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    Zn2+對PPR蛋白鋅指結(jié)構(gòu)域原核表達(dá)的影響

    2019-04-12 05:35:24吳炳男張?jiān)讫?/span>陸昌瑞
    食品與藥品 2019年2期
    關(guān)鍵詞:鋅指超純水結(jié)構(gòu)域

    吳炳男,陳 麗,張?jiān)讫垼?婷,陸昌瑞

    (東華大學(xué) 化學(xué)化工與生物工程學(xué)院,上海 201600)

    PPR蛋白(pentatricopeptide repeat protein)是由多個以35個氨基酸組成的PPR模體為重復(fù)單位串聯(lián)排列組成的一類蛋白質(zhì)[1],是迄今為止發(fā)現(xiàn)的陸生植物中最大的蛋白質(zhì)家族之一[2-5],參與RNA的剪接、編輯、穩(wěn)定和翻譯等重要生理過程[6]。DYW亞族是PPR蛋白家族中具有RNA編輯功能的一類蛋白質(zhì),從結(jié)構(gòu)上可分為N端PPR串聯(lián)模體和C端E、E+及DYW結(jié)構(gòu)域[7-10]。N端PPR串聯(lián)模體中每兩個PPR模體反向平行形成螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋結(jié)構(gòu),多個螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋結(jié)構(gòu)串聯(lián)排列形成一個凹腔,可與RNA堿基結(jié)合,具有識別底物RNA功能[11-15]。C端的DYW結(jié)構(gòu)域因其尾端具有保守的D-Y-W三肽而得名[1],與RNA編輯過程中胞苷脫氨作用(C-U)有關(guān),在其一級序列中包含HXE、CXXCH兩個典型的鋅指結(jié)構(gòu)序列[16]。在現(xiàn)有文獻(xiàn)報(bào)道中,DYW結(jié)構(gòu)域十分不穩(wěn)定,且溶解度很低。所以通過基因重組方式體外獲得大量、穩(wěn)定的DYW結(jié)構(gòu)域蛋白片段存在很大難度[17]。

    Zn2+通過與鋅指結(jié)構(gòu)位點(diǎn)氨基酸結(jié)合從而穩(wěn)定蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu),當(dāng)去除鋅指結(jié)構(gòu)的Zn2+后,結(jié)構(gòu)變得松散;而重新加入Zn2+之后,鋅指結(jié)構(gòu)又可逐漸恢復(fù)并穩(wěn)定[18]。因此,在一些體外重組蛋白表達(dá)中,通過添加Zn2+可提高相應(yīng)蛋白質(zhì)的穩(wěn)定性,進(jìn)而提高蛋白質(zhì)的產(chǎn)量[19]。本實(shí)驗(yàn)以DYW族PPR蛋白OTP82的鋅指結(jié)構(gòu)域作為研究對象,利用ppSUMO原核表達(dá)系統(tǒng)制備該蛋白,通過在培養(yǎng)過程中添加Zn2+,提高了外源表達(dá)蛋白的穩(wěn)定性,并對Zn2+的作用機(jī)制進(jìn)行了初步探索,驗(yàn)證了Zn2+可在蛋白表達(dá)時直接作用于鋅指結(jié)構(gòu)位點(diǎn),幫助蛋白表達(dá)和折疊,并維持鋅指結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定。

    1 儀器及材料

    1.1 儀器

    JN-02C低溫超高壓連續(xù)流細(xì)胞破碎儀(JNBIO);BIO-DL移液槍(Therom Fisher);5810 R低溫道速離心機(jī)(Eppendorf);Gen Pure UF超純水機(jī)(Therom Fisher);Bio Mate 3S分光光度計(jì)(Therom Fisher);Mini-PROTEAN Tetra小型垂直電泳槽(Bio-Rad);Mini-Sub cell GT水平電泳儀(Bio-Rad);Trans-Blot SD 半干轉(zhuǎn)印槽(Bio-Rad);Chemi DocTM XRS + Image LabTMsoftware(Bio-Rad)。

    1.2 材料

    菌株E.coliRosetta(DE3)、DH5α,ppSUMO表達(dá)載體,基因(otp82-dyw)均為本實(shí)驗(yàn)室自有保存;培養(yǎng)基,限制性內(nèi)切酶,T4 DNA連接酶,Pfu DNA擴(kuò)增聚合酶,質(zhì)粒抽提試劑盒,膠回收試劑盒,Ni-TED親和純化介質(zhì),PCR產(chǎn)物純化試劑盒,卡那霉素,氯霉素,異丙基硫代半乳糖苷(ITPG)等[生工生物工程(上海)]。水為超純水。

    1.3 引物

    引物名稱及序列見表1,由生工生物工程(上海)有限公司合成。

    表1 引物名稱及序列

    2 方法

    2.1 溶液的配制

    2.1.1 抗生素及誘導(dǎo)劑儲存液的配制 取卡那霉素2 g,加入超純水溶解后定容至40 ml。過濾除菌后得到濃度為50 mg/ml的抗生素儲存液;相同方法配制25 mg/ml氯霉素儲存液;1 mol/L誘導(dǎo)劑IPTG儲存液。

    2.1.2 親和純化緩沖液的配制 Buffer A(重懸液):取1 mol/L Tris-HCl儲存液(pH 8.0)20 ml,1 mol/L NaCl儲存液200 ml,1 mol/L 二硫蘇糖醇(DTT)儲存液1 ml,甘油50 ml,混合后加入超純水至800 ml后,調(diào)pH至8.0,超純水定容至1 L。Buffer B(平衡液):取1 mol/L Tris-HCl儲存液(pH 8.0)20 ml,1 mol/L NaCl儲存液200 ml,1 mol/L DTT 儲存液1 ml,甘油50 ml,1 mol/L咪唑儲存液20 ml,混合后加入超純水至800 ml,調(diào)pH至8.0,超純水定容至1 L。Buffer W(漂洗液):取1 mol/L Tris-HCl儲存液(pH 8.0)20 ml,1 mol/L NaCl儲存液200 ml,1 mol/L DTT 儲存液1 ml,甘油50 ml,1 mol/L咪唑儲存液50 ml,混合后加入超純水至800 ml,調(diào)pH至8.0,超純水定容至1 L。Buffer E(洗脫液):取1 mol/L Tris-HCl儲存液(pH 8.0)20 ml,1 mol/L NaCl儲存液200 ml,1 mol/L DTT 儲存液1 ml,甘油50 ml,1 mol/L咪唑儲存液250 ml,混合后加入超純水至800 ml,調(diào)pH至8.0,超純水定容至1 L。

    2.2 克隆構(gòu)建、定點(diǎn)突變與菌株保存

    2.2.1 表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建 取模板基因(otp82-dyw)質(zhì)粒1 μl,加入濃度為10 μmol/ml的上下游引物Primer F、Primer R各1 μl,然后加入5 μl 10×PCR Buffer及1 μl dNTP和1 μl Pfu酶,用水補(bǔ)齊至50 μl,進(jìn)行PCR反應(yīng)(95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃ 30 s、55 ℃ 30 s、72 ℃ 30 s,35個循環(huán);最終延伸10 min)。用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,并用PCR產(chǎn)物純化試劑盒純化PCR產(chǎn)物。利用限制性內(nèi)切酶BamH I、Xho I酶切PCR產(chǎn)物及ppSUMO載體(37 ℃,3 h),并采用膠回收試劑盒回收酶切產(chǎn)物。使用T4 DNA連接酶將酶切后的載體與插入片段連接起來(16 ℃,過夜),并轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,在含卡那霉素的抗性平板上過夜培養(yǎng)。挑取平板上的單克隆菌落,提取質(zhì)粒并測序鑒定。

    2.2.2 定點(diǎn)突變 取野生型基因序列(otp82-dyw)為模板,將突變引物Primer-M1F與下游引物Primer R各1 μl加入PCR反應(yīng)體系中進(jìn)行PCR反應(yīng)(95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃ 30 s、55 ℃ 30 s、72 ℃ 30 s,35個循環(huán);最終延伸10 min)。用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,得到突變株M1基因片段。將突變引物(Primer-M2F、Primer R或Primer F、Primer-M1R)各1 μl加入PCR反應(yīng)體系中進(jìn)行PCR反應(yīng),條件同上。然后將得到的兩組產(chǎn)物等比例混合后,取2 μl作為模板,利用引物Primer F/R各1 μl進(jìn)行PCR反應(yīng),得到突變株M2基因片段。然后利用相同方法構(gòu)建表達(dá)克隆,并進(jìn)行測序。

    2.2.3 轉(zhuǎn)化及菌種保存 將測序正確的表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入Rosetta(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中,經(jīng)涂板37 ℃過夜培養(yǎng)后,挑取單克隆菌落37 ℃過夜培養(yǎng),得到表達(dá)單克隆菌株。將培養(yǎng)好的菌液加入等體積80%甘油后,-80 ℃保存。

    2.3 外源蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)與純化

    將37 ℃過夜培養(yǎng)的表達(dá)克隆菌株菌液按1:100的比例接入卡那霉素及氯霉素雙抗性LB培養(yǎng)基中,37 ℃,225 r/min進(jìn)行培養(yǎng)。OD600=0.6時加入IPTG至終濃度為0.1 mmol/L,16 ℃,225 r/min,繼續(xù)培養(yǎng)過夜。5000 r/min離心收集菌體,加入Buffer A重懸(重懸菌液濃度為10%)。將菌體重懸液高壓勻漿破碎3次,條件為4 ℃,1300 MPa。細(xì)胞勻漿液20 000 r/min速離心,收集上清。采用Ni-TED進(jìn)行目標(biāo)蛋白的親和純化。首先,重力柱中的親和純化介質(zhì)用5倍柱體積的Buffer B平衡。后加入上清,使上清流經(jīng)親和介質(zhì)2次。之后用30倍柱體積的Buffer W漂洗。最后用5倍柱體積的Buffer E洗脫目標(biāo)蛋白。各個步驟留取蛋白樣品進(jìn)行Bradford法濃度檢測及SDS-PAGE、Western-Blot檢測。

    2.4 快速誘導(dǎo)表達(dá)

    將37 ℃過夜培養(yǎng)的表達(dá)克隆菌株菌液按1:100的比例接入LB培養(yǎng)基中,37 ℃,225 r/min進(jìn)行培養(yǎng)。當(dāng)OD600=0.6時取1 ml培養(yǎng)液留樣。之后加入IPTG至終濃度為0.1 mmol/L,37 ℃,225 r/min誘導(dǎo)3 h。取1 ml培養(yǎng)液留樣進(jìn)行SDS-PAGE檢測。

    2.5 表達(dá)菌株加Zn2+培養(yǎng)

    將37 ℃過夜培養(yǎng)的表達(dá)克隆菌株菌液按1:100的比例接入卡那霉素及氯霉素雙抗性LB培養(yǎng)基中,37 ℃,225 r/min進(jìn)行培養(yǎng)。當(dāng)OD600=0.6時加入IPTG溶液至終濃度為0.1 mmol/L,并加入ZnCl2溶液至終濃度分別為0,0.125,0.25,0.375,0.5,1 mmol/L。16 ℃,225 r/min,繼續(xù)培養(yǎng)過夜。5000 r/min離心收集菌體備用。

    2.6 親和純化

    將同一份含Zn2+的上清分成3等份,并在其中加入EDTA使其終濃度分別為0,10,20 mmol/L。將含不同濃度EDTA的上清分別用1 ml Ni-TED(EDTA耐受型)親和純化介質(zhì)進(jìn)行純化,并對蛋白樣品進(jìn)行SDS-PAGE檢測。

    2.7 Zn2+作用時間探索

    分別在培養(yǎng)、誘導(dǎo)及細(xì)胞破碎時添加Zn2+至終濃度為1 mol/L。高壓破碎細(xì)胞后,14 000 r/min、4 ℃離心1 h。取上清留取樣品進(jìn)行SDS-PAGE檢測。

    2.8 不同二價離子作用對比

    將37 ℃過夜培養(yǎng)的表達(dá)克隆菌株菌液按1:100的比例接入卡那霉素及氯霉素雙抗性LB培養(yǎng)基中,37 ℃,225 r/min進(jìn)行培養(yǎng)。OD600=0.6時加入IPTG溶液至終濃度為0.1 mmol/L,并分別加入ZnCl2、MnCl2及NiSO4溶液至終濃度為1 mmol/L。16 ℃,225 r/min,繼續(xù)培養(yǎng)過夜。取全細(xì)胞留樣,進(jìn)行SDS-PAGE及Western-Blot檢測。

    3 結(jié)果

    3.1 不同濃度Zn2+對鋅指結(jié)構(gòu)蛋白穩(wěn)定性的影響

    通過分子克隆技術(shù)構(gòu)建蛋白表達(dá)質(zhì)粒ppSUMOOTP82-DYW質(zhì)粒(ppSUMO-OD)。經(jīng)誘導(dǎo)表達(dá)得到目的蛋白His-SUMO-OTP82-DYW(HSOD)。其理論相對分子質(zhì)量(Mr)為21.8×103,目的蛋白示意圖見圖1 A,蛋白中含保守的鋅指結(jié)構(gòu)位點(diǎn)HXE、CXXCH,并在目的蛋白N端添加His-SUMO融合標(biāo)簽,用于目的蛋白的表達(dá)及純化。

    誘導(dǎo)表達(dá)實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖1 B、C。不添加Zn2+時,全細(xì)胞樣品中目的蛋白降解嚴(yán)重。添加Zn2+后,目的蛋白降解情況被抑制,目的蛋白穩(wěn)定性隨Zn2+濃度的提高而提高。當(dāng)Zn2+濃度達(dá)到1 mmol/L時,目的蛋白最為穩(wěn)定。Zn2+濃度超過1 mmol/L后,表達(dá)菌株生長受到明顯抑制,Zn2+濃度超過1.5 mmol/L后,表達(dá)菌株生長停滯。圖1 D、E表明Zn2+同樣可增加上清中可溶性目的蛋白的穩(wěn)定性。綜上,Zn2+可有效提高鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的穩(wěn)定性。

    圖1 Zn2+對鋅指結(jié)構(gòu)蛋白穩(wěn)定性的影響

    3.2 Zn2+對目的蛋白親和純化效果的影響

    通過添加Zn2+,目的蛋白的穩(wěn)定性得到了明顯提升。然而高濃度的Zn2+會影響組氨酸標(biāo)簽(6×His)與親和介質(zhì)的親和能力,使柱結(jié)合效率降低,需添加金屬離子螯合劑EDTA去除過量的Zn2+,從而提高柱結(jié)合效率。結(jié)果見圖2。由圖2可見,不添加EDTA的洗脫液樣品中沒有出現(xiàn)目標(biāo)蛋白條帶,證明目的蛋白在高濃度的Zn2+存在時難以與親和介質(zhì)結(jié)合;添加EDTA后,目標(biāo)蛋白與親和介質(zhì)的結(jié)合效率明顯提高,洗脫液樣品中出現(xiàn)明顯目的蛋白條帶,且EDTA濃度為10 mmol/L時結(jié)合效果及純化效果最佳;EDTA濃度達(dá)到20 mmol/L 時,因過量EDTA的競爭性抑制作用,導(dǎo)致目的蛋白與Ni2+的結(jié)合能力降低。因此,上清中添加10 mmol/L的EDTA可有效地增加目的蛋白的親和純化效率。

    圖2 Zn2+對目的蛋白親和純化效果的影響

    3.3 最優(yōu)條件下融合蛋白親和純化效果

    根據(jù)上述實(shí)驗(yàn)結(jié)論,確定誘導(dǎo)表達(dá)時Zn2+添加濃度為1.0 mmol/L;親和純化時上清液中EDTA添加濃度為10 mmol/L。在此條件下,進(jìn)行了融合蛋白HSOD誘導(dǎo)表達(dá)及親和純化實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,融合蛋白的降解情況得到了明顯抑制。蛋白純度及純化效率也有了明顯提高(見圖3)。利用考馬斯亮藍(lán)染色后進(jìn)行灰度分析,得蛋白純度約63%。經(jīng)計(jì)算得到目標(biāo)蛋白得率為每升菌液7.96 mg。

    圖3 最優(yōu)條件下目的蛋白的親和純化效果

    3.4 Zn2+穩(wěn)定鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的機(jī)制初探

    發(fā)現(xiàn)Zn2+可明顯提高OTP82蛋白DYW鋅指結(jié)構(gòu)域的穩(wěn)定性之后,對Zn2+添加時間、Zn2+作用位點(diǎn)及Zn2+作用的特異性進(jìn)行了初步探索。

    3.4.1 Zn2+作用于蛋白表達(dá)過程 Zn2+作用時間點(diǎn)的探索實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖4,在全細(xì)胞樣品中,相比于不添加Zn2+的樣品,培養(yǎng)及誘導(dǎo)時添加Zn2+均可顯著提高目的蛋白穩(wěn)定性;而在上清樣品中,破碎時添加Zn2+后,目的蛋白的降解情況并未得到改善。實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明Zn2+在鋅指結(jié)構(gòu)蛋白表達(dá)時幫助蛋白表達(dá),并穩(wěn)定其結(jié)構(gòu)。

    圖4 Zn2+作用時間點(diǎn)實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    圖5 不同二價離子對鋅指結(jié)構(gòu)蛋白穩(wěn)定性的影響

    3.4.2 不同二價離子對鋅指結(jié)構(gòu)蛋白穩(wěn)定性的影響Zn2+,Mn2+及Ni2+作用結(jié)果見圖5。雖然Zn2+、Mn2+及Ni2+同為過渡金屬的二價離子,但添加Mn2+、Ni2+均無法穩(wěn)定目的蛋白,僅Zn2+可有效提高鋅指結(jié)構(gòu)蛋白穩(wěn)定性。

    3.4.3 Zn2+作用位點(diǎn)的探索 對兩個保守鋅指位點(diǎn)進(jìn)行丙氨酸突變得到突變株M1(HXE→AXA)、M2(CXXCH→AXXAA),見圖6A。誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果見圖6 B、C。全細(xì)胞樣品中,由于突變株破壞了部分鋅指結(jié)構(gòu),Zn2+對蛋白質(zhì)的穩(wěn)定性影響要明顯弱于野生型菌株。因此,Zn2+只可有效地穩(wěn)定鋅指結(jié)構(gòu)完整的蛋白質(zhì)。綜上所述,Zn2+作用于鋅指結(jié)構(gòu)。

    圖6 Zn2+作用位點(diǎn)的探索

    4 討論

    鋅指蛋白作為生物界中最重要的功能性蛋白之一,一直是科學(xué)界的研究熱點(diǎn)。如何對其進(jìn)行大量、穩(wěn)定的體外表達(dá)純化也成為鋅指蛋白的結(jié)構(gòu)及功能研究的前提。本文以O(shè)TP82蛋白中的保守鋅指結(jié)構(gòu)域?yàn)檠芯繉ο螅C明Zn2+在鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的體外表達(dá)過程中扮演重要角色。這為其他鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的體外表達(dá)提供了重要參考及依據(jù)。

    研究中通過添加適量的EDTA,消除過量Zn2+對組氨酸標(biāo)簽親和純化效率的負(fù)面影響。這也為其他鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的組氨酸標(biāo)簽親和純化或其他需添加金屬離子的蛋白質(zhì)組氨酸標(biāo)簽親和純化過程的優(yōu)化提供新的思路。

    Zn2+的作用機(jī)制實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,Zn2+濃度及鋅指結(jié)構(gòu)的完整性都直接影響鋅指蛋白的穩(wěn)定性。這也說明在鋅指蛋白的表達(dá)及純化體系中,需添加適量的Zn2+以保持蛋白的穩(wěn)定。同時,也提示Zn2+在鋅指蛋白行使功能方面具有重要作用。

    鋅指蛋白是真核生物中最豐富的轉(zhuǎn)錄因子之一,在基因的表達(dá)調(diào)控、細(xì)胞分化、胚胎發(fā)育等生命過程中發(fā)揮重要作用。而鋅指蛋白的結(jié)構(gòu)及功能研究又依賴于體外高效、穩(wěn)定的表達(dá)、純化。因此,本文實(shí)驗(yàn)結(jié)果對于鋅指蛋白的結(jié)構(gòu)及功能方面的研究有重要的借鑒意義。

    5 結(jié)論

    本文實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在蛋白原核表達(dá)體系中添加Zn2+可有效提高OTP82蛋白鋅指結(jié)構(gòu)域的穩(wěn)定性。親和純化條件優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果證實(shí),細(xì)胞上清中添加10 mmol/L EDTA可有效提高融合蛋白HSOD的組氨酸標(biāo)簽與親和介質(zhì)的結(jié)合效率。Zn2+對鋅指結(jié)構(gòu)蛋白穩(wěn)定性影響機(jī)制探究結(jié)果顯示,Zn2+作用于鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的表達(dá)過程,并穩(wěn)定其高級結(jié)構(gòu)。與Mn2+等二價離子的對比實(shí)驗(yàn)證實(shí),只有Zn2+可有效提高鋅指結(jié)構(gòu)蛋白的穩(wěn)定性。蛋白中保守的鋅指結(jié)構(gòu)位點(diǎn)突變后,Zn2+無法顯著提升鋅指蛋白的穩(wěn)定性,表明Zn2+通過鋅指結(jié)構(gòu)位點(diǎn)提高鋅指結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。

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