糖(市售一級);菌株:Leuconstoc mesenteriodes -1226(Lm-1226)(中國藥品生物制品檢定所)。

    1.1.2 儀器 722分光光度計(上海精密科學(xué)儀器有限公司);SPX-150BIII生化培養(yǎng)、GH-500型隔水式培養(yǎng)箱、101型電熱鼓風(fēng)干燥箱、HH-4A電熱恒溫水浴鍋(北京科偉永興儀器有限公司)。

    1.1.3 DNS試劑 稱取10.0 g DNS于600 mL蒸餾水中,逐漸加入10.0 g氫氧化鈉,加熱(50℃水浴)攪拌至溶解,依次加入200 g酒石酸鉀鈉,2.0 g苯酚和5.0 g無水亞硫酸鈉,待全部溶解并澄清后,冷卻至室溫,用水定容至1 000 mL,過濾,貯存于棕色試劑瓶中,于暗處放置7 d后使用。

    1.1.4 1 mg·mL-1果糖標(biāo)準(zhǔn)溶液 準(zhǔn)確稱取0.1000 g Sigma果糖(105 ℃干燥衡重),用蒸餾水溶解并定容至100 mL。

    1.1.5 1 mg·mL-1Mn2+標(biāo)準(zhǔn)溶液 準(zhǔn)確稱取0.3076 g 分析純硫酸錳(105 ℃干燥衡重),用蒸餾水溶解并定容至100 mL。

    1.1.6培養(yǎng)基(g·L-1) 白砂糖120 g,蛋白胨 1.7 g ,磷酸氫二鈉1.4 g,pH7.0。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 Lm-1226產(chǎn)右旋糖酐的發(fā)酵 以不同Mn2+將硫酸錳分別加入到培養(yǎng)基中,腸膜狀明串珠菌Lm-1226種子液以10%的接種量接入到培養(yǎng)基中,25 ℃,靜止培養(yǎng)28 h;取樣檢測果糖、右旋糖酐蔗糖酶,并將75%乙醇按135 mL·100 mL-1加入到發(fā)酵液中,充分?jǐn)嚢杈鶆?,放置,收集沉淀,沉淀?5%乙醇洗滌3次,烘干稱重測出右旋糖酐量。

    1.2.2 Mn2+對右旋糖酐蔗糖酶作用的影響 右旋糖酐發(fā)酵液進行一定的稀釋,10 000 r·min-1離心15 min,收集上清液為提取液為右旋糖酐蔗糖酶酶液,在適當(dāng)稀釋的酶液中加入不同濃度的Mn2+,以蔗糖為底物,右旋糖酐蔗糖酶在Mn2+濃度不同反應(yīng)體系中作用,測定酶活力,以確定Mn2+對右旋糖酐蔗糖酶作用的影響。

    1.2.3 果糖、右旋糖酐蔗糖酶活力的測定

    1.2.3.1 果糖標(biāo)準(zhǔn)曲線制作

    圖1 果糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

    采用DNS法測定還原糖方法,分別量取0.3、0.35、0.4、0.45、0.5 mL果糖標(biāo)準(zhǔn)溶液(1 mg·mL-1),用蒸餾水補齊1 mL,再加入2 mL DNS,沸水浴2 min,流水冷卻后加蒸餾水至10 mL,在540 nm測定光吸收值,繪制果糖標(biāo)準(zhǔn)曲線,得出回歸方程用于果糖和酶活測定。

    1.2.3.2 果糖測定 發(fā)酵液等樣品稀釋一定倍數(shù),取樣品1 mL加入2 mL DNS煮沸2 min顯色,然后冷水浴冷卻至室溫,定容至10 mL;蒸餾水為對照,取蒸餾水1 mL ,其余同樣品;540 nm測定吸光值,根據(jù)回歸方程得出樣品中的果糖含量果糖含量計算公式:

    果糖(mg·mL-1)=[(Ae-A0) +0.1014]/1.302×Df

    式中:Ae——樣品的吸光值

    A0—蒸餾水空白的吸光值

    Df—樣品的稀釋倍數(shù)

    1.2.3.3 改進的果糖測定

    發(fā)酵液等樣品稀釋一定倍數(shù),取樣品1 mL加入2 mL DNS煮沸2 min顯色,然后冷水浴冷卻至室溫,定容至10 mL;發(fā)酵液相對應(yīng)的發(fā)酵培養(yǎng)基為對照,發(fā)酵培養(yǎng)基與相對應(yīng)的發(fā)酵液稀釋相同倍數(shù),取樣品1 mL ,其余同樣發(fā)酵液樣品;540 nm測定吸光值,根據(jù)回歸方程得出發(fā)酵液樣品中的果糖含量。

    果糖含量計算公式:

    果糖(mg·mL-1)=[(Ae-A0) +0.1014]/1.302×Df

    式中:Ae——樣品的吸光值

    A0—培養(yǎng)基空白的吸光值

    Df—樣品的稀釋倍數(shù)

    1.2.3.4 右旋糖酐蔗糖酶活力測定

    將酶液用pH5.4的0.2 M醋酸緩沖液適當(dāng)稀釋后,取0.5 mL的酶液加入到0.5 mL10%的蔗糖溶液中,30℃準(zhǔn)確反應(yīng)1 h,加入2 mLDNS終止反應(yīng),沸水浴2 min顯色,然后流水冷卻至室溫,定容至10 mL;空白對照的酶液和DNS加入順序顛倒,其余同樣品測定。以蒸餾水為對照測定540 nm的吸光值,樣品和空白對照的吸光值之差根據(jù)回歸方程得出反應(yīng)液中的果糖量,從而確定酶活。酶活力單位定義:在上述條件下,每分鐘催化蔗糖產(chǎn)生1 μmol果糖所需要的酶量定義為1個酶活力單位(IU)。

    酶活力計算公式:

    E={[(Ae-A0) +0.1014]/1.302×Df×1 000}/(WM×t×V)

    式中:E——樣品酶活力(IU·mL-1)

    Ae——酶液反應(yīng)的吸光值

    A0—滅活酶液空白的吸光值

    Df—樣品酶液的稀釋倍數(shù)

    WM——果糖分子量

    t——酶反應(yīng)時間(min)

    V——發(fā)應(yīng)的酶液體積(mL)

    1.2.4 Mn2+與DNS試劑的作用 分別量取0.3、0.35、0.4、0.45、0.5 mL Mn2+標(biāo)準(zhǔn)溶液(1 mg·mL-1),用蒸餾水補齊1 mL,再加入2 mL DNS,沸水浴2 min,流水冷卻后加蒸餾水至10 mL,在540 nm測定光吸收值。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 Mn2+對右旋糖酐發(fā)酵液中果糖檢測的影響

    DNS法測定樣品中的還原糖一般是按照1.2.3.1和1.2.3.2的方法進行的,如此對含有不同Mn2+濃度的培養(yǎng)基經(jīng)Lm-1226培養(yǎng)發(fā)酵后的右旋糖酐發(fā)酵液進行了果糖測定,同時用乙醇沉淀法提取了發(fā)酵液中的右旋糖酐進行了定量檢測(見表1)。結(jié)果表明:果糖含量隨Mn2+濃度的增加而增加,而右旋糖酐則相反。Leuconstoc mesenteriodes -1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐的機理是,蔗糖中的葡萄糖基以α-1,6糖苷鍵連接形成右旋糖酐,釋放果糖,因此二者隨Mn2+濃度變化的趨勢應(yīng)該一致,但結(jié)果出現(xiàn)異常,需要進一步研究。

    2.2 Mn2+對右旋糖酐蔗糖酶活力檢測的影響

    右旋糖酐蔗糖酶在不同Mn2+濃度的發(fā)應(yīng)體系中作用結(jié)果見表2,在1.25~7.5 mmol·L Mn2+濃度范圍內(nèi),右旋糖酐蔗糖酶作用開始隨著Mn2+濃度的增加而增強,5.0 mmol·L-1時作用最強,隨后增強作用逐漸降低,說明Mn2+對右旋糖酐蔗糖酶具有較強地激活作用,最適Mn2+濃度為5.0 mmol·L-1。但是還可以看出,滅活酶液空白的吸光值A(chǔ)0隨著Mn2+濃度的增加一直在增大,那么就有可能是Mn2+與DNS試劑發(fā)生反應(yīng)而造成這一結(jié)果。2.1中果糖與右旋糖酐隨Mn2+濃度變化而變化的異常現(xiàn)象也可能由于Mn2+與DNS試劑產(chǎn)生發(fā)應(yīng)而影響了果糖的測定結(jié)果。

    表1 Mn2+對右旋糖酐發(fā)酵液檢測的影響

    表2 Mn2+對右旋糖酐蔗糖酶活力檢測的影響

    注:檢測樣品稀釋200倍。

    2.3 Mn2+與DNS試劑的反應(yīng)

    按照DNS測定還原糖的方法對不同濃度的Mn2+進行反應(yīng)并測定結(jié)果(見表3),隨著Mn2+濃度的增加吸收值A(chǔ)540也在增加,和果糖與DNS發(fā)應(yīng)的變化趨勢一致,說明Mn2+的確與DNS發(fā)生發(fā)應(yīng)。原因在于,Mn2+在堿性介質(zhì)中很容易被氧化,DNS試劑,除了具有氧化性外,還含有氫氧化鈉而呈堿性。雖然相同量相對應(yīng)吸光值有差,Mn2+的均低于果糖,原因可能在于Mn2+的還原性弱于果糖或者與DNS的反應(yīng)弱于果糖的反應(yīng)。因此在使用DNS測定果糖等還原糖樣品時,需要考慮其是否含有類似于Mn2+等的還原性其他物質(zhì)存在,若有就必須改進方法消除影響。

    表3 Mn2+、果糖與DNS試劑的反應(yīng)

    2.4 改進方法對右旋糖酐發(fā)酵液檢測

    從2.1中可看出Mn2+對Lm-1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐無促進作用,且隨Mn2+的增加,抑制作用增強,因此將Mn2+濃度降低進行其對Lm-1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐影響實驗,按照1.2.1、1.2.3.1、1.2.3.3及1.2.3.4對發(fā)酵液中的右旋糖酐、果糖和右旋糖酐蔗糖酶進行檢測,Mn2+對Lm-1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐的影響見表4。果糖和右旋糖酐均隨著培養(yǎng)基中Mn2+濃度的增加而降低,說明Mn2+對Lm-1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐具有抑制作用,且濃度越大抑制性越強。發(fā)酵液中右旋糖酐蔗糖酶的活力隨Mn2+濃度的增加,開始上升,隨后降低??紤]到Mn2+本身和DNS發(fā)生應(yīng),因此將未經(jīng)Lm-1226培養(yǎng)基作為相應(yīng)Mn2+濃度發(fā)酵液檢測的空白對照,從而消除了Mn2+對果糖檢測結(jié)果的影響,使得果糖和右旋糖酐的變化顯示應(yīng)有的一致性。但是從檢測數(shù)據(jù)的絕對值來看,果糖和右旋糖酐的含量對應(yīng)性存在問題。1 kg蔗糖完全被轉(zhuǎn)化后產(chǎn)生0.526 kg果糖和0.474右旋糖酐,因此發(fā)酵液中果糖的含量應(yīng)大于右旋糖酐。但是表4數(shù)據(jù)倒掛,果糖含量低于右旋糖酐,說明原因可能還在于果糖的檢測。根本原因仍在于Mn2+的性質(zhì)所致,在Mn2+的鹽溶液中加堿時,可以析出膠狀白色Mn(OH)2沉淀,在空氣中不穩(wěn)定,易被氧化成棕色的Mn(OH)4或MnO(OH)2。

    MnSO4+ 2NaHO = Mn(OH)2↓ + Na2SO4

    2Mn(OH)2+ O2= 2MnO(OH)2↓

    DNS試劑含有氫氧化鈉和氧化劑,Mn2+和DNS一定發(fā)生氧化還原反應(yīng),但是到底是什么樣的反應(yīng),僅僅通過540 nm的光吸收值是難以清楚的,因此還需要進一步的工作,繼續(xù)探索Mn2+對DNS測定還原糖的影響。

    表4 Mn2+對Lm-1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐的影響液

    3 結(jié)論

    在Mn2+對腸膜狀明串珠菌發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐的影響研究中出現(xiàn)的果糖和右旋糖酐兩種代謝產(chǎn)物隨Mn2+濃度變化的不一致性而發(fā)現(xiàn)問題;隨后通過Mn2+對右旋糖酐蔗糖酶作用的影響研究中找處了DNS測定果糖是產(chǎn)生問題的原因;然后通過Mn2+與DNS的發(fā)應(yīng)進一步證實,Mn2+本身的氧化還原型性導(dǎo)致其與DNS試劑產(chǎn)生反應(yīng),在測定果糖時要考慮到Mn2+對檢測結(jié)果的影響;最后通過檢測時以含有Mn2+的培養(yǎng)基作為相對應(yīng)發(fā)酵液的空白對照,檢測結(jié)果表明,克服了果糖和右旋糖酐兩種代謝產(chǎn)物隨Mn2+濃度變化的不一致性的問題,但是從Mn2m-1226發(fā)酵產(chǎn)右旋糖酐的轉(zhuǎn)化機理的角度來看,檢測結(jié)果中的果糖含量和右旋糖酐產(chǎn)出量出現(xiàn)了倒掛現(xiàn)象,說明僅僅通過改變檢測空白來消除Mn2+對果糖檢測的影響還遠遠不夠,畢竟沒有搞清楚在發(fā)酵液中的果糖與DNS發(fā)應(yīng)的同時Mn2y與DNS到底發(fā)生了什么樣的發(fā)應(yīng),還需要進一步的工作??傊?,Mn2+對DNS法測定右旋糖酐發(fā)酵液中的果糖含量有影響,需要在利用DNS法測定樣品中的還原糖時,一定要考慮是否含有具有氧化還原性的其他成分,若有就需要改進方法,消除其對檢測結(jié)果的影響。

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