宋思琦,吳 丹,胡毓詩△
(1.成都體育學(xué)院運動醫(yī)學(xué)與健康學(xué)院,成都 610041;2.北京體育大學(xué)運動人體科學(xué)學(xué)院,北京 100084)
創(chuàng)傷性骨關(guān)節(jié)炎(post-traumatic osteoarthritis,PTOA)是一種由于創(chuàng)傷引起的關(guān)節(jié)軟骨退化、增生、骨化的一種OA,臨床病癥主要變現(xiàn)為關(guān)節(jié)疼痛、關(guān)節(jié)活動障礙等[1-2]。近年來,由于交通事故、外傷的增多,PTOA的發(fā)生率呈現(xiàn)上升的趨勢[1-2]。目前學(xué)者對于PTOA的自然演變過程不甚了解,但由于創(chuàng)傷的作用,導(dǎo)致的關(guān)節(jié)軟骨的降解速度遠大于合成速度已成為PTOA的重要病理機制之一[2-4]。白細胞介素-1(IL-1)是一種常見的促炎因子,能夠通過特異性的結(jié)合于軟骨表面的IL-1受體,促進軟骨降解,并分解細胞外基質(zhì),是OA發(fā)生、發(fā)展過程中的中心環(huán)節(jié)[5-7]。白細胞介素-1受體拮抗蛋白(interleukin -1 receptor antagonist protein,IL1RA)是IL-1天然拮抗劑,能阻斷IL-1與其受體的結(jié)合,進而抑制IL-1α/β對軟骨的破壞。研究已經(jīng)顯示IL1RA對OA具有治療作用[8],但對于PTOA的治療作用報道較少,因此本研究將對此展開研究。
1.1實驗動物 50只體質(zhì)量200~250 g的清潔級健康成年SD大鼠購自北京維通利華實驗動物有限公司,均在(23±2)℃的室內(nèi)溫度內(nèi)自由飲食和攝水。
1.2主要試劑與儀器 細胞裂解液購自北京普利萊基因技術(shù)有限公司;超敏發(fā)光液購自賽默飛世爾科技(中國)有限公司;PVDF膜購自美國Millipore公司;兔抗MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5、TIMP-1、TIMP-3及GAPDH多克隆抗體均購自美國Abcam公司;Ⅱ型膠原酶購自美國Gibco公司;IL-1β、IL-8及TNF-α ELISA試劑盒均購自武漢博士德生物技術(shù)有限公司。Chemi DocTM XRS+超高靈敏度化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)、CFX ConnectTM實時熒光PCR儀購自伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品(上海)有限公司;UV-1600PC型紫外分光光度計購自上海美譜達儀器有限公司。
1.3方法
1.3.1PTOA大鼠模型的復(fù)制、分組及給藥 參考文獻[1,3],采用前交叉韌帶切斷(ACLT)復(fù)制PTOA大鼠模型。將造模成功的大鼠分為模型組,IL1RA低、中、高劑量組(10、20、40 mg/mL),另外將只打開關(guān)節(jié)腔的大鼠設(shè)立為假手術(shù)組,每組10只。造模成功后每天按分組情況進行大鼠關(guān)節(jié)腔注射,連續(xù)14 d。將大鼠處死,取關(guān)節(jié)軟骨置于-80 ℃冰箱待測。
1.3.2ELISA檢測軟骨組織中IL-1β、IL-8及TNF-α水平 取適量軟骨組織,勻漿后加入細胞裂解液裂解,離心取上清液,按IL-1β、IL-8及TNF-α ELISA試劑盒說明書測定IL-1β、IL-8及TNF-α水平。
1.3.3Realtime PCR法檢測COL-Ⅱ、Aggrecan、MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 mRNA的表達 將適量軟骨組織勻漿后,加入Trizol裂解液,并采用Trizol法抽提總RNA。紫外分光光度計測定RNA純度,當(dāng)OA260nm/OA280 nm比值在1.8~2.1,根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書逆轉(zhuǎn)錄RNA,最后根據(jù)Realtime PCR擴增試劑盒檢測RNA。擴增結(jié)果利用2-ΔΔCT法進行分析。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性30 s,95 ℃變形5 s,60 ℃退火25 s,45個循環(huán)。
1.3.4Western blot檢測軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5、TIMP-1及TIMP-3蛋白的表達 將適量軟骨組織勻漿后,加入細胞裂解液裂解組織,離心收獲上清液。測定上清液蛋白濃度,并定量。制作濃縮膠及分離膠,上樣,進行凝膠電泳,轉(zhuǎn)PVDF膜,2%BSA室溫封閉1 h,一抗(兔抗MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5、TIMP-1、TIMP-3及GAPDH多克隆抗體)4 ℃孵育過夜,二抗室溫孵育,加入曝光液后,在凝膠成像系統(tǒng)中報告,并根據(jù)Image J軟件分析電泳條帶灰度值。
2.1各組大鼠軟骨組織中IL-1β、IL-8及TNF-α水平 與假手術(shù)組比較,模型組軟骨組織中IL-1β、IL-8及TNF-α水平明顯提高(P<0.01);與模型組比較,IL1RA低、中、高劑量組軟骨組織中IL-1β、IL-8及TNF-α水平明顯降低(P<0.01),見表1。
表1 各組大鼠軟骨組織中IL-1β、IL-8及TNF-α水平
組別IL-1βIL-8TNF-α假手術(shù)組4.58±0.546.42±0.675.18±0.55模型組17.32±2.13?19.44±2.08?26.78±2.94?低劑量組13.20±1.42#15.37±1.78#20.04±2.00#中劑量組9.28±1.05#10.76±1.34#13.15±1.54#高劑量組5.93±0.72#7.24±0.73#7.41±0.75#
*:P<0.01,與假手術(shù)組比較;#:P<0.01,與模型組比較
2.2各組大鼠軟骨組織中COL-Ⅱ、Aggrecan mRNA的表達 與假手術(shù)組比較,模型組軟骨組織中COL-Ⅱ、Aggrecan mRNA表達明顯下調(diào)(P<0.01);與模型組比較,IL1RA低、中、高劑量組軟骨組織中COL-Ⅱ、Aggrecan mRNA表達明顯上調(diào)(P<0.01),見表2。
2.3各組大鼠軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 mRNA的表達 與假手術(shù)組比較,模型組軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 mRNA表達明顯上調(diào)(P<0.01);與模型組比較,IL1RA低、中、高劑量組軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 mRNA表達明顯下調(diào)(P<0.01),見表3。
表2 各組大鼠軟骨組織中COL-Ⅱ、Aggrecan mRNA表達的變化
*:P<0.01,與假手術(shù)組比較;#:P<0.01,與模型組比較
表3 各組大鼠軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 mRNA表達情況
*:P<0.01,與假手術(shù)組比較;#:P<0.01,與模型組比較
表4 各組大鼠軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 蛋白表達情況
*:P<0.01,與假手術(shù)組比較;#:P<0.01,與模型組比較
2.4各組大鼠軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 蛋白的表達 與假手術(shù)組比較,模型組軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5蛋白表達明顯上調(diào)(P<0.01);與模型組比較,IL1RA低、中、高劑量組軟骨組織中ADAMTs-4、ADAMTs-5蛋白表達明顯下調(diào)(P<0.01),IL1RA中、高劑量組軟骨組織中MMP-1、MMP-13蛋白表達明顯下調(diào)(P<0.01),見圖1、表4。
A:假手術(shù)組;B:模型組;C:IL1RA低劑量組;D:IL1RA中劑量組;E:IL1RA高劑量組
圖1各組大鼠軟骨組織中MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5蛋白表達的變化
A:假手術(shù)組;B:模型組;C:IL1RA低劑量組;D:IL1RA中劑量組;E:IL1RA高劑量組
圖2 各組大鼠軟骨組織中TIMP-1、TIMP-3蛋白表達情況
*:P<0.01,與假手術(shù)組比較;#:P<0.01,與模型組比較
2.5各組大鼠軟骨組織中TIMP-1、TIMP-3蛋白表達情況 與假手術(shù)組比較,模型組軟骨組織中TIMP-1、TIMP-3蛋白表達明顯下調(diào)(P<0.01);與模型組比較,IL1RA低、中、高劑量組軟骨組織中TIMP-1、TIMP-3蛋白表達明顯上調(diào)(P<0.05),見圖2、表5。
IL1RA作為IL-1的天然拮抗劑,能夠特異性的結(jié)合于軟骨表面的IL-1受體,進而抑制IL-1α/β對軟骨的破壞作用[8]。研究顯示在大鼠關(guān)節(jié)軟骨急性損傷期關(guān)節(jié)腔注射IL1RA,能明顯上調(diào)miR-27b、miR-140、miR-125b進而抑制軟骨的分解[9]。而且IL1RA能明顯降低ACLT復(fù)制的PTOA大鼠的軟骨及滑膜評分,同時抑制軟骨細胞凋亡[10]。進而提示IL1RA對PTOA大鼠具有一定治療作用,但具體的作用機制不甚了解。本研究首先通過ACLT構(gòu)建PTOA大鼠模型,進而檢測不同劑量的IL1RA對PTOA大鼠關(guān)節(jié)軟骨中炎癥因子水平的影響,結(jié)果表明IL1RA能明顯降低IL-1β、IL-8及TNF-α水平,IL-1β、IL-8及TNF-α主要是由活化的單核-巨噬細胞分泌產(chǎn)生的促炎因子,其中TNF-α不僅能夠破壞軟骨,還可以促進IL-1β、IL-8的分泌進而加重軟骨的損傷,而且IL-1β、IL-8及TNF-α能夠刺激細胞外基質(zhì)降解酶的分泌加速細胞外基質(zhì)的降解,進而加重軟骨損傷。研究顯示人PTOA或動物模型PTOA中IL-1β、IL-8及TNF-α的水平均明顯提高[11-12],因此本研究結(jié)果表明IL1RA能明顯的通過減少IL-1β、IL-8及TNF-α分泌,進而抑制PTOA大鼠軟骨損傷。
軟骨主要由軟骨細胞及細胞外基質(zhì)組成,后者主要由膠原蛋白及Aggrecan組成。其中COL-Ⅱ占軟骨膠原蛋白90%以上,維持著軟骨的三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),為細胞外基質(zhì)提供支架及彈性。蛋白多糖含有大量親水性的支鏈,能夠維持著軟骨的潤滑及抗壓作用。當(dāng)軟骨降解速度遠大于合成速度后,說明軟骨細胞分泌大量的降解酶,如MMPs及ADAMTs。MMPs是一種依賴于Zn2+的蛋白水解酶,其中的膠原酶MMP-1能夠降解Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅶ、Ⅷ、Ⅹ型膠原酶,MMP-13不僅能夠降解軟骨特異性COL-Ⅱ及新生的COL-Ⅱ,還能夠激活其他MMPs,發(fā)揮其對膠原的降解作用。ADAMTs是一種新型的金屬蛋白酶,對Aggrecan具有明顯的降解作用。目前研究最多的ADAMTs為ADAMTs-4及ADAMTs-5,二者在軟骨、心臟、腦等多種組織器官中有表達,并有多個Aggrecan水解酶位點,同時受IL-1等炎癥因子的影響。另外細胞外基質(zhì)的降解速度大于合成速度,也源自于TIMPs分泌量的減少。TIMPs不僅能夠與1∶1的比例與MMPs特異性結(jié)合,還是ADAMTs內(nèi)源性的抑制劑。其中TIMP-1能與MMP-1及MMP-13結(jié)合抑制二者的表達,TIMP-3能與ADAMTs-4及ADAMTs-5結(jié)合抑制二者的表達。研究顯示ADAMTs-4及ADAMTs-5基因敲除的小鼠OA能得到明顯改善,而且體外通過IL-1β誘導(dǎo)軟骨細胞后并敲除ADAMTs-4及ADAMTs-5表達,能明顯的抑制Aggrecan的降解[13]。TIMP-1及TIMP-3在OA體外或體內(nèi)模型中表達量均明顯降低[14-15]。因此通過上調(diào)TIMP-1及TIMP-3表達,進而抑制MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4及ADAMTs-5表達,能明顯抑制COL-Ⅱ及Aggrecan含量的減少,進而降低軟骨細胞外基質(zhì)的降解速度。所以本研究進一步探討IL1RA對PTOA大鼠軟骨組織中膠原蛋白、Aggrecan、細胞外基質(zhì)合成與降解蛋白表達的影響,結(jié)果表明IL1RA能明顯上調(diào)COL-Ⅱ mRNA、Aggrecan mRNA、TIMP-1蛋白、TIMP-3蛋白表達,下調(diào)MMP-1、MMP-13、ADAMTs-4、ADAMTs-5 mRNA及蛋白表達,進而維持軟骨基本結(jié)構(gòu)。
綜上所述,IL1RA能夠通過促進軟骨細胞外基質(zhì)合成,抑制基質(zhì)降解,進而抑制PTOA大鼠軟骨損傷。