吳 波, 葉 鑫, 陳 林, 楊 進, 張漢超, 劉俊瑩, 陳 亮, 刁建軍
(1成都市郫都區(qū)人民醫(yī)院泌尿外科, 2四川大學華西醫(yī)院泌尿外科,成都大學附屬醫(yī)院 3泌尿外科, 4中心實驗室, 四川 成都 610000)
腎癌對傳統放化療不敏感使免疫治療成為研究熱點,近年來雖然靶向治療在腎癌方面有所突破,但免疫治療仍然是晚期腎癌的標準治療[1]。免疫治療尤其是細胞因子治療可以讓一些患者完全緩解,而靶向藥物,如酪氨酸激酶抑制劑完全緩解率較低,這源于細胞因子治療與靶向治療機制完全不同[2]。靶向治療的機制是抑制腫瘤細胞增殖生長,而免疫治療既可抑制細胞增殖,還具有細胞毒作用從而導致腫瘤細胞凋亡。腎癌被廣泛認為是免疫原性腫瘤,這正是免疫治療可以在一些患者中取得長期完全緩解療效的原因[3-4]。國外最新研究表明,Toll 樣受體7(Toll-like receptor 7,TLR7)激動劑可以激活外周血細胞,誘導產生針對皮膚癌的免疫反應[5]。本課題組前期運用TLR7激動劑刺激腎癌患者外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cells,PBMCs),亦發(fā)現多種抗腫瘤細胞因子表達增加,表明TLR7激動劑可能在腎癌免疫治療中有重要價值[6]。本研究在前期基礎之上,進一步將TLR7激動劑刺激后的腎癌患者PBMCs與來源于該患者術后標本的原代腎癌細胞共培養(yǎng),探索TLR7激動劑治療腎癌的潛能。
患者男,53歲。經根治性腎切除術后病理確診為腎透明細胞癌,確診時未發(fā)現炎癥及其它合并癥。研究方案經醫(yī)院倫理委員會審批通過,批件號《倫委批字2018D1》。
2.1PBMCs的分離、培養(yǎng)及刺激 經知情同意抽取腎癌患者血液20 mL,乙二胺四乙酸抗凝,離心分離血漿吸入1.5 mL環(huán)氧樹脂管中凍存?zhèn)溆?。剩余血液用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered solution,PBS)稀釋,淋巴細胞分離液混勻梯度離心 PBMCs,小心吸取離心管中單個核細胞層,用PBS洗滌 2 次,最后以含10% 胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基懸浮細胞并記數,調細胞含量為 2.5×108/L, 加入12孔板中(每孔2 mL)。TLR7 特異性激動劑 gardiquimod(EnzoLife Science)按照操作說明書進行溶解,以10 mg/L的終濃度加入PBMCs 中[6]。
2.2腎癌細胞培養(yǎng) 原代細胞取自該患者腎癌標本,采用混合酶消化法。將3~5代內腎癌細胞接種于孔徑為0.4 μm 的12 mm Transwell(Life Sciences)板中(每孔0.5 mL),Transwell外12孔板中加入含10% 胎牛血清 的 RPMI-1640培養(yǎng)基1.5 mL。貼壁后換無血清培養(yǎng)基同步細胞周期,然后與gardiquimod 刺 激4 h 后的PBMCs共培養(yǎng)24 h。實驗分2組進行,分別是實驗(gardiquimod)組(gardiquimod 刺 激的PBMCs共培養(yǎng))和對照(control)組(未刺激的PBMCs共培養(yǎng))。
2.3ELISA檢測培養(yǎng)基中細胞因子水平 將PBMCs與腎癌細胞共培養(yǎng)后,取上層細胞培養(yǎng)液,按照ELISA試劑盒(R&D)說明檢測培養(yǎng)液中γ-干擾素(interferon-γ,IFN-γ)、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)和白細胞介素2(interleukin-2,IL-2)。比較實驗組和對照組3種細胞因子的表達水平。
2.4流式細胞術檢測腎癌細胞周期 共培養(yǎng)24 h后將實驗組和對照組腎癌細胞消化,離心后棄上清,收取細胞用預冷PBS洗滌2次。加入-20 ℃預冷的70%乙醇1.5 mL,于4 ℃冰箱固定過夜。離心棄上清液,PBS洗滌離心除去乙醇。然后加入500 μL RNase(100 mg/L)37 ℃孵育1 h使雙股RNA降解,離心棄上清后加入1 mL溴化乙錠(propidium iodide,PI,50 mg/L)和0.2% Triton X-100避光孵育30 min。實驗方法參考秦曉平等[7]報道,以標準程序用流式細胞儀檢測腎癌細胞周期,結果用細胞周期軟件分析。反應細胞增殖能力的指標按照下列公式計算:細胞增殖指數(%)=(S+G2/M)/(G0/G1+S+G2/M) × 100%。
2.5[51Cr ]釋放實驗檢測Gardiquimod 刺激PBMCs抗腫瘤活性變化 將實驗組和對照組PBMCs作為效應細胞,原代培養(yǎng)的腎癌細胞作為靶細胞,采用標準的 4 h [51Cr]釋放實驗檢測效應細胞的殺傷活性。實驗前 24 h傳代腎癌細胞作為靶細胞, 取 1 ×105個靶細胞,設置為效靶比40 ∶1、 20 ∶1和10 ∶1,同時設立自然釋放孔和最大釋放孔。作用時間為4 h,按以下公式計算各組的殺傷率:細胞殺傷活性(%)=[(實驗cpm-自放射cpm)/(靶細胞最大cpm-靶細胞自放射cpm)]×100%。
2.6Western blot檢測腎癌細胞中Skp2及其下游通路相關分子的蛋白水平 收獲共培養(yǎng)腎癌細胞,加入RIPA細胞裂解液(碧云天公司),操作在冰上進行。將裂解的細胞液移入1.5 mL Ep管中,4 ℃、12 000 r/min離心15 min后吸取上清移入新管。取少量上清進行定量,測定A值并計算蛋白質濃度。將蛋白樣品調至等濃度,各組取30 mg蛋白樣品,通過SDS-PAGE分離后并轉移到PVDF膜(Millipore)上,然后用特異性抗體孵育。檢測的蛋白分別是GAPDH、p53、p27、p21和Skp2(Cell Signaling Technology)。采用Image-Pro Plus 6.0軟件對Western blot結果進行灰度值測量然后統計分析。
用GraphPad Prism軟件對資料進行統計分析,計量資料均采用均數±標準差(mean±SD)表示,統計方法采用t檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。
Gardiquimod 刺激的PBMCs與腎癌細胞共培養(yǎng)24 h后,細胞培養(yǎng)基上清液內IFN-γ、TNF-α和 IL-2 3種因子均明顯升高,IL-2較對照組升高約3倍,TNF-α較對照組升高約2倍,而IFN-γ較對照組升高約5倍(P<0.05),見圖1。
在共培養(yǎng)24 h后,各個樣本用流式細胞術檢測,統計分析顯示,實驗組PBMCs明顯抑制腎癌細胞從G1期過渡到S期,細胞的增殖指數從對照組的(51.58±4.90)%下降到實驗組的(40.83±4.87)%(P<0.05),見圖2。
Figure 1.The expression of IL-2, TNF-α and IFN-γ in culture medium supernatant were detected by ELISA. Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol group.
圖1實驗組與對照組培養(yǎng)基上清液IL-2、TNF-α和IFN-γ的水平
Figure 2.Flow cytometry assay of the cell cycle distribution. Mean±SD.n=4.*P<0.05vscontrol group.
圖2實驗組與對照組的細胞周期分布分析
實驗組PBMCs對腎癌細胞的殺傷率隨著效靶比的升高顯著提升;然而隨著效靶比的升高,對照組PBMCs對腎癌細胞的殺傷率升高不明顯。相同效靶比的情況下,實驗組較對照組的殺傷率顯著提升,隨著效靶比從10∶1逐漸提升為40∶1,2組PBMCs對靶細胞的殺傷率都逐漸提升(P<0.05),見圖3。
我們進一步檢測了gardiquimod刺激PBMCs后共培養(yǎng)對腎癌細胞Skp2/p21/p27/p53蛋白水平的影響,結果發(fā)現Skp2蛋白水平在實驗組明顯下降(P<0.05),下降的規(guī)律和細胞增殖指數的變化一致;實驗組p27蛋白水平明顯增加,與Skp2蛋白水平變化規(guī)律相反(P<0.05),而p21和p53無明顯變化,見圖4。
Figure 3.Cytotoxicity of PBMCs to the renal cancer cells at different effector-target ratio. Mean±SD.n=3.△P<0.05vseffector-target ratio 20:1 group;#P<0.05vseffector-target ratio 10∶1 group;*P<0.05vscontrol group.
圖3在不同效靶比時PBMCs對腎癌細胞殺傷率的比較
Figure 4.The protein expression of Skp2, p21, p27 and p53 in the renal cancer cells. Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol group.
圖4各組腎癌細胞表達Skp2、p21、p27和p53蛋白水平的比較
晚期腎癌的治療是泌尿界和腫瘤界研究焦點,主要集中在免疫治療和靶向治療[8-11]。靶向治療藥物普遍價格昂貴,衛(wèi)生經濟學問題已經成為患者可及性的難題[12]。同時,靶向藥物如酪氨酸激酶抑制劑完全緩解率較低,而免疫治療尤其是細胞因子治療可以讓一些患者完全緩解,這源于細胞因子治療與靶向治療機制完全不同[2]。靶向治療的機制是抑制腫瘤細胞增殖生長,而免疫治療既可抑制細胞增殖,還具有細胞毒作用從而導致腫瘤細胞凋亡。本研究發(fā)現gardiquimod刺激的PBMCs對腎癌細胞有明顯的細胞毒作用和抑制細胞增殖作用。提示TLR7激動劑,如gardiquimod可能是腎癌免疫治療的新型潛在藥物。目前未見類似報道。
探索藥物作用機制對新藥開發(fā)至關重要,課題組前期運用gardiquimod刺激腎癌患者PBMCs,亦發(fā)現多種抗腫瘤細胞因子基因表達增加,包括IFN-β、IFN-γ、TGF-β、TNF-α和NF-κB。同時發(fā)現IL-1β、IL-2、IL-5、IL-6、IL-7、IL-8和IL-10等IL類因子表達增加。研究表明TLR7激動劑可能在腎癌免疫治療中有重要價值[6]。本研究在前期基礎之上,進一步將TLR7激動劑刺激后的腎癌患者PBMCs與來源于該患者術后標本的原代腎癌細胞共培養(yǎng),發(fā)現共培養(yǎng)后培養(yǎng)基上清液內IL-2、TNF-α和IFN-γ確實明顯升高。從基因表達和效應水平雙重驗證了gardiquimod在腎癌中的免疫治療作用。該研究結果在基底細胞癌中也得到部分印證,另一種 TLR7激動劑imiquimod可以誘導PBMCs產生IFN-α和TNF-α,從而有效殺傷基低細胞癌細胞[13]。國內黃雪等[14]采用TLR激動劑在肺腺癌細胞中也取得相似的實驗結果。
免疫治療抑制腎癌細胞增殖的機制目前尚不清楚。細胞增殖最終依賴于細胞周期的進展,它受到細胞周期蛋白依賴激酶抑制劑(cyclin-dependent kinase inhibitors,CDKIs)的負性調節(jié)[15-17],腎癌細胞所含CDKIs分子種類繁多,包括p53、p21和p27等。有研究報道腎癌細胞增殖和Skp/p27有關[18],最新的研究發(fā)現與p21有關[19],也有發(fā)現與p21和p53同時相關的[20]。為澄清學術界的相關爭論,本研究將共培養(yǎng)后的腎癌細胞用于細胞周期檢測和Skp2/p21/p27/p53蛋白水平檢測,發(fā)現gardiquimod刺激PBMCs后可以明顯抑制腎癌細胞增殖,同時隨著Skp2表達下降腎癌細胞周期停滯,而p27顯著增加,p21和p53無明顯變化。實驗結果證實腎癌細胞周期調控可能與Skp2/p27通路有關。至于Skp2/p27通路的上游調控機制,國內李婷婷等[21]提供了新的研究思路——轉錄因子 EB(transcription factor EB,TFEB),將是未來深入研究的方向之一。