外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架對(duì)軟骨缺損的修復(fù)作用

[摘要]目的探討多聚蛋白多糖（Aggrecan）過(guò)表達(dá)載體修飾骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞（BMSCs）來(lái)源外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架對(duì)新西蘭大白兔軟骨缺損的修復(fù)作用。方法培養(yǎng)兔源性BMSCs，流式細(xì)胞儀檢測(cè)第2代BMSCs表面蛋白CD44、CD29、CD34和CD45表達(dá)。慢病毒Aggrecan過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSCs，超速離心法提取外泌體，Western Blot方法檢測(cè)外泌體分子標(biāo)志物CD81和CD63的表達(dá)。構(gòu)建絲素蛋白支架聯(lián)合外泌體復(fù)合物，利用掃描電鏡技術(shù)檢測(cè)絲蛋白支架的結(jié)構(gòu)。利用蘇木精`-伊紅（HE）染色和番紅`-快綠染色檢測(cè)新西蘭大白兔軟骨缺損模型中軟骨結(jié)構(gòu)。結(jié)果第2代BMSCs表面蛋白CD44和CD29表達(dá)分別為60.2%和58.3%，CD34和CD45表達(dá)分別為3.4%和2.6%。慢病毒Aggrecan過(guò)表達(dá)載體轉(zhuǎn)染效率為（95±2）%。掃描電鏡觀察顯示，外泌體為直徑40～100 nm雙層膜的膜狀結(jié)構(gòu)。Western Blot檢測(cè)顯示，外泌體可以表達(dá)分子標(biāo)志物CD81和CD63。HE染色和番紅`-快綠染色結(jié)果顯示，Aggrecan過(guò)表達(dá)載體修飾BMSCs分泌的外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架對(duì)軟骨缺損的修復(fù)作用明顯優(yōu)于BMSC組和陰性對(duì)照組（F=19.298、12.548，Plt;0.05）。結(jié)論Aggrecan過(guò)表達(dá)載體修飾BMSCs分泌的外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架對(duì)軟骨缺損的修復(fù)具有明顯的促進(jìn)作用，可為骨性關(guān)節(jié)炎治療提供新的思路與方法。

[關(guān)鍵詞]外泌體;間充質(zhì)基質(zhì)細(xì)胞;絲素蛋白支架;骨關(guān)節(jié)炎

[ABSTRACT]ObjectiveTo investigate the effect of exosome derived from Aggrecan overexpression vector`-modified bone marrow mesenchymal stem cells （BMSCs） combined with silk fibroin scaffold in the repair of cartilage defect in New Zealand white rabbits. MethodsRabbit`-derived BMSCs were cultured. Flow cytometry was used to measure the expression of CD44， CD29， CD34， and CD45 on the surface of the second`-generation BMSCs. Lentivirus Aggrecan`-overexpression plasmid was transfected into BMSCs， the exosomes were extracted by ultracentrifugation， and Western blot was used to measure the expression of the biomar`-kers CD81 and CD63. The silk fibroin scaffold`-exosome complexes were constructed， and scanning electron microscopy was used to observe the structure of silk fibroin scaffolds. HE staining and safranine`-fast green staining were used to observe cartilage structure in New Zealand white rabbits with cartilage defect. ResultsThe expression rates of CD44 and CD29 on the surface of the se`-cond`-generation BMSCs were 60.2% and 58.3%， respectively， and the expression rates of CD34 and CD45 were 3.4% and 2.6%， respectively. The transfection efficiency of lentiviral Aggrecan`-overexpression vector was （95±2）%. Scanning electron microscopy showed that the exosome had a double`-membrane structure with a diameter of 40-100 nm. Western blot showed that exosomes expressed the molecular markers CD81 and CD63. HE staining and saffron`-fast green staining showed that exosomes secreted by Aggrecan overexpression vector`-modified BMSCs combined with silk fibroin scaffold had a better effect in repairing cartilage defect than the BMSC group and the negative control group （F=19.298 and 12.548，Plt;0.05）. Conclusionexosomes secreted by Aggrecan overexpression vector`-modified BMSCs combined with silk fibroin scaffold can significantly promote the repair of cartilage defect， which provides new ideas and methods for the treatment of osteoarthritis in clinical practice.

[KEY WORDS]exosome; mesenchymal stromal cells; silk fibroin scaffold; osteoarthritis

骨性關(guān)節(jié)炎（OA）是關(guān)節(jié)外科最常見(jiàn)的疾病，也是目前臨床上的治療難題，其病理機(jī)制主要為軟骨細(xì)胞過(guò)度凋亡和軟骨基質(zhì)降解而導(dǎo)致的軟骨缺損[1`-3]。多聚蛋白多糖（Aggrecan）是軟骨基質(zhì)合成最主要的成分[4`-5]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞（BMSCs）具有多向分化潛能，在特定誘導(dǎo)條件下，可以分化成人體內(nèi)的多種細(xì)胞[6`-8]，如成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞以及神經(jīng)細(xì)胞等[9`-11]。新近研究結(jié)果表明，BMSCs在特定誘導(dǎo)條件下可以轉(zhuǎn)化成成骨細(xì)胞，進(jìn)而促進(jìn)骨與軟骨損傷的修復(fù);而且BMSCs來(lái)源于病人自體，移植后可以避免排斥反應(yīng)，這為臨床上骨缺損的修復(fù)提供了一個(gè)新的思路[12]。本研究利用BMSCs的多分化潛能，構(gòu)建Aggrecan的過(guò)表達(dá)載體轉(zhuǎn)染BMSCs，收集外泌體，聯(lián)合絲素蛋白支架，探討其對(duì)于軟骨缺損的修復(fù)作用，以期尋找最優(yōu)化的治療方案，為OA的治療提供新的思路。

1材料與方法

1.1實(shí)驗(yàn)材料

新西蘭大白兔20只，雌性，年齡為（12.11±3.04）月，體質(zhì)量（5.47±1.01）kg，購(gòu)自山東省濟(jì)南市實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心;胎牛血清購(gòu)自Gibco公司;DMEM、TRIZOL及2.5 g/L的胰酶Trypsin均購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司;氯仿、乙醇（體積分?jǐn)?shù)0.75）及逆轉(zhuǎn)錄試劑盒均購(gòu)自美國(guó)ABI Applied Biosystems公司;Real`-time PCR儀購(gòu)自美國(guó)bio`-rad公司。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1BMSCs分離和培養(yǎng)將兔麻醉后，消毒，鋪巾，利多卡因20 mL局部麻醉，利用骨穿穿刺針采集新鮮骨髓，按1∶3體積比加入含體積分?jǐn)?shù)0.10胎牛血清、100 kU/L青霉素的DMEM細(xì)胞培養(yǎng)液，充分混勻后，移入25 cm2的Hank培養(yǎng)瓶中，差速培養(yǎng)法培養(yǎng)，3 d后去掉培養(yǎng)瓶中的油脂等雜質(zhì)，之后每3 d換1次細(xì)胞培養(yǎng)液。BMSCs細(xì)胞融合率達(dá)70%～80%后進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

1.2.2BMSCs鑒定采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)BMSCs表面蛋白CD29、CD44、CD34和CD45的表達(dá)，采用倒置光學(xué)顯微鏡觀察BMSCs的細(xì)胞形態(tài)。

1.2.3慢病毒Aggrecan過(guò)表達(dá)載體構(gòu)建兔源性Aggrecan基因序列從Pubmed genebank中獲得，序列號(hào)為NW_003159560;大小為40 893 bp（DNA linear CON 23`-JUN`-2016）;按照RNA過(guò)表達(dá)序列的構(gòu)建原則，構(gòu)建Aggrecan過(guò)表達(dá)序列，以環(huán)狀質(zhì)粒pHBLV`-U6`-ZsGreen`-PGK`-Puro作為質(zhì)粒的克隆載體。利用慢病毒轉(zhuǎn)染Aggrecan過(guò)表達(dá)載體。Aggrecan過(guò)表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建和慢病毒的轉(zhuǎn)染均由上海吉?jiǎng)P公司完成。

1.2.4慢病毒細(xì)胞轉(zhuǎn)染取第2代BMSCs，將細(xì)胞接種到6孔板，待融合率為50%時(shí)進(jìn)行慢病毒轉(zhuǎn)染，根據(jù)轉(zhuǎn)染說(shuō)明書操作，轉(zhuǎn)染復(fù)數(shù)（MOI）=50，慢病毒滴度為3×107 mg/L。慢病毒轉(zhuǎn)染效率=熒光下視野細(xì)胞/白光下視野細(xì)胞×100%。

1.2.5外泌體的提取和鑒定采用超速離心法收集BMSCs的外泌體，將Aggrecan過(guò)表達(dá)載體轉(zhuǎn)染72 h 的BMSCs和無(wú)病毒轉(zhuǎn)染的BMSCs，加入無(wú)血清的DMEM培養(yǎng)液，使BMSC的外泌體分泌到培養(yǎng)液中，然后將收集的培養(yǎng)液加入到低溫超速離心機(jī)中，分別設(shè)置轉(zhuǎn)速和時(shí)間為：300 r/min，15 min;2 000 r/min，15 min;10 000 r/min，30 min;100 000 r/min，70 min。收集純凈外泌體，利用掃描電鏡進(jìn)行形態(tài)鑒定。

1.2.6絲素蛋白支架的制備和檢測(cè)利用鹽瀝濾法將2 mL濃度為100 g/L的絲素蛋白溶液灌入24孔板中，加入450～600 μm的NaCl顆粒，室溫風(fēng)干3 d，鹽析法成型后將絲素蛋白支架晾干，修剪成10 mm×10 mm×10 mm大小圓柱狀絲素多孔支架，消毒后備用。利用掃描電鏡檢測(cè)支架結(jié)構(gòu)。

1.2.7實(shí)驗(yàn)分組及處理取20只成年健康新西蘭大白兔，隨機(jī)分為空白組、BMSCs組、陰性對(duì)照組、實(shí)驗(yàn)組，每組5只。各組動(dòng)物用150 g/L水合氯醛靜脈麻醉（3 mL/kg）后，常規(guī)消毒鋪無(wú)菌單，取膝關(guān)節(jié)正中側(cè)切口，逐層切開皮膚、皮下軟組織、淺深筋膜，顯露膝關(guān)節(jié)股骨側(cè)，使用口腔鉆在其軟骨層進(jìn)行鉆孔，形成長(zhǎng)5 mm、寬2 mm、深3 mm的錐形軟骨缺損，制成軟骨缺損模型，生理鹽水沖洗，進(jìn)行相應(yīng)干預(yù)后逐層縫合?？瞻捉M：造模后植入絲素蛋白支架;BMSCs組：造模后植入絲素蛋白支架+BMSCs外泌體復(fù)合物;陰性對(duì)照組：造模后植入絲素蛋白支架+轉(zhuǎn)染空白載體BMSCs外泌體復(fù)合物;實(shí)驗(yàn)組：造模后植入絲素蛋白支架+轉(zhuǎn)染Aggrecan過(guò)表達(dá)載體BMSCs外泌體復(fù)合物。

1.2.8蘇木精`-伊紅（HE）染色和番紅`-快綠染色方法檢測(cè)軟骨缺損兔模型的軟骨結(jié)構(gòu)14 d后，將實(shí)驗(yàn)動(dòng)物處死，取4組新西蘭大白兔軟骨缺損組織行HE染色和番紅`-快綠染液染色，40 g/L多聚甲醛固定30 min;脫鈣處理4周;過(guò)二甲苯Ⅰ處理15 min，二甲苯Ⅱ10 min，二甲苯Ⅲ 10 min;體積分?jǐn)?shù)1.00、0.95、0.90、0.85乙醇梯度處理各5 min;二甲苯Ⅰ15 min，二甲苯Ⅱ 10 min，二甲苯Ⅲ 10 min，體積分?jǐn)?shù)1.00、0.95、0.90、0.85乙醇各處理5 min，自來(lái)水沖洗5 min， HE染液和番紅`-快綠染液染色5 min，封片，倒置光學(xué)顯微鏡觀察。應(yīng)用改良O’Driscoll 評(píng)分系統(tǒng)評(píng)估HE染色結(jié)果，改良Mankin評(píng)分評(píng)估番紅`-快綠染色結(jié)果。

1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

應(yīng)用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析，結(jié)果用±s形式表示，多組數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析方法，組間兩兩比較采用q檢驗(yàn)。Plt;0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2結(jié)果

2.1BMSCs的培養(yǎng)和鑒定

接種48 h后，原代BMSCs開始貼壁，細(xì)胞呈梭形或者多角形;培養(yǎng)至第2代后，細(xì)胞呈旋渦狀或者輻射狀生長(zhǎng)，增殖迅速。流式細(xì)胞儀檢測(cè)顯示，第2代BMSCs表面蛋白CD44和CD29的表達(dá)率分別為60.2%和58.3%，CD34和CD45的表達(dá)率分別為3.4%和2.6%。

2.2慢病毒轉(zhuǎn)染BMSCs效率

慢病毒轉(zhuǎn)染72 h后觀察顯示，慢病毒轉(zhuǎn)染效率較高，為（95.07±2.11）%。

2.3掃描電鏡下外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架復(fù)合體的結(jié)構(gòu)

掃描電鏡下不同視窗觀察顯示，支架表面粗糙、凹凸不平，有利于細(xì)胞黏附和遷移。

2.4外泌體的形態(tài)學(xué)和標(biāo)志物鑒定

掃描電鏡觀察顯示，外泌體為直徑40～100 nm的雙層膜膜狀結(jié)構(gòu)。Western Blot檢測(cè)顯示，外泌體可以表達(dá)分子標(biāo)志物CD81和CD63。

2.5軟骨缺損兔模型軟骨缺損部位HE染色和番紅`-快綠染色觀察

HE染色顯示，空白組軟骨缺損范圍大，炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)多;BMSCs組軟骨缺損范圍較空白組明顯減小;陰性對(duì)照組炎性細(xì)胞減少，支架略有消失;實(shí)驗(yàn)組炎性細(xì)胞明顯減少，支架消失，血管生成。實(shí)驗(yàn)組改良O’Driscoll評(píng)分低于空白組、BMSCs組、陰性對(duì)照組，BMSCs組評(píng)分高于空白組，差異均有顯著性（F=19.298，Plt;0.01）。番紅`-快綠染色結(jié)果顯示，空白組軟骨缺損范圍大，并伴有軟骨下骨硬化;BMSCs組軟骨缺損范圍較空白組明顯減小;實(shí)驗(yàn)組軟骨缺損部位有明顯修復(fù)，且為纖維組織修復(fù)。實(shí)驗(yàn)組改良Makin評(píng)分高于空白組、BMSCs組、陰性對(duì)照組，BMSCs組評(píng)分高于空白組，差異均有顯著性（F=12.548，Plt;0.05）。見(jiàn)表1。

3討論

本研究根據(jù)基因工程和組織工程的原理，以體外培養(yǎng)新西蘭大白兔來(lái)源的BMSCs為研究細(xì)胞，利用siRNA過(guò)表達(dá)技術(shù)構(gòu)建Aggrecan的過(guò)表達(dá)載體，轉(zhuǎn)染BMSCs，提取轉(zhuǎn)染后干細(xì)胞來(lái)源的外泌體，并且通過(guò)構(gòu)建絲素蛋白支架+外泌體復(fù)合體，對(duì)新西蘭大白兔軟骨缺損部位進(jìn)行填充和修補(bǔ)，探討Aggrecan過(guò)表達(dá)載體修飾BMSCs分泌的外泌體對(duì)軟骨缺損的修復(fù)作用，以期為臨床上具有外側(cè)間室軟骨缺損的OA治療提供新的方法。既往研究表明，利用BMSCs復(fù)合異種骨基質(zhì)明膠可以有效修復(fù)大鼠橈骨缺損，提示組織支架可以促進(jìn)BMSCs向骨細(xì)胞轉(zhuǎn)化，進(jìn)而修復(fù)軟骨缺損部位[13`-15]。但是這種方法需要符合特定條件的組織工程支架體系，也就是需要特殊的“土壤”，BMSCs這個(gè)“種子細(xì)胞”才能更好地在其內(nèi)生長(zhǎng)并且分化，但其臨床應(yīng)用的安全性有待進(jìn)一步研究[16`-17]。有研究顯示，利用慢病毒構(gòu)建基因載體轉(zhuǎn)染BMSCs并不影響B(tài)MSCs的表型[18`-21]。另有研究顯示利用基因工程原理，構(gòu)建基因過(guò)表達(dá)的BMSCs也是提高“種子”有效分化的手段[22`-24]。本研究基于該理論，構(gòu)建Aggrecan基因過(guò)表達(dá)質(zhì)粒慢病毒載體轉(zhuǎn)染BMSCs，制作新型“基因種子”，結(jié)果表明，Aggrecan基因過(guò)表達(dá)質(zhì)粒慢病毒載體轉(zhuǎn)染BMSCs具有較高的轉(zhuǎn)染效率，高達(dá)90%以上，可見(jiàn)慢病毒介導(dǎo)Aggrecan基因過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSC是一種高效的轉(zhuǎn)染方法。

外泌體為一種新興的手段，可以作為無(wú)細(xì)胞物質(zhì)提取治療OA的手段之一[25`-28]。有研究結(jié)果顯示，在一定條件下，BMSCs可以促進(jìn)軟骨細(xì)胞分化[29]，然而具體的作用機(jī)制未知。本研究利用超高速離心的方法，提取Aggrecan基因過(guò)表達(dá)質(zhì)粒慢病毒載體轉(zhuǎn)染BMSCs來(lái)源的外泌體，并且利用組織工程原理，構(gòu)建絲素蛋白支架，聯(lián)合外泌體，構(gòu)建外泌體+絲素蛋白支架體系。進(jìn)而將基因修飾后干細(xì)胞來(lái)源外泌體與組織工程支架相結(jié)合，通過(guò)掃描電鏡觀察外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架復(fù)合體的結(jié)構(gòu)，可觀察到支架表面粗糙、凹凸不平，有利于細(xì)胞黏附和遷移。另外，我們還利用新西蘭大白兔構(gòu)建膝關(guān)節(jié)軟骨缺損模型，應(yīng)用外泌體+絲素蛋白支架復(fù)合體對(duì)軟骨缺損部位進(jìn)行填充和修復(fù)，HE染色和番紅`-快綠染色對(duì)軟骨缺損部位進(jìn)行觀察，結(jié)果表明，實(shí)驗(yàn)組改良O’Driscoll評(píng)分低于空白組、BMSCs組、陰性對(duì)照組，實(shí)驗(yàn)組改良Makin評(píng)分高于空白組、BMSCs組、陰性對(duì)照組，差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異，說(shuō)明外泌體+絲素蛋白支架復(fù)合體可以對(duì)軟骨缺損部位進(jìn)行更有效的修復(fù)。

綜上所述，Aggrecan過(guò)表達(dá)載體修飾BMSCs分泌的外泌體聯(lián)合絲素蛋白支架復(fù)合體可以對(duì)軟骨缺損部位進(jìn)行有效的修復(fù)，可以為臨床上OA治療提供新的思路與方法。

[參考文獻(xiàn)]

[1]MANIAR K H， JONES I A， GOPALAKRISHNA R A. Lo`-wering side effects of NSAID usage in osteoarthritis： recent attempts at minimizing dosage[J]. "Expert Opinion on Pharmacotherapy， 2018，19（2）：93`-102.

[2]GRAESSEL S， MUSCHTER D. Do neuroendocrine peptides and their receptors qualify as novel therapeutic targets in os`-teoarthritis[J]？ "International Journal of Molecular Sciences， 2018，19（2）：367`-371.

[3]OSAWA Y， SEKI T， TAKEGAMI Y， et al. Cementless total hip arthroplasty for osteonecrosis and osteoarthritis produce similar results at ten years follow`-up when matched for age and gender[J]. "International Orthopaedics， 2018，42（7， SI）：1683`-1688.

[4]HUI Tianqian， ZHOU Yachuan， WANG Tingyu， et al. Activation of beta`-catenin signaling in aggrecan`-expressing cells in temporomandibular joint causes osteoarthritis`-like defects[J]. "International Journal of Oral Science， 2018，10（2）：13`-17.

[5]ZHANG Zhao， LI Xiaofei， HUANG Heng， et al. Cross`-coupling effects of silencing of cyclooxygenase`-2 （COX`-2）/aggrecanase`-1 and over`-expressed insulin`-like growth factor 1 （IGF`-1） in an osteoarthritis animal model[J]. "Medical Science Monitor， 2017，23（7）：5302`-5310.

[6]馮笑，韓絮，張亞，等. 與軟骨細(xì)胞共培養(yǎng)促進(jìn)BMSCs分化為軟骨細(xì)胞[J]. "江蘇大學(xué)學(xué)報(bào)（醫(yī)學(xué)版）， 2017，27（5）：403`-407.

[7]阿勒泰別克·鬧乎旦，張玉玲，白廣超，等. Wnt因子聯(lián)合BMP`-7誘導(dǎo)BMSCs向成骨分化的研究[J]. "石河子大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版）， 2017，35（1）：113`-118.

[8]薄建成，張海寧，杜青峰，等. 介導(dǎo)pcDNA`-IGF`-1質(zhì)粒轉(zhuǎn)染骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞兩種方法比較[J]. "青島大學(xué)醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào)， 2016，52（5）：505`-507，511.

[9]王穎，張雷，周詠，等. miR`-21誘導(dǎo)犬BMSCs骨向分化的體外實(shí)驗(yàn)研究[J]. "安徽醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)， 2017，52（9）：1318`-1323.

[10]徐亮，陶樹清，文剛，等. RhoA/ROCK信號(hào)通路在骨質(zhì)疏松大鼠BMSCs成骨分化中的研究[J]. "中國(guó)骨質(zhì)疏松雜志， 2017，23（11）：1415`-1419.

[11]亓俊華，吳梅，徐祥，等. TNF`-α對(duì)小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞免疫抑制作用影響[J]. "青島大學(xué)醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào)， 2015，51（2）：169`-171，174.

[12]黃勇，吳華拉，馬琳，等. γ`-分泌酶抑制劑阻斷Notch信號(hào)通路對(duì)BMSCs向肺泡上皮細(xì)胞分化的影響[J]. "基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué)， 2017，36（5）：1727`-1731.

[13]陳能，邵云峰，劉儻，等. 帶部分松質(zhì)骨小牛皮質(zhì)骨復(fù)合骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞植入兔體內(nèi)成骨及骨形態(tài)發(fā)生蛋白2的表達(dá)[J]. "中國(guó)組織工程研究， 2017，21（17）：2684`-2689.

[14]劉天丹，張保朝，郝明亮. 膠原蛋白`-明膠復(fù)合支架材料修復(fù)周圍神經(jīng)缺損[J]. "中國(guó)組織工程研究， 2017，21（2）：286`-290.

[15]陶旋，李強(qiáng)，李詩(shī)鵬，等. 慢病毒介導(dǎo)人骨形態(tài)發(fā)生蛋白2/骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞/脫鈣骨基質(zhì)修復(fù)股骨大段缺損[J]. "中國(guó)組織工程研究， 2018，22（9）：1338`-1343.

[16]張志勇，于光屹，陶丹丹，等. 應(yīng)用骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞復(fù)合關(guān)節(jié)軟骨脫細(xì)胞基質(zhì)修復(fù)兔軟骨缺損的實(shí)驗(yàn)研究[J]. "中國(guó)醫(yī)藥指南， 2017，15（22）：53`-54.

[17]姜良斌，韋標(biāo)方，馮志，等. 人脫細(xì)胞羊膜與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞復(fù)合體修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨缺損[J]. "中國(guó)組織工程研究， 2017，21（26）：4113`-4118.

[18]SONG Jialin， ZHENG Wei， CHEN Wei， et al. Lentivirus`-mediated microRNA`-124 gene`-modified bone marrow mesenchymal stem cell transplantation promotes the repair of spinal cord injury in rats[J]. "Experimental and Molecular Medicine， 2017，49（5）：1`-9.

[19]AN Ke， LIU Huiping， ZHONG Xiaolong， et al. hTERT`-Immortalized bone mesenchymal stromal cells expressing rat galanin via a single tetracycline`-inducible lentivirus system[J]. "Stem Cells Int， 2017， 2017：6082684.

[20]WANG Bangjun， LIAN Kai， LI Jun， et al. Restoration of osteogenic differentiation by overexpression of cannabinoid receptor 2 in bone marrow mesenchymal stem cells isolated from osteoporotic patients[J]. "Experimental and Therapeutic Me`-dicine， 2018，15（1）：357`-364.

[21]DU Xiufan， HUANG Fangli， ZHANG Shujiang， et al. Carboxymethylcellulose with phenolic hydroxyl microcapsules enclosinggene`-modified BMSCs for controlled BMP`-2 release in vitro[J]. "Artificial Cells Nanomedicine And Biotechnology， 2017，45（8）：1`-14.

[22]LU Yao， GAO Hui， ZHANG Man， et al. Glial cell line`-derived neurotrophic factor`-transfected placenta`-derived versus bone marrow`-derived mesenchymal cells for treating spinal cord injury[J]. "Medical Science Monitor， 2017，23（1）：1800`-1811.

[23]ZENG Yanling， ZHENG Hao， CHEN Qiuru， et al. Bone marrow`-derived mesenchymal stem cells overexpressing MiR`-21 efficiently repair myocardial damage in rats[J]. "Oncotarget， 2017，8（17）：29161`-29173.

[24]SUN Bingyin， ZHAO Baoxiang， ZHU Jieying， et al. Role of TGF`-beta 1 expressed in bone marrow`-derived mesenchymal stem cells in promoting bone formation in a rabbit femoral defect model[J]. "International Journal of Molecular Medicine， 2018，42（2）：897`-904.

[25]ZHAO Na， ZENG Li， LIU Yang， et al. DLX3 promotes bone marrow mesenchymal stem cell proliferation through H19/miR`-675 axis[J]. "Clinical Science， 2017，131（22）：2721`-2735.

[26]KAMERKAR S， LEBLEU V S， SUGIMOTO H， et al. Exosomes facilitate therapeutic targeting of oncogenic KRAS in pancreatic cancer[J]. "Nature， 2017，546（7659）：498`-503.

[27]PAN Lei， LIANG Wei， FU Min， et al. Exosomes`-mediated transfer of long noncoding RNA ZFAS1 promotes gastric can`-cer progression[J]. "Journal of Cancer Research and Clinical Oncology， 2017，143（6）：991`-1004.

[28]GUO Shangchun， TAO Shicong， YIN Wenjing， et al. Exosomes derived from platelet`-rich plasma promote the re`-epithelization of chronic cutaneous wounds via activation of YAP in a diabetic rat model[J]. "Theranostics， 2017，7（1）：81`-96.

[29]TAO Shicong， YUAN Ting， ZHANG Yuelei， et al. Exosomes derived from miR`-140`-5p`-overexpressing human synovial mesenchymal stem cells enhance cartilage tissue regeneration and prevent osteoarthritis of the knee in a rat model[J]. "Theranostics， 2017，7（1）：180`-195.