劉 勇,張?jiān)茟c,鄔丹蓮
絲素蛋白(silk fibroin,SF)復(fù)合羥基磷灰石(hydroxyapatite,HA)多孔支架具有良好的生物學(xué)相容性、力學(xué)性能和骨傳導(dǎo)能力,但骨誘導(dǎo)能力不足[1]。骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)-2是目前已知最強(qiáng)的成骨活性因子之一,能夠顯著提高材料的成骨能力[2],但制備BMP-2復(fù)合材料時(shí)傳統(tǒng)物理吸附或包裹方法存在結(jié)合率低、易早期爆釋的現(xiàn)象,難以滿(mǎn)足骨形成過(guò)程中的持續(xù)需求[3-4]。近年來(lái)有學(xué)者在材料表面構(gòu)建聚多巴胺(poly dopamine,PDA)涂層,不僅提高了材料的生物相容性,還能高效結(jié)合并緩釋生長(zhǎng)因子,為制備具有生物活性的組織工程骨提供了途徑[5]。本研究采用冷凍干燥法制備SF/HA 多孔支架,在其表面形成PDA 涂層,然后接枝BMP-2,構(gòu)建類(lèi)似天然骨成分、結(jié)構(gòu)和生理功能的SF/HA/PDA/BMP-2 支架,評(píng)估支架的表面特征、理化性質(zhì)及其對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)體外成骨分化能力的影響,探討支架在組織工程骨領(lǐng)域應(yīng)用的可行性,為臨床新型人工骨修復(fù)骨缺損的研發(fā)提供可供選擇的支架材料。
BMP-2(上海瑞邦生物科技有限公司),生蠶絲(江蘇如東新絲路有限公司),HA、無(wú)水LiBr、無(wú)水Na2CO3(上海阿拉丁試劑有限公司),透析袋、聚乙二醇(上海Biosharp 有限公司),堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)染色試劑盒(上海Yeasen有限公司)。DMEM細(xì)胞培養(yǎng)基、胎牛血清(Gibco 公司,美國(guó)),CCK-8 試劑盒(Dojindo 同仁化學(xué)公司,日本),成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基、BMSCs、茜素紅染液、細(xì)胞熒光染液熒光素雙醋酸脂(fluorescein diacetate,F(xiàn)DA)和 碘 化 吡 啶(propidium iodide,PI)均購(gòu)自美國(guó)Sigma公司。
主要儀器包括水浴鍋(常州國(guó)華電器有限公司),細(xì)胞培養(yǎng)箱(Thermo 公司,美國(guó)),臨界點(diǎn)干燥儀(Leica 公司,德國(guó)),掃描電鏡(scanning electron microscope,SEM,Hitach 公司,日本),水接觸角測(cè)量?jī)x(Data Physics 公司,德國(guó)),酶標(biāo)儀器(Bio-Red公司,美國(guó)),共聚焦顯微鏡(Leica公司,德國(guó))。
1.2.1 SF 溶液制備 取適量生蠶絲置于0.02 mol/L Na2CO3中脫膠,烘干后放入9.3 mol/L LiBr 溶液中,攪拌至完全溶解,經(jīng)透析、濃縮后得到質(zhì)量濃度6%的SF溶液,將其置于4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 SF/HA 混懸溶液制備 將2 g HA 粉末加入10 mL PBS(0.001 M,pH=6.8)溶液中,采用超聲震蕩法制備HA 混懸液,質(zhì)量濃度為20%(W/V)。按照質(zhì)量比(1∶4)將SF 溶液與HA 混懸液混合,超聲震蕩3 min,制成均勻的SF/HA混合溶液。
1.2.3 SF/HA/PDA/BMP-2 支架制備及分組 取100 μL 適量SF/HA 混合液加入模具中,迅速置于液氮中冷凍,凍干過(guò)夜,甲醇浸泡30 min,再次凍干后制得SF/HA 多孔支架。將SF/HA 支架置入PDA 溶液中(2 mg/mL,pH=8.5),慢速(50 r/min)震蕩4 h,雙蒸水洗3 次,制得SF/HA/PDA 支架。將制得的SF/HA/PDA 支架置入BMP-2 溶液中(2 mg/mL,pH=8.5),慢速(50 r/min)震蕩4 h,雙蒸水洗3 次,最后制得SF/HA/PDA/BMP-2 支架。將制備好的支架分為SF/HA 支架組、SF/HA/PDA支架組和SF/HA/PDA/BMP-2支架組,以用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
采用ELASA法檢測(cè)SF/HA/PDA/BMP-2支架制成后1 d、3 d、5 d、7 d、14 d、21 d、28 d 的BMP-2累積釋放量。
應(yīng)用水接觸角測(cè)量?jī)x檢測(cè)各組支架表面親水性變化,應(yīng)用SEM觀察支架表面形態(tài)。
分別在3 組支架上進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。將各組支架裁剪合適后鋪于96孔板底部,胎牛血清培養(yǎng)基浸泡過(guò)夜,PBS 清洗2 次,每個(gè)支架加入含有1 ×104個(gè)BMSCs 的細(xì)胞培養(yǎng)基200 μL,置入37°C、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng),分別于1、4、7 d 加入20 μL CCK-8 試劑,培養(yǎng)2 h,取100 μL 溶液移入新的96孔板中,酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm吸光度。
細(xì)胞SEM 成像:細(xì)胞培養(yǎng)7 d,去除培養(yǎng)液,4%多聚甲醛固定1 h,乙醇梯度脫水,臨界點(diǎn)干燥后噴金處理,SEM觀察細(xì)胞形態(tài)。
細(xì)胞熒光染色:細(xì)胞培養(yǎng)7 d,取出上清液,PBS清洗2次,每孔分別加入100 μL FDA(5 μg/mL)和100 μL P(I5 μg/ mL),于37°C、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)15 min,PBS清洗,在共聚焦顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。
1.6.1 ALP活性檢測(cè) 細(xì)胞與3組支架共培養(yǎng),14 d去除培養(yǎng)基,PBS清洗2次,加入Triton X-100細(xì)胞裂解液,向細(xì)胞裂解液中加入ALP 染色試劑盒中的pNPP底物,在405 nm處檢測(cè)吸光度值。
1.6.2 茜素紅染色光鏡觀察 細(xì)胞與3 組支架共培養(yǎng),方法同1.6.1。培養(yǎng)14 d 去除培養(yǎng)基,加入4%多聚甲醛固定15 min,PBS清洗2次,再加入2%茜素紅染液,室溫下染色20 min,去除染液,PBS 清洗2次,光鏡下觀察。
采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,3組比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
SF/HA 支架、SF/HA/PDA 支架、SF/HA/PDA/BMP-2 支架接觸角分別為(54.7 ± 4.8)°、(43.7 ±3.7)°、(32.3 ± 2.4)°,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=180.526,P=0.001),提示在PDA 涂層及接枝BMP-2 后,支架的親水性逐漸增加(圖1)。SEM圖像可見(jiàn)SF/HA 支架表面相對(duì)光滑,SF/HA/PDA支架表面有顆粒物形成,SF/HA/PDA/BMP-2支架表面顆粒物明顯增多,說(shuō)明PDA 增加了支架表面的粗糙度,而接枝BMP-2后,支架表面的粗糙度進(jìn)一步增加(圖2)。
圖1 水接觸角測(cè)量?jī)x檢測(cè)3組支架親水性1A SF/HA支架1B SF/HA/PDA支架1C SF/HA/PDA/BMP-2支架
圖2 3 組支架掃描電鏡成像2A,2B SF/HA 支架2C,2D SF/HA/PDA 支架2E,2F SF/HA/PDA/BMP-2支架
ELASA 法檢測(cè)結(jié)果顯示支架上BMP-2 制備后在1 d、3 d、5 d、7 d、14 d、21 d、28 d 累計(jì)釋放量分別為4.8%、9.2%、13.5%、18.4%、25.7%、31.6%、38.7%,呈緩慢持續(xù)釋放趨勢(shì)(圖3)。
圖3 ELASA 法檢測(cè)SF/HA/PDA/BMP-2 支架上BMP-2 累積釋放量
2.3.1 BMSCs 增殖能力 電鏡和熒光染色結(jié)果顯示,SF/HA 支架上細(xì)胞數(shù)量稀少,形態(tài)呈多角形;PDA涂層后細(xì)胞數(shù)量增多,細(xì)胞鋪展良好;進(jìn)一步接枝BMP-2 后細(xì)胞數(shù)量明顯增多,局部呈片狀生長(zhǎng),細(xì)胞黏附和生長(zhǎng)能力更好(圖4)。
圖4 3組支架上細(xì)胞熒光染色及掃描電鏡成像4A,4B SF/HA支架4C,4D SF/HA/PDA支架4E,4F SF/HA/PDA/BMP-2支架
CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示3組支架上BMSCs隨時(shí)間推移均呈增殖趨勢(shì),其在SF/HA/PDA/BMP-2支架上的增殖能力優(yōu)于SF/HA/PDA 支架和SF/HA支架,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=21.637,P= 0.002,圖5)。
圖5 CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞在3組支架上的增殖能力
2.3.2 BMSCs 成骨能力 與細(xì)胞共培養(yǎng)2 周后,檢測(cè)3 組支架上BMSCs 的ALP 活性,結(jié)果顯示SF/HA 支架、SF/HA/PDA 支架、SF/HA/PDA/BMP-2支架ALP水平分別為(2.9±0.4)、(3.4±0.7)、(6.8±0.8)U/mg,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=232.215,P=0.001)。茜素紅染色結(jié)果顯示SF/HA 支架呈淺色紅染,SF/HA/PDA 支架呈紅色染色,SF/HA/PDA/BMP-2支架呈深色紅染(圖6)。
圖6 3組支架茜素紅染色6A SF/HA支架6B SF/HA/PDA支架6C SF/HA/PDA/BMP-2支架(×10)
近年來(lái)陸續(xù)有研究以SF和HA為原料制成具有良好孔隙率和一定力學(xué)強(qiáng)度的復(fù)合支架,結(jié)構(gòu)上與天然骨組織相類(lèi)似[6-7]。由于生物學(xué)相容性良好,力學(xué)性能優(yōu)異,SF/HA多孔支架在骨組織工程領(lǐng)域有著較大的應(yīng)用潛力。Kweon 等[8]將SF/HA作為假體涂層植入兔脛骨內(nèi),結(jié)果顯示涂層后假體具有促進(jìn)骨再生的作用。SF/HA支架還可作為藥物載體,負(fù)載并緩慢釋放BMP-2,體外研究證實(shí)其可促進(jìn)BMSCs向成骨細(xì)胞分化,植入大鼠體內(nèi)后能加速大鼠顱骨缺損區(qū)的修復(fù)[9];SF/HA 支架還可通過(guò)負(fù)載BMSCs,促進(jìn)兔橈骨缺損處的骨再生[10]。盡管目前基于SF/HA的骨組織工程支架材料尚處于基礎(chǔ)研究階段,但未來(lái)在骨科臨床有著廣闊的應(yīng)用前景。
單純SF/HA 材料缺乏生物活性因子,導(dǎo)致其誘導(dǎo)成骨能力弱,在骨修復(fù)領(lǐng)域的應(yīng)用受到限制。為提高其與生物活性因子的結(jié)合率,有學(xué)者通過(guò)PDA 涂層方法將生物活性因子接枝在高分子材料表面,明顯提高了表面親水性和粗糙度,生物學(xué)相容性得到改善[11];體內(nèi)外研究結(jié)果亦證實(shí)該方法能有效促進(jìn)細(xì)胞黏附和增殖[12-13],明顯增強(qiáng)材料的成骨能力[14-15]。本研究結(jié)果表明,PDA涂層支架表面水接觸角較單純SF/HA 支架明顯增加,顆粒物逐漸增多,PDA 涂層支架上細(xì)胞的黏附和增殖能力均優(yōu)于單純SF/HA 支架,與現(xiàn)有研究結(jié)果相似[16]。
BMP-2 屬于轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子超家族成員,是一種疏水性酸性蛋白,具有強(qiáng)大的促成骨活性,能夠誘導(dǎo)BMSCs向成骨細(xì)胞分化,在骨組織再生和修復(fù)領(lǐng)域應(yīng)用廣泛[17]。有研究者以SF/HA支架物理包裹BMP-2,體外實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示該支架能夠促進(jìn)BMSCs向成骨細(xì)胞分化[18]。也有學(xué)者通過(guò)物理混合法制備殼聚糖/磷酸鈣/BMP-2復(fù)合支架,結(jié)果表明支架能夠促進(jìn)兔脛骨缺損區(qū)的骨修復(fù)過(guò)程[19]。
盡管具有良好的骨再生作用,這些復(fù)合支架目前仍存在BMP-2 早期突釋現(xiàn)象,難以滿(mǎn)足骨骼再生過(guò)程中對(duì)BMP-2的持續(xù)需求[20]。本研究中采用PDA涂層方法接枝BMP-2,經(jīng)過(guò)4周觀察,支架上BMP-2 呈緩慢釋放趨勢(shì),符合骨組織工程載藥支架的需要。此外,本研究結(jié)果顯示,SF/HA/PDA/BMP-2 支架上BMSCs 的黏附能力和增殖能力最佳,ALP活性及茜素紅染色均優(yōu)于其它兩組,提示該支架上釋放的BMP-2促進(jìn)了細(xì)胞的黏附增殖和成骨分化。
相對(duì)于鈦合金及天然高分子聚合物材料[21-22],SF/HA多孔支架具有與天然骨組織類(lèi)似的成分和結(jié)構(gòu),通過(guò)PDA涂層可進(jìn)一步提高SF/HA支架的生物學(xué)相容性,有效接枝并緩釋BMP-2 后可發(fā)揮其骨傳導(dǎo)和骨誘導(dǎo)作用??傊?,本研究構(gòu)建的SF/HA/PDA/BMP-2多孔支架具有良好的生物學(xué)相容性和成骨活性,在骨組織工程領(lǐng)域有著廣闊的應(yīng)用前景。