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    鹿骨膠水解物抗氧化活性及對(duì)H2O2損傷PC12細(xì)胞保護(hù)作用的研究

    2019-04-11 06:32:50郭冰潔苑廣信安麗萍杜培革徐廣宇
    安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年7期
    關(guān)鍵詞:多肽清除率水解

    郭冰潔,苑廣信,張 靜,安麗萍,杜培革,徐廣宇,韓 笑

    (北華大學(xué)藥學(xué)院,吉林吉林 132013)

    鹿骨為鹿科動(dòng)物梅花鹿(Cervushortulorum)或馬鹿(Cervuselaphus)的骨骼,營養(yǎng)物質(zhì)豐富,含有大量的蛋白質(zhì)、磷脂質(zhì)、磷蛋白、維生素,還含有鈣、鎂、鐵、鋅、鉀等微量元素,參與人體的多種代謝,具有重要的藥理作用[1]?!侗静菥V目》中記載:“鹿骨,甘,微熱,無毒,續(xù)斷傷,補(bǔ)骨除風(fēng);燒灰水服,治小兒洞注下痢[2]”。另有記載:“虎難捕,可用鹿骨代之。鹿食草,其骨性溫良而悠長”。大量研究證實(shí),鹿骨多肽可治療骨質(zhì)疏松,延緩衰老,且對(duì)人體無毒副作用,具有水溶性強(qiáng)、活性高等特點(diǎn),可作為天然活性蛋白多肽的可靠來源。

    大量研究證實(shí),活性氧(ROS)自由基與衰老和許多慢性疾病有關(guān)[3],正常情況下,ROS自由基的產(chǎn)生和清除處于動(dòng)態(tài)平衡,適量的自由基可促進(jìn)代謝,過量會(huì)引起人體自身的氧化應(yīng)激損傷,久之成疾[4]。·OH、O2·-自由基是機(jī)體有氧代謝的中間體,在體內(nèi)存在狀態(tài)不穩(wěn)定[5],易引起周圍組織脂質(zhì)過氧化反應(yīng),破壞細(xì)胞的膜蛋白,損傷細(xì)胞器結(jié)構(gòu)和功能,進(jìn)而使蛋白質(zhì)、脂質(zhì)和DNA等生物大分子受到不同程度的損傷[6]。該研究采用熱水抽提法提取鹿骨中的蛋白質(zhì),骨膠即為骨膠原蛋白的熱提取產(chǎn)物,并用酶進(jìn)行水解,對(duì)其體外抗氧化活性及對(duì)正常PC12細(xì)胞的影響和H2O2氧化損傷PC12細(xì)胞的保護(hù)作用進(jìn)行探究。

    1 材料與方法

    1.1材料與試劑鹿骨購自吉林市龍?zhí)渡较蜿柭箯S;PC12細(xì)胞,北華大學(xué)藥理教研室贈(zèng)送。胃蛋白酶(600~1 000 U/mg)、胰蛋白酶(250 U/mg),購自北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)購自東京化成工業(yè)株式會(huì)社;VC購自天津市永大化學(xué)試劑有限公司;DMEM培養(yǎng)基購自HyClone公司;胎牛血清購自杭州天杭生物科技股份有限公司;BCA試劑盒、Folin-酚試劑盒均購自北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司;其他試劑均為分析純,水為實(shí)驗(yàn)室自制超純水。

    1.2儀器與設(shè)備ATY224型電子天平,日本SHIMADZU;Five Easy plus 型pH計(jì),瑞士METTLER TOLEDO;冷凍干燥機(jī),美國SP Scientific-Vritis BenchTop Pro;Infinite M200型酶標(biāo)儀,瑞士TECAN; Thermo Mixer C型恒溫振蕩器,德國EPPENDORF; UV-2550型紫外分光光度計(jì),日本SHIMADZU。

    1.3方法

    1.3.1工藝流程。新鮮鹿骨→粉碎→脫脂→脫鈣→干燥→提取→鹿骨膠粗提液→胃酶酶解→胰酶酶解→堿性蛋白酶酶解→終止酶解→離心取上清→凍干得鹿骨膠水解物(HDBG)干粉。

    1.3.2鹿骨膠水解物制備。

    1.3.2.1預(yù)處理。將鹿骨剔去肉和筋膜,粉碎過40目篩,石油醚浸泡24 h,常溫?fù)]干,0.5 mol/L HCl脫鈣,每3 h換一次酸液,干燥得脫脂脫鈣骨粉。

    1.3.2.2鹿骨多肽制備。①取預(yù)處理鹿骨,于121 ℃ 0.15 MPa ,料液比為1∶10條件下提取2 h,合并2次提取液,減壓濃縮,凍干得鹿骨膠干粉。②鹿骨膠溶液(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%),胃蛋白酶37 ℃,pH=2.0酶解4 h,胰蛋白酶酶解37 ℃,pH=8.0酶解4 h,酶底比均為1∶500(m∶V),堿性蛋白酶45 ℃,pH=10.0酶解2 h,酶底比為1∶200(m∶V),沸水浴10 min終止酶解,10 000 r/min離心20 min上清即為鹿骨膠水解液(HDBG),凍干得鹿骨膠水解物干粉。

    1.3.3鹿骨蛋白含量測(cè)定。采用凱氏定氮法(參照GB/T 5009.5—2010)測(cè)定蛋白質(zhì),計(jì)算公式為:

    X=[(V1-V2)×c×0.014 0]/(m×V3/100)×F×1 000

    (1)

    式中,X為蛋白質(zhì)含量(g/kg);V1為樣品消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定液體積(mL);V2為空白組消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定液體積(mL);V3為吸取樣品消化液體積(mL);c為1.0 mL鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定液濃度(mol/L);0.014 0為1.0 mL鹽酸標(biāo)準(zhǔn)滴定液相當(dāng)?shù)牡馁|(zhì)量;m為樣品質(zhì)量;F為換算系數(shù)。

    1.3.4抗氧化試驗(yàn)。

    1.3.4.1DPPH自由基清除率測(cè)定[3,7-9]。用95%乙醇配制0.2 mmol/L DPPH,避光保存,備用。吸取不同濃度的HDBG 100 μL樣品于96孔板中,加入100 μL DPPH溶液,充分搖勻,25 ℃孵箱反應(yīng)30 min,517 nm處測(cè)定吸光度值A(chǔ)i,相同條件下,樣品與95%乙醇吸光度值A(chǔ)j,水與DPPH吸光度值A(chǔ)0,水與95%乙醇吸光度值A(chǔ)空白;VC為陽性對(duì)照;每樣品平行測(cè)定3次,取均值。清除率公式為:

    (2)

    1.3.4.2羥自由基(·OH)清除率測(cè)定[9-10]。該研究采用Fenton體系,H2O2與Fe2+混合產(chǎn)生·OH,在體系內(nèi)加入水楊酸產(chǎn)生·OH并生成有色物質(zhì),該物質(zhì)在510 nm下有最大吸收。用95%乙醇配制10 mmol/L水楊酸溶液,避光保存;去離子水配制10 mmol/L FeSO4溶液,10 mmol/L H2O2溶液,備用。依次吸取各溶液50 μL于96孔板,加入50 μL不同濃度HDGB,避光搖勻10 min,加入50 μL H2O2啟動(dòng)反應(yīng),37 ℃孵箱反應(yīng)30 min,510 nm處測(cè)定吸光度值A(chǔ)i,相同條件下,樣品+FeSO4+水楊酸+水吸光度值A(chǔ)j;水+FeSO4+水楊酸+ H2O2吸光度值A(chǔ)0;VC為陽性對(duì)照;每樣品平行測(cè)定3次,取均值。清除率公式為:

    (3)

    1.3.5HDBG對(duì)H2O2誘導(dǎo)PC12細(xì)胞氧化損傷的修復(fù)作用。

    1.3.5.1樣品配制。取HDBG凍干粉30 mg用DMEM培養(yǎng)基定容至2 mL,分別稀釋至1 500、750 、250 μg/mL,備用。

    1.3.5.2HDBG對(duì)正常PC12細(xì)胞的影響[11-12]。取對(duì)數(shù)生長期的PC12(8.0×104個(gè)/mL),接種到96孔板中,設(shè)置空白對(duì)照組、正常對(duì)照組和HDBG給藥組(低劑量組250 μg/mL、中劑量組750 μg/mL、高劑量組1 500 μg/mL),HDBG給藥組每孔加入100 μL單細(xì)胞懸液,空白對(duì)照組加100 μL培養(yǎng)液(含10%胎牛血清),每組設(shè)置5個(gè)復(fù)孔,37 ℃,5% CO2培養(yǎng)至細(xì)胞貼壁后,給藥組加不同濃度的HDBG溶液100 μL,其他組每孔加入培養(yǎng)液100 μL。繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,利用MTT法,在490 nm處測(cè)定吸光度值OD,取平均值計(jì)算細(xì)胞活力。

    (4)

    式中,OD0為空白組OD值;OD1為試驗(yàn)組OD值;OD2為對(duì)照組OD值。

    1.3.5.3H2O2誘導(dǎo)PC12細(xì)胞氧化損傷模型的構(gòu)建[13-16]。將對(duì)數(shù)生長期的PC12細(xì)胞(8.0×104個(gè)/mL),接種到96孔板中,設(shè)置空白對(duì)照組、H2O2損傷組(終濃度為100、200、300、400 μmol/L)和正常對(duì)照組;正常對(duì)照組和不同濃度H2O2損傷組每孔加入100 μL細(xì)胞懸液,空白對(duì)照組加100 μL培養(yǎng)液,每組設(shè)置5個(gè)復(fù)孔,37 ℃,5% CO2培養(yǎng)24 h后向損傷組加不同濃度的H2O2溶液100 μL,其他組每孔加入培養(yǎng)液100 μL。在1、2、3、4 h時(shí),吸出舊培養(yǎng)液,加入200 μL新培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后。用MTT法,490 nm處測(cè)定吸光度值A(chǔ),取平均值計(jì)算細(xì)胞活力。細(xì)胞存活力50%左右時(shí)的條件為最佳損傷條件。

    1.3.5.4HDBG對(duì) H2O2損傷PC12細(xì)胞的保護(hù)作用[17-20]。將對(duì)數(shù)生長期的PC12細(xì)胞接種于DMEM培養(yǎng)基中(含10%胎牛血清),37 ℃,5% CO2培養(yǎng)3 d,消化處理,稀釋至8×104cell/mL,每孔100 μL接種于96孔板中,設(shè)置空白組、給藥組、正常對(duì)照組,培養(yǎng)24 h至細(xì)胞貼壁,給藥組加入損傷劑H2O2100 μL,終濃度為200 μmol/L,空白組加入100 μL培養(yǎng)液,恒溫培養(yǎng)3 h后,吸出舊培養(yǎng)基,每孔加入100 μL 新培養(yǎng)液,每樣品設(shè)置4個(gè)復(fù)孔,具體如下:①樣品組。高劑量組,100 μL細(xì)胞+100 μL 1 500 μg/mL HDBG(經(jīng)H2O2損傷);中劑量組,100 μL細(xì)胞+100 μL 750 μg/mL HDBG(經(jīng)H2O2損傷);低劑量組,100 μL細(xì)胞+100 μL 250 μg/mL HDBG(經(jīng)H2O2損傷)。②對(duì)照組,100 μL細(xì)胞+100 μL DMEM培養(yǎng)基(未經(jīng)H2O2損傷)。③空白組,100 μL DMEM培養(yǎng)基+100 μL HDBG。

    加好樣品的96孔板置于細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,每孔加入20 μL MTT(5 mg/mL)后,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育4 h,吸棄孔內(nèi)所有培養(yǎng)基,然后每孔加入150 μL二甲基亞砜(DMSO)振蕩溶解10 min,490 nm測(cè)定OD值。細(xì)胞活力公式為:

    (5)

    式中,OD0為空白組OD值;OD1為試驗(yàn)組OD值;OD2為對(duì)照組OD值。

    1.4數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析每組試驗(yàn)平行測(cè)定3次,結(jié)果以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”的形式表示。 試驗(yàn)結(jié)果用Graphpad Prism 6 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1鹿骨膠水解物含量測(cè)定鹿骨膠是骨膠原蛋白的熱提取產(chǎn)物,該試驗(yàn)中鹿骨膠干粉產(chǎn)率為10.3%,其中蛋白含量為51.2%。因此其水解物主要成分為鹿骨多肽,水解物肽純度493 g/kg。

    2.2鹿骨膠水解物對(duì)DPPH的清除作用由圖1可知,HDBG可有效地清除試驗(yàn)體系中的DPPH自由基,不同濃度的HDBG對(duì)DPPH自由基的清除效果存在差別,當(dāng)質(zhì)量濃度小于10 mg/mL時(shí),隨HDBG濃度增加,清除率迅速升高;在10~30 mg/mL時(shí)清除率與HDBG濃度呈劑量依賴關(guān)系;30 mg/mL時(shí),最大清除率為74.63%,當(dāng)濃度大于30 mg/mL時(shí),清除率增加趨于平緩,其IC50=10.05 mg/mL。

    圖1 鹿骨水解物對(duì)DPPH自由基的清除率Fig.1 The scavenging rate of DPPH free radicals by HDBG

    2.3鹿骨膠水解物對(duì)·OH的清除作用由圖2可知,HDBG對(duì)試驗(yàn)體系中的·OH自由基有顯著的清除作用(P<0.05),不同濃度的HDBG對(duì)·OH自由基的清除效果存在差別,當(dāng)質(zhì)量濃度小于16 mg/mL時(shí),清除率與HDBG濃度呈劑量依賴關(guān)系;當(dāng)濃度大于16 mg/mL時(shí),清除率無顯著增加,在16 mg/mL時(shí)達(dá)最大清除率87.69%,其IC50=4.76 mg/mL。

    圖2 鹿骨水解物對(duì)·OH自由基的清除率Fig.2 The scavenging rate of ·OH by HDBG

    2.4HDBG對(duì)H2O2誘導(dǎo)PC12細(xì)胞氧化損傷的修復(fù)作用

    2.4.1HDBG對(duì)正常PC12細(xì)胞的影響。由圖3可知,當(dāng)給藥濃度為250 μg/mL時(shí),48 h的細(xì)胞活力為111.31%(P<0.05),與對(duì)照組相比具有顯著的差異。給藥濃度為750、1 500 μg/mL時(shí),與對(duì)照組相比,24 h、48 h的細(xì)胞活力均有極顯著(P<0.01)的統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。說明HDBG對(duì)PC12細(xì)胞無毒副作用,1 500 μg/mL時(shí),48 h時(shí),最大細(xì)胞活力達(dá)159.83%。

    注:*、**表示與對(duì)照組相比,差異顯著(P<0.05)、極顯著(P<0.01)Note:*,** indicates that the difference is significant and extremely significant compared with the control group圖3 HDBG對(duì)正常PC12細(xì)胞的影響Fig.3 Effect of HDBG concentration on normal PC12 cell

    2.4.2H2O2誘導(dǎo)PC12細(xì)胞氧化損傷模型的構(gòu)建。由圖4可知,損傷隨著H2O2濃度的升高及時(shí)間的延長,模型表現(xiàn)氧化損傷逐漸加重。當(dāng)200 μmol/L的H2O2損傷3 h時(shí),細(xì)胞活力為52.02%,與正常對(duì)照組相比,有顯著性差異(P<0.05)。因此,模型選用200 μmol/L的H2O2處理PC12細(xì)胞3 h作為細(xì)胞氧化損傷條件。

    圖4 H2O2濃度對(duì)細(xì)胞活力的影響Fig.4 Effect of H2O2 concentration on cell activity

    2.4.3鹿骨膠水解物對(duì)H2O2損傷PC12細(xì)胞的保護(hù)作用。由圖5可知,經(jīng)H2O2損傷后,細(xì)胞活力降為52.29%,與對(duì)照組相比具有顯著(P<0.01)的統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明氧化損傷細(xì)胞模型造模成功。當(dāng)HDBG在250 μg/mL時(shí),PC12細(xì)胞活力無明顯升高;750 μg/mL的濃度下,使細(xì)胞活力增加至73.16%(P<0.05),對(duì)損傷的細(xì)胞具有顯著的保護(hù)作用;當(dāng)HDBG濃度為1 500 μg/mL 時(shí),細(xì)胞活力升至82.43%(P<0.05)。綜上所述,HDBG高、中、低劑量組均可增加細(xì)胞活力,表明不同濃度HDBG可對(duì)氧化損傷的PC12細(xì)胞具有不同程度的保護(hù)作用,且呈明顯的劑量依賴性。

    注:*表示t檢驗(yàn)中,與損傷組比較差異顯著(P<0.05);##表示與對(duì)照組相比差異顯著(P<0.05)Note: * indicates significant difference compared with the injury group (P<0.05) in t test;## indicates significant difference compared with the control group (P<0.05)圖5 HDBG對(duì)PC12的氧化損傷保護(hù)作用Fig.5 Protective effects of HDGB on oxidative injury in PC12

    3 討論與結(jié)論

    ROS自由基過多能直接或間接地引起脂質(zhì)過氧化反應(yīng),損傷細(xì)胞膜、酶、DNA等,使機(jī)體處于氧化應(yīng)激狀態(tài),并引起衰老和各種慢性退行性疾病[21]。如今應(yīng)用的合成抗氧化劑安全尚不可靠,因此,開發(fā)來源安全的食品抗氧化劑具有重要意義。鹿骨膠水解物的抗氧化試驗(yàn)結(jié)果表明,鹿骨膠水解物對(duì)DPPH和·OH均具有良好的清除能力。其中DPPH的IC50值為10.05 mg/mL,·OH的IC50值為4.76 mg/mL。該試驗(yàn)結(jié)果為鹿骨多肽的藥物開發(fā)提供了理論依據(jù)。

    PC12細(xì)胞由大鼠腎上腺嗜鉻細(xì)胞瘤分離得到,在功能和形態(tài)上均與神經(jīng)細(xì)胞相似[22],H2O2誘導(dǎo)PC12神經(jīng)細(xì)胞損傷模型是模擬體內(nèi)自由基誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的過程,因此,可作為多種神經(jīng)性疾病的體外細(xì)胞模型[23-25]。H2O2誘導(dǎo)PC12神經(jīng)細(xì)胞損傷試驗(yàn)結(jié)果表明,鹿骨膠水解物濃度在250 μg/mL時(shí),細(xì)胞活力略高于損傷組,無顯著增加。當(dāng)濃度為750 μg/mL時(shí),對(duì)氧化損傷的PC12細(xì)胞具有顯著的保護(hù)作用,細(xì)胞活力由52.29%上升至73.16%(P<0.05),在濃度1 500 μg/mL時(shí),細(xì)胞活力達(dá)82.43%(P<0.05),HDBG對(duì)正常的PC12細(xì)胞具有增殖作用,說明其無細(xì)胞毒性,對(duì)氧化損傷的PC12細(xì)胞具有保護(hù)作用,且與水解物濃度呈劑量依賴關(guān)系。

    我國是畜牧大國,禽畜骨骼年產(chǎn)量巨大,多數(shù)因不能充分利用造成嚴(yán)重的浪費(fèi),因此動(dòng)物骨膠原蛋白多肽的研究具有深遠(yuǎn)意義。骨骼中大量的優(yōu)質(zhì)蛋白及多肽,對(duì)人體無毒副作用,可作為天然活性蛋白多肽的可靠來源,隨著科學(xué)技術(shù)的發(fā)展,骨多肽勢(shì)必會(huì)成為研究熱點(diǎn)。該研究為鹿骨多肽的功能產(chǎn)品開發(fā)提供依據(jù),鹿骨膠水解物主要成分為多肽,具有良好的抗氧化活性,可預(yù)期鹿骨多肽在抗衰老、抗癌和神經(jīng)退行性疾病相關(guān)的生命系統(tǒng)的氧化損傷中的重要保護(hù)作用, 為鹿骨多肽的進(jìn)一步研究提供了新思路。

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