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    阿托伐他汀對(duì)KLF4過表達(dá)的RAW264.7細(xì)胞表型偏移的影響

    2019-02-28 03:26:38李鑫馬立芝向國(guó)安李琦姬文婕魏路清
    生物技術(shù)通訊 2019年6期
    關(guān)鍵詞:管中細(xì)胞培養(yǎng)肺纖維化

    李鑫,馬立芝,向國(guó)安,李琦,姬文婕,魏路清

    1.解放軍總醫(yī)院第三醫(yī)學(xué)中心a.急診科,b.呼吸科,北京100039;2.解放軍總醫(yī)院,北京100853;3.武警特色醫(yī)學(xué)中心 呼吸與重癥醫(yī)學(xué)科,天津300162

    Krüppel 樣因子(Krüppel-like factors,KLFs)是包含鋅指結(jié)構(gòu)的核轉(zhuǎn)錄因子,在機(jī)體多項(xiàng)生命活動(dòng)中具有重要的調(diào)節(jié)作用[1]。KLF4 是KLFs 家族眾多成員之一,因其在消化道含量豐富又稱為胃腸富集KLF[2](gut-enriched KLF,GKLF)。KLF4 能夠與不同的靶基因結(jié)合而發(fā)揮不同的生物學(xué)作用,表現(xiàn)為轉(zhuǎn)錄激活或抑制。近年來的研究表明,KLF4 能夠參與并調(diào)節(jié)機(jī)體的炎癥反應(yīng)[3]。巨噬細(xì)胞作為機(jī)體免疫防御系統(tǒng)的重要組成部分,參與先天性免疫和細(xì)胞免疫活動(dòng)[4-5]。在不同的內(nèi)環(huán)境下,巨噬細(xì)胞可分化為具有促炎性的M1型巨噬細(xì)胞或抗炎性的M2 型巨噬細(xì)胞,參與機(jī)體的免疫反應(yīng)[6]。本課題組在前期研究中發(fā)現(xiàn)KLF4在博來霉素致肺纖維化過程中呈明顯的動(dòng)態(tài)變化,同時(shí)發(fā)現(xiàn)給予阿托伐他汀(atorvastatin,ATO)干預(yù)后KLF4的表達(dá)也隨之發(fā)生改變[7-8]。為進(jìn)一步探索ATO和KLF4的作用機(jī)制,本研究通過體外實(shí)驗(yàn)脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞表型變化,探討KLF4 對(duì)巨噬細(xì)胞表型的變化調(diào)節(jié)與ATO 干預(yù)的關(guān)系。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    野生型RAW264.7細(xì)胞(南開大學(xué)生命科學(xué)院韓際宏教授惠贈(zèng));KLF4 過表達(dá)RAW264.7細(xì)胞(Lenti-KLF4)、空載體對(duì)照的RAW264.7細(xì)胞(Lenti-pLVX)(實(shí)驗(yàn)室前期構(gòu)建保存[9-10]);胎牛血清(Gibco 公司);DMEM 高糖培養(yǎng)基、胰蛋白酶(HyClone 公司);瓊脂糖、阿托伐他?。⊿igma 公司);嗎啉代丙烷磺酸(Ambion 公司);PCR 擴(kuò)增試劑盒(大連TaKaRa 公司);TRIzol 試劑盒、Lipo?fectAMINE 3000 試 劑(Invitrogen 公 司);SYB?RGreen 實(shí)時(shí)定量PCR 試劑盒(Roche 公司);引物均由中美泰和生物有限公司合成。

    1.2 細(xì)胞復(fù)蘇及培養(yǎng)

    取出野生型RAW264.7細(xì)胞、Lenti-KLF4細(xì)胞、Lenti-pLVX細(xì)胞,迅速?gòu)?fù)蘇后置于含2 mL 12%高糖DMEM 培養(yǎng)基的六孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,于37℃,5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。

    1.3 LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞

    分別取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RAW264.7細(xì)胞接種于12 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔5×104細(xì)胞,1 mL 12%高糖DMEM 培養(yǎng)基,于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)21 h,從每孔吸出500 μL 培養(yǎng)基于無菌EP 管中,在實(shí)驗(yàn)組EP 管中加入5 μL LPS 溶液(20 ng/μL),對(duì)照組EP 管中加入5 μL 高糖DMEM 培養(yǎng)基,混勻后加回到原細(xì)胞培養(yǎng)孔中,繼續(xù)培養(yǎng)3 h。

    1.4 ATO 干預(yù)RAW264.7細(xì)胞

    分別取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RAW264.7細(xì)胞接種于12 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔5×104細(xì)胞,1 mL 12%高糖DMEM 培養(yǎng)基,于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)18 h,從每孔吸出500 μL 培養(yǎng)基于無菌EP 管中,在對(duì)照組EP 管中加入10 μL DMSO,實(shí)驗(yàn)組EP 管中加入10 μL ATO 溶液(10 μmol/mL),混勻后加回到原細(xì)胞培養(yǎng)孔中去,繼續(xù)培養(yǎng)6 h。

    1.5 ATO 干預(yù)后,LPS 作用于RAW264.7細(xì)胞

    分別取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RAW264.7細(xì)胞接種于12 孔細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔5×104細(xì)胞,1 mL 12%高糖DMEM 培養(yǎng)基,于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培18 h,從每孔吸出500 μL 培養(yǎng)基于無菌EP 管中,在對(duì)照組及LPS 組EP 管中分別加入10 μL DMSO,LPS+ATO 組EP 管中加入10 μL ATO 溶液(10 μmol/mL),混勻后加回到原細(xì)胞培養(yǎng)孔中去,繼續(xù)培養(yǎng)3 h,從每孔吸出500 μL 培養(yǎng)基于無菌EP管中,在對(duì)照組EP 管中加入5 μL 高糖DMEM 培養(yǎng) 基,LPS 組 及LPS+ATO 組EP 管 中 加入5 μL LPS 溶液(20 ng/μL),混勻后加回到原細(xì)胞培養(yǎng)孔中去,繼續(xù)培養(yǎng)3 h。

    1.6 RT-PCR 檢 測(cè)KLF4 mRNA的表 達(dá)

    每組3個(gè)樣本,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。分別提取各組細(xì)胞的總RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA,進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,用2-ΔΔCt法分析擴(kuò)增結(jié)果。引物序列見表1。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Stata 14.1 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料用x±s表示,2組間均數(shù)比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),以P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 LPS、ATO 分別作用于野生型RAW264.7細(xì)胞后KLF4的mRNA表 達(dá)

    RT-PCR 結(jié)果見圖1。 LPS誘導(dǎo)野生型RAW264.7細(xì)胞3 h后,KLF4基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量與對(duì)照組相比降低約70%(0.24±0.06 vs 1.00±0.00,P<0.05)。ATO 干預(yù)野生型RAW264.7細(xì)胞6 h后,KLF4基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量與對(duì)照組相比升高約3倍(3.72±0.71 vs 1.00±0.00,P<0.05)。

    2.2 LPS誘導(dǎo)野生型RAW264.7細(xì)胞后,巨噬細(xì)胞表型相關(guān)基因的mRNA表達(dá)

    RT-PCR 結(jié)果見圖2。 LPS誘導(dǎo)野生型RAW264.7細(xì)胞3 h后,與較野生型對(duì)照組相比,IL-10、Arg-1基因的mRNA表達(dá)量分別低于對(duì)照組約84%(0.16±0.02 vs 1.00±0.00)、74%(0.26±0.04 vs 1.00±0.00)(P<0.05),NF- κB基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量較對(duì)照組升高約1.5倍(1.51±0.21 vs 1.00±0.00,P<0.05)。

    2.3 ATO 干預(yù)后,LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞表型相關(guān)基因的mRNA表達(dá)

    RT-PCR 結(jié)果見圖3。ATO 干預(yù)后LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞,ATO+LPS 組與LPS 組(對(duì)照組)相比IL-10、Arg-1基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量分別高于對(duì)照組約1.6倍(1.70±0.16 vs 1.00±0.00)、1.8倍(1.83±0.08 vs 1.00±0.00,P<0.05),NF-κB基因的mRNA表達(dá)量較對(duì)照組降低了約42%(0.58±0.05 vs 1.00±0.00,P<0.05)。

    圖1 KLF4的mRNA 相對(duì)表達(dá)

    圖2 LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞后IL-10、Arg-1、NF-κB基因mRNA的相對(duì)表達(dá)

    2.4 LPS誘導(dǎo)Lenti-KLF4細(xì)胞后,巨噬細(xì)胞表型相關(guān)基因的mRNA表達(dá)

    RT-PCR 結(jié)果見圖4。LPS誘導(dǎo)KLF4 過表達(dá)的RAW264.7細(xì)胞后,LPS 組 中,Lenti-KLF4與Lenti-pLVX 相比IL-10、Arg-1、基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量分別升高約3倍(1.64±0.09 vs 0.56±0.06,P<0.01)、16倍(4.30±0.29 vs 0.27±0.11,P<0.01),NF-κB基因的相對(duì)表達(dá)量降低約60%(1.49±0.30 vs 3.79±0.63,P<0.05)。在對(duì)照組中,Lenti-KLF4與Lenti-pLVX 相比IL-10、Arg-1基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量分別升高約3.3倍(3.32±0.94 vs 1.00±0.00,P<0.01)、10.5倍(10.55±2.71 vs 1.00±0.00,P<0.01),NF-κB基因的相對(duì)表達(dá)量降低約62%(0.38±0.07 vs 1.00±0.00,P>0.05)。

    圖3 ATO 干預(yù)后,LPS誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞IL-10、Arg-1、NF-κB基因mRNA的相對(duì)表達(dá)

    圖4 LPS誘導(dǎo)KLF4 過表達(dá)的RAW264.7細(xì)胞IL-10、Arg-1、NF-κB基因mRNA的相對(duì)表達(dá)

    圖5 ATO 干預(yù)后,LPS誘導(dǎo)的Lenti-KLF4細(xì)胞IL-10、Arg-1、NF-κB基因mRNA的相對(duì)表達(dá)

    2.5 ATO干預(yù)后LPS誘導(dǎo)Lenti-KLF4細(xì)胞,巨 噬細(xì)胞表型相關(guān)基因的mRNA表達(dá)

    RT-PCR 結(jié)果見圖5。ATO+LPS 組中,Lenti-KLF4與Lenti-pLVX相比IL-10、Arg-1基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量分別升高約2倍(2.85±0.41 vs 1.34±0.08,P<0.01)、3.6倍(9.84±0.96 vs 2.75±0.57,P<0.01),NF-κB基因的相對(duì)表達(dá)量降低約55%(0.39±0.09 vs 0.87±0.02,P<0.01)。LPS 組中,Lenti-KLF4與Lenti-pLVX 相比IL-10、Arg-1基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量分別升高約1.8倍(1.81±0.52 vs 1.00±0.00,P<0.05)、7.5倍(7.48±0.95 vs 1.00±0.00,P<0.05),NF-κB基因的相對(duì)表達(dá)量降低約23%(0.77±0.12 vs 1.00±0.00,P<0.05)。

    3 討論

    單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞共同構(gòu)成機(jī)體的重要防線。巨噬細(xì)胞由單核細(xì)胞分化而來,其在機(jī)體器官內(nèi)可進(jìn)一步分化為經(jīng)典活化的M1表型(主要功能為識(shí)別、提呈、促炎)和選擇性活化的M2表型(主要功能為抑炎、修復(fù))[11-12],在不同免疫反應(yīng)和疾病環(huán)境下,功能相異甚至相互抑制來發(fā)揮不同的調(diào)控作用。在骨關(guān)節(jié)炎疾病中,M1和M2 型巨噬細(xì)胞參與炎癥反應(yīng)的發(fā)生發(fā)展[13]。在非酒精性脂肪肝肝炎疾病中,調(diào)節(jié)M1 型巨噬細(xì)胞的極化可能是潛在的治療靶點(diǎn)[14]。在變態(tài)反應(yīng)性疾病中,Egawa[15]等發(fā)現(xiàn)炎癥細(xì)胞聚集并通過嗜堿性粒細(xì)胞分泌白介素4 調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞向M2 型偏移發(fā)揮抗炎作用,從而減輕變態(tài)反應(yīng)。同時(shí),巨噬細(xì)胞極化對(duì)過敏性哮喘的發(fā)病具有深遠(yuǎn)影響[16]。在博萊霉素致小鼠肺纖維化中,肺內(nèi)巨噬細(xì)胞明顯由M1表型向M2表型偏移且隨疾病的發(fā)生發(fā)展呈動(dòng)態(tài)變化[17]。在小鼠矽肺模型中,同樣發(fā)現(xiàn)巨噬細(xì)胞明顯由M1表型向M2表型偏移且隨疾病的發(fā)生發(fā)展呈動(dòng)態(tài)變化的現(xiàn)象[18]。

    KLF4 作為一種重要的信號(hào)蛋白分子,對(duì)巨噬細(xì)胞的分化成熟具有調(diào)控作用,并成為其分化為M1 型和M2 型的標(biāo)志物[19-20]。KLF4 能夠抑制巨噬細(xì)胞向M1表型極化,促進(jìn)巨噬細(xì)胞向M2表型極化[20]。有研究發(fā)現(xiàn),KLF4 能夠調(diào)控巨噬細(xì)胞極化而作為治療動(dòng)脈粥樣硬化疾病的一個(gè)靶點(diǎn)[21-23]。他汀類藥物在臨床上廣泛應(yīng)用于調(diào)節(jié)機(jī)體脂類代謝,近年來有研究發(fā)現(xiàn)他汀類藥物還具有免疫調(diào)節(jié)、抑制心肌肥厚、改善內(nèi)皮功能等作用[24-26]。阿托伐他汀作為常用的他汀類藥物之一,在肺纖維化疾病領(lǐng)域有著廣泛的研究和應(yīng)用,其也被證實(shí)可緩解肺纖維化的進(jìn)展程度[27-28]。

    本研究主要通過LPS誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞,構(gòu)建體外損傷模型,以探討巨噬細(xì)胞表型偏移與他汀類藥物及KLF4的關(guān)系。我們的研究結(jié)果顯示,LPS 會(huì)抑制RAW264.7細(xì)胞內(nèi)KLF4的表達(dá),同時(shí)阿托伐他汀會(huì)促進(jìn)RAW264.7細(xì)胞內(nèi)KLF4的表達(dá)。有研究證實(shí),在LPS誘導(dǎo)的RAW264.7 巨噬細(xì)胞中,阿托伐他汀可以有效抑制TNF-α和iNOS的mRNA表達(dá)[29]。本研究中LPS 作用于RAW264.7細(xì)胞后,可以抑制巨噬細(xì)胞由M1 型向M2 型偏移,與文獻(xiàn)報(bào)道一致[30-31]。本研究發(fā)現(xiàn)阿托伐他汀干預(yù)后,LPS 作用于KLF4 過表達(dá)的RAW264.7細(xì)胞表型偏移發(fā)生部分逆轉(zhuǎn)。結(jié)合前期發(fā)現(xiàn)通過抑制部分博萊霉素誘導(dǎo)的小鼠巨噬細(xì)胞表型偏移而改善肺纖維化情況[32]及肺纖維化模型中KLF4 含量的動(dòng)態(tài)變化[8],阿托伐他汀可能通過KLF4 途徑來調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞表型偏移,進(jìn)而在肺損傷及肺纖維化病理進(jìn)程中發(fā)揮作用。本研究?jī)H通過慢病毒介導(dǎo)KLF4 過表達(dá)來探討其對(duì)巨噬細(xì)胞的表型調(diào)控,存在不足之處,還應(yīng)通過對(duì)KLF4敲低以更進(jìn)一步探討其對(duì)巨噬細(xì)胞表型的調(diào)控。在機(jī)體穩(wěn)態(tài)及損傷、炎癥等不同狀態(tài)下,巨噬細(xì)胞的功能異質(zhì)性不容忽視,了解阿托伐他汀的可能干預(yù)機(jī)制,可為我們進(jìn)一步探索臨床治療肺纖維化等疾病奠定實(shí)驗(yàn)和理論基礎(chǔ)。

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