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    弱化呼吸鏈水平對代謝工程大腸桿菌聚羥基丁酸乳酸酯合成的影響

    2019-01-30 08:19:50陸靜嫻李志敏葉勤吳輝
    生物工程學(xué)報 2019年1期
    關(guān)鍵詞:百分比摩爾羥基

    陸靜嫻,李志敏,葉勤,吳輝

    華東理工大學(xué) 生物反應(yīng)器工程國家重點實驗室,上海 200237

    石化基聚合物塑料的生產(chǎn)需要消耗不可再生資源,在生產(chǎn)和焚燒過程中排放溫室氣體,降解困難,存在諸多的資源和環(huán)境問題。生物基聚合物采用生物發(fā)酵可再生資源的生產(chǎn)方式,且能自然降解,給上述問題的解決提供了有效的途徑,在國內(nèi)外引起了廣泛關(guān)注[1-4]。聚3-羥基丁酸乳酸酯[P(3HB-co-LA)]是聚羥基脂肪酸酯(PHA)家族的一員。P(3HB-co-LA)的機械性能和物理性能與常規(guī)塑料類似,并具有很多優(yōu)點,如良好的生物降解性、生物相容性和低毒性,可用于生物醫(yī)學(xué)、食品及日常用的高價值材料[5-9]。P(3HB-co-LA)的聚合單體來源于3-羥基丁酸和乳酸。作為共聚物,P(3HB-co-LA)與剛性的聚乳酸(PLA)[10]、不透明且呈脆性的聚3-羥基丁酸(PHB)均聚物相比,彈性和透明度更優(yōu)。這意味著P(3HB-co-LA)具有更廣闊的應(yīng)用前景[11-12]。

    2008年Taguchi等[13]首次在大腸桿菌中成功合成聚羥基丁酸乳酸酯[P(3HB-co-LA)],其中聚合物的乳酸組分的摩爾百分比為6%。為了提高聚合物中乳酸的含量,Yamada等[14]通過厭氧發(fā)酵,將聚合物中乳酸組分的摩爾百分比提高至47%。厭氧培養(yǎng)可以有效積累乳酸,但厭氧培養(yǎng)嚴(yán)重阻礙了菌體的生長,同時阻礙菌體中聚合物的積累,因此聚合物含量僅為2 wt%。同年Yang等[15]通過易錯PCR和飽和突變分別增加了Pctcp對乳酸的底物特異性,以及PhaC1PS6-19對2-羥基丙酰CoA的底物特異性,在添加前體3HB的情況下生產(chǎn)出乳酸組分的摩爾百分比達49%,聚合物含量為53.5 wt%的P(3HB-co-LA)。

    P(3HB-co-LA)中乳酸組分的摩爾百分比的限制條件之一是胞內(nèi)乳酸的生產(chǎn)水平。為了在有氧條件下增加乳酸的積累,需要弱化呼吸鏈水平。Wu等[16]通過敲除輔酶Q8生物合成途徑中的UbiX,引入輔酶Q8合成的底物競爭途徑,減弱呼吸鏈關(guān)鍵成分輔酶Q8的合成,降低呼吸鏈活性,進而在有氧發(fā)酵中實現(xiàn)乳酸積累。本研究采用此調(diào)控新策略,通過減弱呼吸鏈強度來營造細(xì)胞微耗氧能力,希望實現(xiàn)在提高共聚物P(3HB-co-LA)的聚合前體乳酸濃度的同時,減弱厭氧環(huán)境對細(xì)胞生長和聚合物合成造成的影響。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株和質(zhì)粒

    研究所使用的菌株和質(zhì)粒見表1,質(zhì)粒構(gòu)建和基因敲除所使用的引物見表2。

    1.1.2 試劑

    高保真PCR酶primerstar、高保真T4-DNA連接酶、DNA Marker、限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ、SacⅠ和BamHⅠ酶,均購自TaKaRa公司;CloneExpress?MultiS One Step Cloning Kit 試劑盒購自諾唯贊公司;異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷、L-阿拉伯糖、氨芐青霉素、氯霉素等購自捷貝思基因技術(shù)有限公司;瓊脂糖購自阿拉丁試劑公司;膠回收試劑盒,質(zhì)粒小提試劑盒等購自生工生物工程公司;三氯甲烷、甲醇購自國藥集團。

    表1 本文中所用到的質(zhì)粒和菌株Table 1 Plasmids and strains used in this study

    1.1.3 培養(yǎng)基

    種子培養(yǎng)基 (LB液體培養(yǎng)基) 每升含:酵母提取物5 g,胰蛋白胨10 g,氯化鈉10 g,根據(jù)需要加入氨芐青霉素100 mg和氯霉素 34 mg。

    發(fā)酵培養(yǎng)基 (M9培養(yǎng)基) 每升含:葡萄糖20g,Na2HPO4·12H2O 15.1 g,KH2PO43.0g,NaCl 0.5g,NH4Cl 1.0 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,CaCl20.011 g,vitamin B110 mg和微量元素儲存液0.1 mL。按需加入氨芐青霉素100 mg和氯霉素34 mg。不添加乳酸。微量元素儲存液每升含有FeSO4·7H2O 80 g,AlCl3·6H2O10 g,ZnSO4·7H2O2.0g,CuCl2·2H2O 1.0 g,NaMoO4·2H2O2.0 g,MnSO4·H2O 10g,CoCl24.0g,H3BO40.5g。

    1.2 方法

    1.2.1 重組菌的構(gòu)建

    通過基于λ-red 重組系統(tǒng)介導(dǎo)的PCR 產(chǎn)物一步法[17]敲除E.coliMG1655中的ubiX基因,得到單缺失菌JX04。在單缺失菌JX04的基礎(chǔ)上敲除dld基因,得到雙缺失菌JX041。為了增加PHA合成酶(PhaC)對2-羥基丙酰CoA的聚合能力,需要對PhaC設(shè)計氨基酸突變。通過與Taguchi等[13]和Yang等[15]研究中使用的PhaC突變體進行氨基酸序列比對,本實驗中熒光假單胞菌Pseudomonas fluorescensstrain 2P24來源的PhaCm的3個氨基酸突變位點分別設(shè)計為E130D、S325T、Q481K。突變體phaCm基因由生工生物工程公司經(jīng)過密碼子優(yōu)化合成。

    phaA基因通過酶切位點EcoRⅠ和SacⅠ酶切連接到pTrc99a上,phaB基因通過諾唯贊公司的Clone Express?MultiS One Step Cloning Kit試劑盒連接到pTrc99a上,phaCm基因通過酶切位點BamHⅠ和HindⅢ酶切連接到pTrc99a上,這3個基因串聯(lián)構(gòu)建了質(zhì)粒pTrc99aABC。突變體pctth基因來源于丙酸梭菌Clostridium propionicumDSM 1682,包含1個氨基酸突變V193A和4個沉默突變 (T78C,T669C,A1125G,T1158C),通過SacⅠ和SmaⅠ位點酶切連接到pBAD33質(zhì)粒上,將其命名為pBADpctth。

    表2 本文中所用到的引物Table 2 Primers used in this study

    1.2.2 搖瓶發(fā)酵

    重組菌在含有100 mg/L的氨芐青霉素和34 mg/L的氯霉素的LB培養(yǎng)基中37 ℃、220 r/min過夜培養(yǎng)。隨后按1%(V/V)的接種量轉(zhuǎn)入M9培養(yǎng)基中,250 mL搖瓶的裝液量為50 mL,在培養(yǎng)溫度為30 ℃,轉(zhuǎn)速為220 r/min的條件下,發(fā)酵培養(yǎng)48 h,并加不同濃度的IPTG和L-阿拉伯糖誘導(dǎo)。取樣時間點為0、12、24、36、48 h。所有的搖瓶發(fā)酵設(shè)置3個平行,最終結(jié)果為3個平行的平均值。

    1.2.3 HPLC分析

    發(fā)酵過程中葡萄糖、乳酸、乙酸的濃度用HPLC測定。將–20 ℃凍存的上清液常溫解凍后稀釋,用0.22 μm的水相微孔濾膜過濾。檢測條件如下:流動相為2.5 mmol/L稀硫酸,色譜柱為Aminex HPX-87H (Bio-Rad,USA),流速0.5 mL/min,柱溫50 ℃,進樣量20 μL,檢測器為示差檢測器。通過與葡萄糖、乳酸、乙酸標(biāo)樣的標(biāo)準(zhǔn)曲線比對,得出發(fā)酵過程中葡萄糖、乳酸、乙酸的代謝情況。

    1.2.4 聚合物的萃取和分析

    用于氣相檢測的樣品處理方法:將發(fā)酵液冷凍干燥2 d后,稱取約15 mg干菌體,加入1.5 mL氯仿和1.5 mL酯化液 (85 wt%甲醇,15 wt%硫酸,1 g/L苯甲酸) 100 ℃恒溫萃取4 h。冷卻后,加入750 mL的去離子水,旋渦振蕩2 min,3 000 r/min低速離心3 min。取下層 (氯仿層),經(jīng)無水硫酸鈉干燥后,用0.22 μm的有機相微孔濾膜過濾。D-乳酸和3HB標(biāo)樣用同樣的方法處理[18]。

    細(xì)胞中聚合物的含量和單體組成通過GC-2014氣相色譜儀 (島津,日本) 測定。色譜柱為rx-5毛細(xì)管柱,長30 m,內(nèi)徑0.25 mm。檢測器為火焰離子化檢測器。使用高純氮氣為載氣,氫氣為燃?xì)?,空氣為助燃?xì)?。使用AOC-20S型自動化進樣器,乙醇作為清洗劑。GC分析程序為:開始時于54 ℃停留4 min,再以5 ℃/min的速度升溫至125 ℃,隨后以20 °C/min的速度升溫至180 ℃。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 聚羥基丁酸乳酸酯合成途徑的打通

    聚羥基丁酸乳酸酯[P(3HB-co-LA)]的前體為2-羥基丙酰CoA和3-羥基丁酰CoA。其中2-羥基丙酰CoA由乳酸和乙酰CoA經(jīng)過丙酰CoA轉(zhuǎn)移酶突變體 (Pctth) 催化合成,3-羥基丁酰CoA是由乙酰CoA,通過來源于羅爾斯通氏菌Ralstonia eutropha的β-酮基硫解酶 (PhaA) 和NADPH依賴的乙酰乙酰CoA還原酶 (PhaB),經(jīng)過兩步催化轉(zhuǎn)化而成。這兩個前體經(jīng)過來源于Pseudomonas fluorescensstrain 2P24的PHA合成酶突變體(PhaCm) 的聚合形成共聚物,聚合物的代謝途徑如圖1A所示。通過pTrc99a質(zhì)粒表達phaA、phaB和phaCm,構(gòu)建質(zhì)粒pTrc99aABC。通過pBAD33質(zhì)粒表達pctth,構(gòu)建質(zhì)粒 pBADpctth。質(zhì)粒pTrc99aABC和pBADpctth的構(gòu)建如圖1B所示。

    圖1 代謝工程大腸桿菌中P(3HB-co-LA) 合成途徑 (A) 和重組質(zhì)粒pTrc99aABC、pBADpctth構(gòu)建圖 (B)Fig.1 Poly(3-hydroxybutyrate-co-lactate) synthesis pathway in metabolically engineered E.coli (A) and construction of recombinant plasmids pTrc99aABC and pBADpctth (B).The genes shown are as follows: phaA, β-ketothiolase; pctth,evolved propionyl-CoA transferase; phaB, NADPH-dependent acetoacetyl-CoA reductase; phaCm, evolved polyhydroxyalkanoate synthase; ubiX, flavin prenyltransferase; dld, D-lactate dehydrogenase; idi, IPP isomerase.Metabolites shown are as follows: G6P, glucose 6-phosphate; G3P, glyceraldehyde 3-phosphate; PGA,3-phosphoglycerate; PEP, phosphoenolpyruvate; PYR, pyruvate; LA, lactate; LA-CoA, lactyl-CoA; Ac-CoA,acetyl-CoA; IPP, isopentenyl diphosphate; DMAPP, dimethylallyl diphosphate.

    將帶有pTrc99aABC和pBADpctth的重組大腸桿菌命名為MG-01,將攜帶pTrc99aABC和pBAD33質(zhì)粒的重組大腸桿菌命名為MG-C。其中,MG-C不攜帶pctth基因,為對照菌株。氣相結(jié)果顯示,在培養(yǎng)基中不添加乳酸的條件下,不含pctth基因的MG-C菌株發(fā)酵生產(chǎn)的聚合物中不含乳酸組分,即生產(chǎn)的是均聚物PHB。而使用MG-01菌株時,聚合物中有乳酸組分出現(xiàn),聚合物中乳酸組分的摩爾百分比達到1.6%,聚合物含量為83.9 wt%。這表明pctth具有合成2-羥基丙酰CoA的能力。因此通過引入外源的phaA、phaB、pctth和phaCm,我們成功地在大腸桿菌中建立起了聚羥基丁酸乳酸酯合成途徑。

    2.2 調(diào)節(jié)P(3HB-co-LA)合成途徑對聚合物中乳酸單體含量的影響

    2.2.1 不同強度Pctth酶表達的影響

    雖然以上實驗可得到共聚物,但聚合物中乳酸組分的摩爾百分比較低,僅為1.6%,因此推測可能是由于PHA的底物2-羥基丙酰CoA的濃度較低造成的。由圖1可知,在胞內(nèi)積累2-羥基丙酰CoA,最直接的方法就是增強催化乳酸轉(zhuǎn)化為2-羥基丙酰CoA的Pctth酶的催化活性。

    合適的蛋白折疊是發(fā)揮酶生物活性的重要因素,而誘導(dǎo)劑濃度是影響蛋白折疊的重要因素之一[19]。因此,通過設(shè)置誘導(dǎo)劑L-阿拉伯糖的濃度梯度來優(yōu)化Pctth酶的表達。如圖2所示,當(dāng)誘導(dǎo)劑L-阿拉伯糖的濃度從10 mmol/L上升到50 mmol/L時,聚合物中乳酸組分的摩爾百分比也由1.9%上升至4.0%。而pctth基因表達的增強對聚合物在細(xì)胞中的含量影響不大,聚合物含量維持在79 wt%到84 wt%之間。當(dāng)誘導(dǎo)劑L-阿拉伯糖濃度高于40 mmol/L時,聚合物中乳酸含量增加不明顯。這可能是因為盡管隨著誘導(dǎo)劑濃度增加,阿拉伯糖啟動子達到誘導(dǎo)極限,Pctth酶的蛋白表達量幾乎無變化;或者,由于底物乳酸或者輔酶A供應(yīng)的限制,聚合物中乳酸的摩爾百分比無法得到提高?;趯嶒灲Y(jié)果,50 mmol/L的L-阿拉伯糖進行下一步實驗。

    圖2 L-arabinose濃度梯度下聚合物含量及聚合物中LA含量的變化Fig.2 Content changes of polymer and LA fraction with different L-arabinose concentrations.

    2.2.2 不同強度PHA合成途徑的影響

    在聚合物的合成過程中,胞內(nèi)的乙酰CoA既是合成3HB-CoA的底物,又是2-羥基丙酰CoA的輔酶A供體,即2-羥基丙酰CoA的積累與3HB-CoA的生成存在競爭關(guān)系。因此,提高2-羥基丙酰CoA的供應(yīng)需要減弱3HB-CoA的生產(chǎn)。但另一方面,3HB-CoA是P(3HB-co-LA)聚酯合成的引發(fā)劑,是其合成所必需的[20],若胞內(nèi)3HB-CoA的含量太低,不利于聚合物的合成。為了平衡這一矛盾,需要選出合適的IPTG濃度來誘導(dǎo)聚合途徑。

    如圖3所示,當(dāng)IPTG濃度為0.01 mmol/L和0.02 mmol/L時,聚合物中乳酸組分的摩爾百分比均低于1%。這表明當(dāng)IPTG濃度過低時,PHA聚合酶接受底物2-羥基丙酰CoA的效率降低,這同樣影響了聚合物中乳酸組分的摩爾百分比。當(dāng)IPTG濃度為0.05 mmol/L時,聚合物中乳酸組分的摩爾百分比提高到4.2%。當(dāng)IPTG濃度為0.1 mmol/L時,聚合物中乳酸組分的摩爾百分比達到峰值5.1%,此時聚合物占細(xì)胞干重的比例也達到最小值76.2 wt%。當(dāng)IPTG濃度高于0.1 mmol/L,聚合物中的乳酸組分的摩爾百分比略有下降。根據(jù)實驗結(jié)果,選用0.1 mmol/L的IPTG進行下一步實驗。

    圖3 IPTG濃度梯度下聚合物含量及聚合物中乳酸含量的變化Fig.3 Content changes of polymer and LA fraction with different IPTG concentrations.

    2.3 呼吸鏈弱化對聚合物合成前體供應(yīng)的影響

    提高P(3HB-co-LA) 中乳酸單體含量的另一策略是增強胞內(nèi)乳酸的積累。針對重組大腸桿菌MG-01進行了不同裝液量 (50、75和100 mL) 的搖瓶 (250 mL) 發(fā)酵實驗,結(jié)果表明乳酸積累的峰值會隨著裝液量的增加而提高,但會造成較高濃度的乙酸的積累,這會使菌體干重和聚合物含量的下降,從而影響聚合物產(chǎn)量。與此同時,Yamada等[14]在厭氧條件下發(fā)酵生產(chǎn)P(3HB-co-LA)的實驗證明了通氧量降低對菌體生長的影響。Wu等[16]的調(diào)控策略表明通過弱化呼吸鏈水平可以有效積累乳酸,同時減少對菌體生長的影響。輔酶Q8是呼吸鏈的重要組成,通過減弱輔酶Q8的生成,可以弱化呼吸鏈水平。在大腸桿菌中,UbiX和UbiD是一對同工酶,共同參與輔酶Q8生物合成的初期階段,將4-羥基-3-辛?;郊姿?(HP8B)轉(zhuǎn)換為2-辛?;椒?。通過ubiD或ubiX基因的單缺失可以將大腸桿菌中的Q8含量減少至野生型的20%–25%。因此文中構(gòu)建了ubiX基因缺失的突變株JX04 (圖4),擬通過此策略部分降低輔酶Q8的合成,從而減弱突變株的呼吸鏈強度。

    Choi等[21]發(fā)現(xiàn),在接近發(fā)酵后期時,D-乳酸的濃度減少,這是由于dld基因編碼的D-乳酸脫氫酶將D-乳酸反轉(zhuǎn)為丙酮酸。為了消除這一現(xiàn)象對聚合物中乳酸組分的摩爾百分比的影響,如圖4所示,我們在JX04中進一步敲除D-乳酸脫氫酶基因,得到雙缺失菌,將其命名為JX041。

    在添加了20 g/L葡萄糖的M9培養(yǎng)基中搖瓶培養(yǎng)36 h以觀察野生菌和缺失菌的生長和乳酸積累情況。如圖5A所示,與MG1655相比,單缺失菌JX04和雙缺失菌JX041的生長都有所放緩,這是由于弱化呼吸鏈造成的生長遲緩。最終,單缺失菌和雙缺失菌的干重均能達到野生型水平。JX04和JX041消耗的葡萄糖與MG1655相近,MG1655積累較多的乙酸,而JX04和JX041中乳酸的積累量較多,整體pH變化相似。由于聚合途徑未引入,細(xì)胞沒有蛋白過表達及聚合物合成的代謝負(fù)擔(dān),因此弱化呼吸鏈只造成生長遲緩,但未影響到最終的細(xì)胞濃度。

    圖4 ubiX、dld基因敲除菌落PCR驗證電泳圖Fig.4 Agarose gel electrophoresis of PCR identification of ubiX knockout in MG1655 and dld knockout in MG1655ΔubiX.M: marker; C1: MG1655 control group; C2: MG1655ΔubiX control group; 1–4:MG1655ΔubiX; 5–8: MG1655ΔubiXΔdld.

    三種宿主菌的乳酸積累如圖5C所示,JX04和MG1655的乳酸積累均在搖瓶培養(yǎng)的15 h左右達到峰值。其中,單缺失菌JX04的乳酸峰值為0.21 g/L,是野生型MG1655的2倍。這表明弱化呼吸鏈可以有效積累乳酸。與野生型和單缺失菌不同,雙缺失菌JX041在搖瓶培養(yǎng)后期的乳酸濃度呈上升狀態(tài),搖瓶培養(yǎng)終點時乳酸積累達0.28 g/L。這表明D-乳酸脫氫酶基因的敲除有效抑制了乳酸在發(fā)酵后期的利用。值得一提的是,在搖瓶培養(yǎng)結(jié)束時,兩種缺失菌積累的乙酸含量均為0.8 g/L,是野生型的61.5%。這表明,敲除ubiX基因在有效積累乳酸的同時,減少了乙酸副產(chǎn)物的生成。即碳代謝流由積累乙酸的方向轉(zhuǎn)向生成乳酸的方向。

    2.4 弱化呼吸鏈水平對聚羥基丁酸乳酸酯合成的影響

    將包含了pTrc99aABC和pBADpctth質(zhì)粒的野生菌、單缺失菌和雙缺失菌分別命名為MG-01、JX04-01和JX041-01。在M9培養(yǎng)基中添加0.1 mmol/L IPTG、50 mmol/LL-阿拉伯糖和20 g/L葡萄糖,搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)48 h,以評價重組菌的性能。生長方面,如圖6A所示,單缺失菌JX04-01菌體干重為2.5 g/L,雙缺失菌JX041-01菌體的干重為2.6 g/L,分別為MG-01的62.5%和65.0%。菌體干重的差異一方面可能是由于加入雙質(zhì)粒后,外源聚合途徑的引入以及聚合物合成所需要的底物和能量使細(xì)胞代謝負(fù)擔(dān)加大,弱化呼吸鏈造成的細(xì)胞能量差別效應(yīng)也隨之加大,導(dǎo)致了JX04-01和JX041-01生長受到一定的限制。另一方面,大腸桿菌代謝過程中,副產(chǎn)物乙酸的積累會嚴(yán)重影響重組大腸桿菌的蛋白合成與生長。MG-01在聚合物生產(chǎn)過程中積累的乙酸被重新利用,在發(fā)酵后期乙酸濃度降低為0 g/L。與缺失菌相比,MG-01在發(fā)酵過程中可以保持較低的乙酸濃度和更適宜的pH值,因此其菌體干重高于JX04-01和JX041-01。乳酸積累方面,如圖6C所示,加入雙質(zhì)粒后,雙缺失菌JX041-01的乳酸積累在發(fā)酵后期可達1.1 g/L。

    圖5 三種宿主菌的生長和代謝Fig.5 Time-courses of cell density (A), glucose (B), lactate (C), and acetate (D) for three different host strains.

    圖6 3種重組菌的生長、代謝和聚合物生產(chǎn)情況Fig.6 Time-courses of cell density (A), glucose (B), lactate (C), acetate (D) and polymer production (E) for three recombinant strains.

    聚合物生產(chǎn)方面,如圖6E所示,在單缺失菌JX04-01中生產(chǎn)P(3HB-co-LA),乳酸組分的摩爾百分比可由5.1%提高至9.1%。在雙缺失菌中,共聚物中的乳酸組分的摩爾百分比可進一步提高至14.1%,是野生型中的2.8倍。這表明,胞內(nèi)乳酸含量的積累有益于提高聚合物中乳酸組分的摩爾百分比。胞內(nèi)的聚合物含量在3種重組菌中無明顯變化,保持在76.3 wt%–81.7 wt%之間。同時在雙缺失菌中,聚合物產(chǎn)量可達到2.1 g/L,為野生型的68.9%。實驗結(jié)果表明,弱化呼吸鏈水平同時敲除dld基因的策略可有效提高聚合物中乳酸組分的摩爾百分比,聚合物在胞內(nèi)的含量無明顯變化。

    3 結(jié)論

    本研究通過在大腸桿菌中過表達β-酮硫解酶、乙酰乙酰CoA還原酶、丙酰CoA轉(zhuǎn)移酶突變體和PHA合成酶突變體,實現(xiàn)了由葡萄糖一步法合成P(3HB-co-LA)。在最初合成的聚合物中,乳酸組分的摩爾百分比僅為1.6%,為了提高共聚物中乳酸的含量,通過增加L-阿拉伯糖濃度來增強Pctth酶的表達,通過設(shè)置較低的IPTG濃度梯度,在限制碳代謝流流向3HB-CoA方向的同時維持PHA聚合酶的表達,從而將聚合物中乳酸組分的摩爾百分比提高到5.1%,此時聚合物含量為76.2 wt%。

    呼吸鏈中輔酶Q8量的變化能夠引起整個代謝流的重新分配。在敲除黃素異戊烯基轉(zhuǎn)移酶基因 (ubiX) 后,輔酶Q8的生物合成部分受阻,碳代謝流向乳酸方向積累。聚合物中乳酸組分的摩爾百分比提高到9.1%。在此基礎(chǔ)上進一步敲除D-乳酸脫氫酶基因 (dld),減少了乳酸在發(fā)酵后期催化成丙酮酸,聚合物中的乳酸組分的摩爾百分比提高到14.1%,聚合物含量可達81.7 wt%,聚合物產(chǎn)量為2.1 g/L。實驗結(jié)果表明,弱化呼吸鏈水平可有效提高P(3HB-co-LA) 中乳酸組分的摩爾百分比。

    致 謝清華大學(xué)陳國強教授為本研究提供丙酰CoA轉(zhuǎn)移酶突變體基因(pctth),在此表示衷心的感謝!

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