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    拮抗內(nèi)源性孤啡肽可通過下調(diào)microRNA-1途徑抑制大鼠再灌注性心律失常

    2019-04-01 11:20:44任曉芬王一迪李占峰
    中國藥理學(xué)通報(bào) 2019年4期
    關(guān)鍵詞:室早內(nèi)源性心肌細(xì)胞

    熊 暢,任曉芬,韓 毅,2,王一迪,李占峰

    (1. 山西醫(yī)科大學(xué)麻醉學(xué)系,山西 太原 030000;2. 山西醫(yī)科大學(xué)第二醫(yī)院麻醉科,山西 太原 030001)

    目前,臨床治療急性心肌梗死患者最有效的方式是恢復(fù)梗死區(qū)血運(yùn),然而,在血流再通后可出現(xiàn)缺血/再灌注損傷(ischemia/reperfusion injury, IRI)。再灌注性心律失常(reperfusion arrhythmia, RA)是心肌IRI最重要的臨床表現(xiàn),是目前臨床判斷血流恢復(fù)的指標(biāo)之一,但同時惡性RA也是導(dǎo)致患者預(yù)后不良,甚至死亡的重要原因[1-2]。

    microRNAs是非編碼微小RNA,能夠從轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)心肌離子通道及傳導(dǎo)結(jié)構(gòu)的表達(dá)。研究發(fā)現(xiàn),microRNAs對于心肌細(xì)胞鈉、鉀、鈣等多種離子通道,以及心肌傳導(dǎo)結(jié)構(gòu)如縫隙連接等均能發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。病理?xiàng)l件下,異常表達(dá)的各種微小RNA通過調(diào)控離子通道以及傳導(dǎo)結(jié)構(gòu),引起心肌電重構(gòu)以及結(jié)構(gòu)重構(gòu),直接導(dǎo)致各種心律失常的產(chǎn)生[3-4]。microRNA-1(miR-1)是目前發(fā)現(xiàn)的一種肌肉特異性微小RNA,已有實(shí)驗(yàn)證明心肌缺血狀態(tài)下升高的miR-1能夠抑制GJA1(編碼connexin 43, Cx43)以及KCNJ2(編碼內(nèi)向整流鉀通道的核心亞基kir2.1)基因表達(dá),導(dǎo)致心律失常的發(fā)生[5]。

    孤啡肽(nociceptin/orphanin FQ, N/OFQ)是一種具有神經(jīng)遞質(zhì)功能的內(nèi)源性阿片肽,本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),急性心肌缺血后,心肌組織N/OFQ表達(dá)明顯增多,并且拮抗內(nèi)源性N/OFQ能夠發(fā)揮抗缺血性心律失常作用[6],但其是否參與RA的發(fā)生尚不清楚。本研究擬觀察內(nèi)源性N/OFQ對RA、miR-1及其下游靶點(diǎn)的影響,探討內(nèi)源性N/OFQ對RA的作用及其調(diào)節(jié)機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1實(shí)驗(yàn)動物 SPF級健康成年SD大鼠24只,♂,體質(zhì)量(260±20)g,購自中國人民解放軍軍事科學(xué)研究院實(shí)驗(yàn)動物中心,許可證號:SCXK(軍)2012-0004,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周。動物實(shí)驗(yàn)已通過山西醫(yī)科大學(xué)倫理委員會批準(zhǔn)。

    1.1.2試劑 UFP-101(Tocris Cookson公司);TRIzol(TaKaRa公司);cDNA合成試劑盒(Thermo Scientific公司);SYBR Green qPCR Master Mix(2×)(Fermentas公司);抗Cx43、kir2.1、GAPDH抗體(Abcam公司)。

    1.1.3儀器 AlC-V8小動物呼吸機(jī)(上海澳爾科特公司);RM6240BD電生理信號記錄儀(成都儀器廠);MX3005P實(shí)時熒光定量PCR儀(上海拜力生物科技有限公司);ChemiDocXRS凝膠成像分析系統(tǒng)(Bio-Rad公司)。

    1.2動物模型的建立及分組用隨機(jī)數(shù)字表法分為3組(n=8):假手術(shù)組(Sham組)、缺血/再灌注組(I/R組)和孤啡肽受體拮抗劑UFP-101預(yù)處理組(U+I/R組)。Sham組僅開胸穿線,但不結(jié)扎冠脈;I/R組結(jié)扎左冠狀動脈前降支缺血30 min,隨后再灌注120 min;U+I/R組在再灌注前10 min經(jīng)尾靜脈按1 μL·g-1注射特異性孤啡肽受體拮抗劑UFP-101(10-9mol·L-1),其余2組給予等容量生理鹽水。大鼠稱重后,以質(zhì)量分?jǐn)?shù)為25%的烏拉坦(1.25 g·kg-1)進(jìn)行腹腔注射麻醉,將大鼠仰臥位固定于操作臺上,連接生物信號采集系統(tǒng),記錄標(biāo)準(zhǔn)Ⅱ?qū)?lián)心電圖。氣管切開置入氣管導(dǎo)管,連接小動物呼吸機(jī)施行機(jī)械通氣,呼吸機(jī)潮氣量設(shè)為8 μL·g-1,呼吸頻率70次/min。穩(wěn)定15 min后,在左側(cè)第4肋間隙開胸,以5-0無損傷縫線的彎針從左心耳右緣進(jìn)針,肺動脈圓錐左緣出針以套管結(jié)扎左冠狀動脈前降支。而后可見Ⅱ?qū)?lián)心電圖出現(xiàn)ST段逐漸抬高,并漸與QRS波融合,心肌前壁組織顏?zhàn)兩n白色隨后紫紺,可有心律失常出現(xiàn),提示造模成功。缺血30 min后,松開結(jié)扎線使血管再通(松開套管前10 min經(jīng)尾靜脈給予UFP-101或等量生理鹽水),心外膜出現(xiàn)充血,同時心電圖ST段有所回落,心肌呈再灌注狀態(tài),再灌注120 min后處死大鼠,取缺血區(qū)心肌。

    1.3心律失常統(tǒng)計(jì)及評分對心律失常進(jìn)行評定(Fig 1),記錄再灌注后室性早搏(ventricular ectopic beats, VEB)的發(fā)生個數(shù)(包含單發(fā)室早、室早二聯(lián)律和三聯(lián)律)、室速(ventricular tachycardia, VT)和室顫(ventricular fibrillation, VF)的發(fā)生次數(shù)以及持續(xù)時間,并根據(jù)參考文獻(xiàn)[7]對大鼠心律失常進(jìn)行評分。評分標(biāo)準(zhǔn)如下,0分,共出現(xiàn)<50個VEB(包括室早二聯(lián)律、室早三聯(lián)律);1分,出現(xiàn)≥50個VEB;2分,出現(xiàn)1~5次VT;3分,出現(xiàn)≥ 6次VT;4分,出現(xiàn)1次可逆性VF;5分,出現(xiàn)2~5次可逆性VF;6分,出現(xiàn)不可逆性VF。

    Fig 1 Examples of arrhythmias

    A: Normal ECG; B: VEB; C: Bigeminy; D: Trigeminy; E: ST elevation; F: VT; G: VF.

    1.4qRT-PCR檢測將液氮保存的心肌組織加入DEPC水處理過的研缽中,持續(xù)加入液氮研磨至粉末。稱取20~30 mg心肌,利用TRIzol提取總RNA,然后逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,再按SYBR Green qPCR Master Mix(2×)試劑盒步驟進(jìn)行擴(kuò)增。引物由TaKaRa生物有限公司合成(Tab 1)。miR-1采用U6作為內(nèi)參基因,Cx43、kir2.1 mRNA采用GAPDH基因作為內(nèi)參。反應(yīng)條件,預(yù)變性:95 ℃ ,60 s;擴(kuò)增(40個循環(huán)):95 ℃,20 s;57 ℃,30 s;72 ℃,60 s;熔解曲線:95 ℃,30 s;60 ℃,60 s;95 ℃,30 s。在每個循環(huán)延伸末收集熒光信號,繪制擴(kuò)增曲線,檢測各樣本的域值循環(huán)數(shù)(CT值),以2-△△CT法對目的基因進(jìn)行相對定量分析。

    Tab 1 Primer sequence of qRT-PCR

    1.5Westernblot檢測將液氮中保存的心肌切成小塊,將部分組織按10 mg加100 μL蛋白裂解液,冰上孵育并振蕩充分裂解,4 ℃、12 000×g離心30 min,取上清液,分裝-80 ℃保存。分裝蛋白利用BCA法進(jìn)行蛋白定量,依次進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳、轉(zhuǎn)膜、5%脫脂奶粉封閉2 h后,分別加入一抗Cx43(1 ∶2 000)、kir2.1(1 ∶1 000)、GAPDH(1 ∶1 500)搖勻后,4 ℃孵育,搖床過夜,加入二抗HRP-IgG(1 ∶2 500),室溫孵育1 h 。TBST清洗,3次×10 min。將PVDF膜條帶表面滴加ECL顯影液,放入凝膠成像儀暗室中,應(yīng)用Quantity One圖像分析軟件測定各蛋白條帶的灰度值,以GAPDH為內(nèi)參反映其相對表達(dá)水平。

    2 結(jié)果

    2.1動物模型建立情況實(shí)驗(yàn)過程出現(xiàn)心律失常只做記錄,未進(jìn)行抗心律失常處理。共27只大鼠參與實(shí)驗(yàn)過程,其中因?qū)嶒?yàn)操作不當(dāng)或結(jié)果有誤棄除3只,剩余24只大鼠均存活至實(shí)驗(yàn)結(jié)束。

    2.2心律失常發(fā)生情況如Tab 2所示,與Sham組比較,I/R組以及U+I/R組均出現(xiàn)明顯的再灌注性心律失常(P<0.01)。與I/R組比較,U+I/R組再灌注期間室早次數(shù)、室速和室顫發(fā)生次數(shù)、持續(xù)時間及致心律失常評分明顯下降(P<0.01),而室速和室顫的發(fā)生率稍有減少,但差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2.3拮抗內(nèi)源性N/OFQ對心肌miR-1表達(dá)的影響如Fig 2所示,與Sham組相比,I/R組心肌miR-1表達(dá)明顯增多(P<0.01);與I/R組相比,U+I/R組miR-1表達(dá)明顯下降(P<0.05)。

    Fig 2 miR-1 expression at 120 min after n=8)

    *P<0.05,**P<0.01vssham;#P<0.05vsU+I/R

    2.4拮抗內(nèi)源性N/OFQ對心肌Cx43、Cx43mRNA以及kir2.1、kir2.1mRNA的影響與Sham組相比,I/R組Cx43、Cx43 mRNA以及kir2.1表達(dá)降低(P<0.05),kir2.1 mRNA降低無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與I/R組相比,U+I/R組Cx43、kir2.1表達(dá)明顯增加(P<0.05),Cx43 mRNA及kir2.1 mRNA表達(dá)雖有增多,但差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Fig 3、4)。

    3 討論

    RA是血運(yùn)重建后發(fā)生的二次損傷,影響患者預(yù)后,甚至導(dǎo)致死亡,多種因素參與其病理生理過程。再灌注早期,心肌表現(xiàn)為氧自由基增多、鈣超載、炎癥因子聚集等,與此同時,心臟自主神經(jīng)以及感覺神經(jīng)被激活,釋放多種神經(jīng)遞質(zhì)/調(diào)質(zhì),共同參與再灌注后心臟的損傷與保護(hù),其中N/OFQ即是心臟感覺神經(jīng)末梢釋放的神經(jīng)肽之一[8-9]。

    N/OFQ及其受體廣泛分布于機(jī)體多種組織器官,包括心血管系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)以及消化系統(tǒng)等,參與疼痛、抑郁、免疫等多種病理生理過程[10]。孤啡肽受體(NOP/ORL1)與經(jīng)典阿片受體存在高度同源性,但其功能與三大經(jīng)典阿片受體(μ、δ、κ)卻截然不同,故又稱為孤兒阿片受體(ORL1)[11]。研究發(fā)現(xiàn),N/OFQ對神經(jīng)細(xì)胞多種離子通道均能發(fā)揮抑制作用[12],本課題組前期研究亦發(fā)現(xiàn),N/OFQ能夠調(diào)節(jié)大鼠心肌細(xì)胞動作電位時程,參與缺血性心律失常過程[6]。而缺血/再灌注狀態(tài)下,N/OFQ能否影響RA的發(fā)生尚無報(bào)道。本研究結(jié)果表明,拮抗內(nèi)源性N/OFQ同樣可降低再灌注后VEB、VT、VF等快速性心律失常的發(fā)生。

    Tab 2 Comparison of cumulative reperfusion-induced arrhythmias in

    **P<0.01vssham;##P<0.01vsU+I/R

    Fig 3 Expression of kir2.1 and Cx43

    *P<0.05,**P<0.01vssham;#P<0.05vsU+I/R

    Fig 4 Expression of KCNJ2 and GJA1

    *P<0.05vssham

    既往研究表明,心肌缺血狀態(tài)下,miR-1表達(dá)增多能夠抑制Cx43及kir2.1蛋白表達(dá),引起電生理紊亂[4-5]。Cx43是心肌細(xì)胞間電信號傳導(dǎo)的重要連接蛋白,是心肌同步化收縮的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ),而kir2.1蛋白則是內(nèi)向整流鉀通道(IK1)的核心亞基,對于心肌細(xì)胞靜息電位的維持有著重要影響。然而,再灌注期間,miR-1的表達(dá)是增多還是降低,尚有不同結(jié)果報(bào)道[13-14]。本研究通過制備大鼠缺血/再灌注模型,結(jié)果顯示,再灌注120 min后,心肌miR-1表達(dá)明顯增多,并發(fā)現(xiàn)其下游靶點(diǎn)Cx43、kir2.1表達(dá)出現(xiàn)轉(zhuǎn)錄后抑制表現(xiàn)。由此推測,再灌注后miR-1的增多可導(dǎo)致Cx43及kir2.1表達(dá)抑制,進(jìn)而引起RA,本結(jié)果與文獻(xiàn)報(bào)道一致[14]。

    在明確N/OFQ以及miR-1均是RA的影響因素后,本研究根據(jù)前期研究結(jié)果,選擇特異性孤啡肽受體拮抗劑UFP-101最佳劑量(10-9mol·L-1, 1 μL·g-1)進(jìn)行尾靜脈注射給藥[6]。結(jié)果顯示,拮抗內(nèi)源性N/OFQ后,miR-1的表達(dá)水平明顯下降,并且Cx43及kir2.1表達(dá)有所上調(diào)。結(jié)果提示內(nèi)源性N/OFQ是導(dǎo)致再灌注期間miR-1上調(diào)的原因之一,而N/OFQ對于RA的調(diào)控很可能是通過上調(diào)miR-1,抑制Cx43及kir2.1表達(dá)而實(shí)現(xiàn)。值得注意的是,本實(shí)驗(yàn)通過比較Cx43 mRNA及kir2.1 mRNA的表達(dá)水平,發(fā)現(xiàn)再灌注后Cx43 mRNA同樣發(fā)生明顯下降,而kir2.1 mRNA則未發(fā)生明顯變化。這提示再灌注后Cx43的表達(dá)除了受到miR-1存在于轉(zhuǎn)錄后水平的調(diào)節(jié),在轉(zhuǎn)錄水平還受到其他因素影響其表達(dá),而缺血/再灌注過程β腎上腺素能受體信號通路的過度激活可能就是影響因素之一[15]。

    綜上所述,內(nèi)源性N/OFQ能夠上調(diào)miR-1,抑制心肌細(xì)胞Cx43及kir2.1的表達(dá),進(jìn)而導(dǎo)致RA。本研究發(fā)現(xiàn)了內(nèi)源性孤啡肽受體信號通路調(diào)節(jié)心肌損傷過程中的微小RNA機(jī)制,能夠?yàn)槠渌杏X神經(jīng)肽以及經(jīng)典阿片受體系統(tǒng)調(diào)控心肌損傷與保護(hù)提供新的思路。

    (致謝:本實(shí)驗(yàn)在山西醫(yī)科大學(xué)第二醫(yī)院麻醉實(shí)驗(yàn)室完成,感謝梁蔚駿老師的支持和幫助,也感謝實(shí)驗(yàn)室各位同學(xué)的指導(dǎo)與幫助!)

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