徐吉淋,王路喬,梁 倩,楊人強(qiáng)
(1.長(zhǎng)江航運(yùn)總醫(yī)院心血管內(nèi)科,武漢 430019;2.南昌大學(xué)第二附屬醫(yī)院心血管內(nèi)科,南昌 330006;3.昆明醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院心血管內(nèi)科,昆明650031;4.南昌大學(xué)第二附屬醫(yī)院分子中心,南昌 330006)
血小板的激活和各種血小板因子的釋放是觸發(fā)急性冠脈綜合征(acute coronary syndrome,ACS)的始動(dòng)和核心環(huán)節(jié)。最近的研究發(fā)現(xiàn),血小板的激活不僅能促進(jìn)血栓形成,還能激活機(jī)體免疫炎性反應(yīng)[1-2]。血小板表面存在Toll樣受體4(TLR4)、CD40L、P-selectin等免疫分子。TLR4的表達(dá)在活化和非活化的血小板之間不同,活化的血小板TLR4表達(dá)明顯升高[3-4]。TLR4在ACS患者單核細(xì)胞中過(guò)表達(dá),并且這些過(guò)表達(dá)的TLR4通過(guò)TLR4/核因子(NF)-κB信號(hào)通路調(diào)控免疫炎性反應(yīng)[5-6]。近年有研究表明,血小板、巨核細(xì)胞中存在大量有功能的NF-κB家族成員,并且它們和血小板免疫炎癥密切相關(guān),具體機(jī)制有待進(jìn)一步研究[7]。miR-146是第一個(gè)被發(fā)現(xiàn)在免疫系統(tǒng)中具有調(diào)節(jié)作用的miRNA,其能誘導(dǎo)巨核細(xì)胞增生分化[8],并且在小鼠成熟巨核細(xì)胞中表達(dá)增加[9]。在血小板生成過(guò)程中,巨核細(xì)胞中線粒體、核糖體等細(xì)胞器及多種不同細(xì)胞因子的pre-mRNA轉(zhuǎn)移到血小板,因此miRNA通過(guò)影響巨核細(xì)胞中mRNA的合成進(jìn)一步影響血小板功能[9]。本文研究miR-146a對(duì)巨核細(xì)胞裂解產(chǎn)生的血小板免疫炎癥功能的影響,為抑制血小板免疫炎癥的治療提供更多的理論依據(jù)。
1.1材料 人慢性粒細(xì)胞白血病細(xì)胞K562由南昌大學(xué)第二附屬醫(yī)院分子中心饋贈(zèng);高糖1640培養(yǎng)基,胎牛血清(FBS,以色列BI公司); miR-146a mimic、miR-146a inhibitor、mimic-NC、inhibibor-NC、miR-146a/U6的RT-qPCR引物(吉瑪公司); lipofectmine 2000(全式金公司); TLR4一抗(美國(guó)Proteintech公司),NF-κB一抗(美國(guó)Abcam公司),β-actin一抗、鼠二抗、兔二抗(中杉金橋公司);白細(xì)胞介素(IL)-6及腫瘤壞死因子α(TNF-α)ELISA試劑盒[優(yōu)爾生(uscnk)];RT-PCR、qPCR試劑盒(Tiangen公司);佛波酯(美國(guó)Sigma公司)。
1.2方法
1.2.1細(xì)胞培養(yǎng)及巨核細(xì)胞模型建立 常規(guī)培養(yǎng)K562細(xì)胞,按照前期實(shí)驗(yàn)摸索條件,復(fù)制K562細(xì)胞向巨核細(xì)胞分化模型,待細(xì)胞處于對(duì)數(shù)增殖期時(shí),加入佛波酯(DMSO溶解,終濃度為10 ng/mL) 誘導(dǎo)72 h,離心收集誘導(dǎo)后細(xì)胞,培養(yǎng)基重懸,接種于新的培養(yǎng)皿中用于后續(xù)細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)。
1.2.2細(xì)胞形態(tài)分析 收集誘導(dǎo)前后K562細(xì)胞離心涂片,在光鏡下觀察誘導(dǎo)前后細(xì)胞形態(tài)變化并拍照。
1.2.3流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)表面標(biāo)志分子 用流式細(xì)胞儀檢測(cè)誘導(dǎo)前后K562細(xì)胞CD61和CD41陽(yáng)性血小板百分率。三色流式細(xì)胞分析法詳細(xì)操作步驟參考文獻(xiàn)[5]。
1.2.4轉(zhuǎn)染佛波酯誘導(dǎo)分化 誘導(dǎo)后細(xì)胞增殖至80%左右匯合時(shí)進(jìn)行siRNA轉(zhuǎn)染。按照轉(zhuǎn)染試劑操作指南操作,分別導(dǎo)入miR-146a mimic、miR-146a inhibitor、mimic-NC、inhibitor-NC等。
1.2.5熒光定量檢測(cè)miR-146a水平 收集細(xì)胞,按Trizol試劑盒說(shuō)明書(shū)提取總RNA。反轉(zhuǎn)錄合成第1鏈cDNA,PCR擴(kuò)增。miR-146a:上游引物5′-TAATCGTGTGAGAACTGAATTC-3′,下游引物5′-TATGGTTTTGACGACTGTGTGAT-3′;U6:上游引物5′-ATTGGAACGATA CAGAGAAGATT-3′,下游引物5′-GGAACGCT TCACGAATTTG-3′。具體步驟參照熒光定量試劑盒說(shuō)明書(shū)。擴(kuò)增條件:95 ℃ 15 min 1個(gè)循環(huán);95 ℃ 10 s,60 ℃ 32 s 40個(gè)循環(huán)。每個(gè)標(biāo)本均做3個(gè)復(fù)孔,結(jié)果采用2-ΔΔCT法進(jìn)行相對(duì)基因分析。
1.2.6ELISA測(cè)定IL-6、TNF-α水平 按照ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,檢測(cè)培養(yǎng)上清液中IL-6、TNF-α水平,結(jié)果經(jīng)酶標(biāo)儀讀數(shù),在標(biāo)準(zhǔn)曲線上進(jìn)行定量分析。
1.2.7Western blot檢測(cè)TLR4、NF-κB蛋白表達(dá) 收集轉(zhuǎn)染3 d后的細(xì)胞懸浮液離心(1 000 r/min離心5 min),PBS洗滌3次;加入50 μL×Loading Buffer漩渦振蕩充分裂解細(xì)胞,置沸水中煮10 min,十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝膠電泳后將其轉(zhuǎn)移到聚偏氟乙烯(PVDF)膜,脫脂牛奶封閉2 h,雙蒸水洗膜5 min×3次,加入稀釋好的一抗4 ℃搖床孵育36~48 h,TBST洗滌10 min×3次。加入二抗常溫孵育1.5 h,TBST 洗滌10 min ×3次。加入顯影液曝光,以β-actin 作為內(nèi)參照。
1.2.8RT-PCR檢測(cè)NF-κB、IL-1受體相關(guān)激酶1(IRAK1)水平 收集細(xì)胞,按Trizol試劑盒說(shuō)明書(shū)提取總RNA。反轉(zhuǎn)錄合成第1鏈cDNA,PCR擴(kuò)增。具體步驟參照RT-PCR試劑盒說(shuō)明書(shū)。NF-κB、IRAK1引物序列見(jiàn)表1。PCR反應(yīng)條件:預(yù)變性94 ℃ 5 min;變性94 ℃ 30 s,退火58 ℃ 30 s,延伸 72 ℃ 60 s,循環(huán)30次;總延伸72 ℃ 7 min。IRAK1退火溫度56.8 ℃,NF-κB退火溫度 57.8 ℃。
表1 引物系列
1.2.9靶基因預(yù)測(cè) 利用3種常用的靶基因預(yù)測(cè)軟件(TargetScan、PicTar、miRanda)預(yù)測(cè)miR-146a可能作用的靶基因,結(jié)合miR-146a在調(diào)控血小板免疫炎癥過(guò)程中的作用,在預(yù)測(cè)結(jié)果交集中篩選出IRAK1基因?yàn)闈撛诘陌谢?;通過(guò)熒光素酶報(bào)告基因法驗(yàn)證IRAK1是否含有miR-146a的靶位點(diǎn);通過(guò)檢測(cè)過(guò)表達(dá)或抑制表達(dá)miR-146a后細(xì)胞中靶基因mRNA及蛋白表達(dá)的變化,從而確定miR-146a與靶基因的對(duì)應(yīng)關(guān)系。
2.1形態(tài)學(xué)變化 K562細(xì)胞經(jīng)佛波酯誘導(dǎo)后,隨著時(shí)間的延長(zhǎng)細(xì)胞逐漸變形,到72 h時(shí)細(xì)胞變化最明顯,呈現(xiàn)出巨核細(xì)胞特點(diǎn):細(xì)胞形態(tài)為圓形或橢圓形,邊緣不規(guī)則,染色質(zhì)呈粗顆粒狀,排列緊密,核仁不甚清晰,出現(xiàn)空泡及偽足等,見(jiàn)圖1。
A:誘導(dǎo)0 h;B誘導(dǎo)24 h;C:誘導(dǎo)48 h;D:誘導(dǎo)72 h
圖1 佛波酯誘導(dǎo)K562細(xì)胞的形態(tài)變化(×100)
2.2表面標(biāo)志物CD41和CD61表達(dá)水平 K562細(xì)胞表面幾乎不表達(dá)CD41和CD61,而佛波酯誘導(dǎo)72 h后,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞表面CD41和CD61的陽(yáng)性率分別高達(dá)38.7%和46.45%,見(jiàn)圖2。
圖2 佛波酯誘導(dǎo)K562細(xì)胞前后CD41、CD61表達(dá)變化
2.3siRNA轉(zhuǎn)染效率的測(cè)定 與mimic-NC組相比,miR-146a mimic組miR-146a的表達(dá)明顯升高(約77.5倍);與inhibitor-NC組相比,miR-146a inhibitor組miR-146a表達(dá)下降(約7.5倍),見(jiàn)圖3。
1:Control;2:miR-146a mimic;3:miR-146a inhibitor;4:mimic-NC;5:inhibitor-NC
圖3 轉(zhuǎn)染siRNA 48 h后各組miR-146a水平變化
2.4miR-146a對(duì)IL-6、TNF-α水平的影響 與mimic-NC組相比, miR-146a mimic組細(xì)胞上清液中IL-6、TNF-α水平明顯降低(P<0.05);與inhibitor-NC組相比,miR-146a inhibitor組細(xì)胞上清液中IL-6、TNF-α水平明顯升高(P<0.05),見(jiàn)表2。
表2 各組細(xì)胞IL-6、TNF-α水平
a:P<0.05,與Control組比較;b:P<0.05 與mimic-NC組比較;c:P<0.05,與inhibitor-NC組比較
2.5miR-146a對(duì)TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)的影響 轉(zhuǎn)染72 h后提取總蛋白質(zhì)行Western blot,結(jié)果顯示miR-146a mimic組中TLR4蛋白表達(dá)明顯升高,NF-κB蛋白表達(dá)明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖4。轉(zhuǎn)染48 h后提取總RNA行RT,結(jié)果顯示: miR-146a mimic 可降低NF-κB mRNA表達(dá),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖5。
1:Control;2:miR-146a mimic;3:miR-146a inhibitor;4:mimic-NC;5:inhibitor-NC;a:P<0.05,與Control組比較;b:P<0.05,與miR-146a mimic組比較;c:P<0.05,與miR-146a inhibitor組比較
圖4 各組細(xì)胞TLR4、NF-κB蛋白表達(dá)
1:Control;2:miR-146a mimic;3:miR-146a inhibitor;4:mimic-NC;5:inhibitor-NC;a:P<0.05,與Control組比較;b:P<0.05,與miR-146a mimic組比較;c:P<0.05,與miR-146a inhibitor組比較
圖5 各組細(xì)胞NF-κB mRNA表達(dá)
2.6驗(yàn)證靶基因 雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)結(jié)果顯示,共轉(zhuǎn)染Pmir-Report-WT-IRAK-1-3′UTR載體與miR-146a mimic,在細(xì)胞內(nèi)miR-146a與IRAK1 3′UTR相結(jié)合,使得載體熒光素酶不表達(dá),熒光素酶活性受到明顯抑制;而將此共轉(zhuǎn)染體系中更換為mimic-NC或Pmir-Report-MUT-IRAK-1-3′UTR載體,則熒光素酶表達(dá)不受影響,熒光強(qiáng)度無(wú)明顯變化,見(jiàn)圖6。hsa-miR-146a可以與IRAK1的3′UTR相結(jié)合,IRAK1是hsa-miR-146a的靶基因。進(jìn)一步的生物學(xué)實(shí)驗(yàn)表明hsa-miR-146a過(guò)表達(dá)能降低IRAK1蛋白表達(dá)而不影響IRAK1 mRNA表達(dá),阻遏hsa-miR-146a的表達(dá)則提高了IRAK1的蛋白表達(dá),IRAK1 mRNA表達(dá)也無(wú)明顯變化,見(jiàn)圖7、8。hsa-miR-146a在轉(zhuǎn)錄后水平抑制IRAK1表達(dá),再次證實(shí)IRAK1是hsa-miR-146作用的靶基因。
圖6 雙熒光素酶報(bào)告基因交叉轉(zhuǎn)染后對(duì)熒光素酶活性的影響
圖7 各組細(xì)胞IRAK1 mRNA表達(dá)
1:Control;2:miR-146a mimic;3:miR-146a inhibitor;4:mimic-NC;5:inhibitor-NC;a:P<0.05,與Control組比較;b:P<0.05,與miR-146a mimic組比較;c:P<0.05,與miR-146a inhibitor組比較
圖8 各組細(xì)胞IRAK1蛋白表達(dá)
激活的血小板自身能分泌多種炎癥因子,如IL-1β、IL-3、IL-6、TNF-α[10]。此外,血小板激活后通過(guò)與血管內(nèi)皮、循環(huán)中的白細(xì)胞相互作用,釋放多種促炎分子[4,11-12]。因此,血小板的免疫炎性反應(yīng)不僅參與動(dòng)脈粥樣斑塊破裂及血栓形成,還貫穿在動(dòng)脈粥樣硬化的形成及發(fā)展的整個(gè)慢性炎性反應(yīng)過(guò)程中[13-14]。研究血小板的免疫炎性反應(yīng),對(duì)冠狀動(dòng)脈粥樣硬化性心臟病的預(yù)防和治療有著深遠(yuǎn)意義。然而血小板體外存活時(shí)間短,保存困難,容易激活,體外研究困難。K562細(xì)胞是一種雙分化潛能的人慢性粒細(xì)胞白血病細(xì)胞,在國(guó)際上被通用于研究巨核細(xì)胞的分化研究。本實(shí)驗(yàn)成功復(fù)制了體外用佛波酯誘導(dǎo)K562細(xì)胞構(gòu)建巨核細(xì)胞/血小板模型[15],通過(guò)轉(zhuǎn)染miR-146a siRNA成功上調(diào)或下調(diào)了miR-146a水平。上調(diào)miR-146a表達(dá)后,TLR4蛋白明顯升高,NF-κB mRNA和蛋白降低,細(xì)胞上清IL-6、TNF-α水平明顯降低。下調(diào)miR-146a表達(dá)后,TLR4蛋白明顯降低,NF-κB mRNA和蛋白明顯升高,細(xì)胞上清IL-6、TNF-α水平明顯升高。IRAK1是TLR4/NF-κB信號(hào)通路中的一關(guān)鍵分子,多個(gè)生物信息學(xué)軟件都預(yù)測(cè)到IRAK1是miR-146a的一個(gè)靶基因,通過(guò)雙熒光素酶報(bào)告基因證明在血小板中miR-146a可以靶向作用于IRAK1,并通過(guò)Western blot和RT-PCR檢測(cè)證明血小板中miR-146a也能在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控IRAK1的表達(dá)。從而表明miR-146a可通過(guò)TLR-4/NF-κB炎癥通路抑制血小板的炎性反應(yīng),并且其可能機(jī)制是通過(guò)作用TLR4/NF-κB信號(hào)通路中關(guān)鍵靶點(diǎn)IRAK1,負(fù)性調(diào)節(jié)此通路,減弱該通路下游NF-κB介導(dǎo)的IL-6、TNF-α等炎癥因子的表達(dá)。目前研究的miR-146a抗炎的經(jīng)典途徑之一是miR-146a通過(guò)靶向作用于IRAK1、TRAF6,負(fù)向調(diào)控TLR4/NF-κB信號(hào)通路,抑制該通路下游NF-κB介導(dǎo)的炎癥因子的表達(dá)[16-17]。上述經(jīng)典途徑與本研究結(jié)果完全一致。然而,也有研究表明miR-146a可促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化的炎癥,加重冠狀動(dòng)脈粥樣硬化性心臟病[18-19]。因此,需要進(jìn)一步研究miR-146a在血小板免疫炎癥及冠狀動(dòng)脈粥樣性心臟病中的的作用機(jī)制。