何 慶,劉 帥,周海霞
(德州學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院 功能性生物資源開發(fā)與利用省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東 德州 253023)
胱抑素C(CysC)又稱半胱氨酸蛋白酶抑制劑C,可由人體中所有的有核細(xì)胞產(chǎn)生,其基因表達(dá)速度穩(wěn)定,且無組織特異性[1].人CysC分子量較小,能夠通過腎小球自由濾過,在近曲小管被重吸收并降解,不返回血液,而腎小管上皮細(xì)胞并不向管腔內(nèi)分泌CysC,因此CysC是目前臨床廣泛采用的一種反映腎小球?yàn)V過率變化的理想標(biāo)志物[2-3].目前國外對于人源性CysC蛋白晶體結(jié)構(gòu)以及純化手段研究較為成熟[4-5],但國內(nèi)此類研究和報(bào)道較少,且國內(nèi)目前使用的CysC檢測試劑盒及其核心原料均由國外提供.鑒于CysC蛋白在臨床和檢驗(yàn)中的重要意義,有必要對人cysC基因表達(dá)及蛋白純化、復(fù)性進(jìn)行深入研究,本研究采用基因工程的方法構(gòu)建了人cysC大腸桿菌表達(dá)載體,并探討了CysC蛋白包涵體胞外復(fù)性的方法,為降低體外診斷試劑的成本,提高產(chǎn)品競爭力做出了一定的貢獻(xiàn).
1.1.1 菌種與質(zhì)粒:大腸桿菌E.coli DH5α、BL21菌株由本實(shí)驗(yàn)室保存,原核表達(dá)載體pET32a購自TaKaRa公司.
1.1.2 試劑:BamHⅠ與HindⅢ限制性內(nèi)切酶購自Promega公司;Taq DNA聚合酶、DNA連接酶購自TaKaRa公司;DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)和蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)購自New England Biolabs公司;D人基因組DNA提取試劑盒、細(xì)菌DNA提取試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒等購自O(shè)MEGA公司;十二烷基磺酸鈉、丙烯酰胺、雙丙烯酰胺、異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)及各類抗生素購自Sigma公司;兔抗人CysC多克隆抗體購自美國CST公司;辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記羊抗兔IgG、DAB染色試劑盒購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;人cysC基因引物由上海生工生物工程有限公司合成,上游引物序列:5’-CGGGATCCTCTCCGGGTAAACCGCCG-3’,下游引物序 列 :5’-CCCAAGCTTAGCGTCCTGGCAGGTAGA-3’;8~14ku孔徑透析袋為德國Merck產(chǎn)品.
1.1.3 儀器:PCR擴(kuò)增儀、電轉(zhuǎn)化儀、核酸電泳儀、蛋白電泳儀為Bio-Rad產(chǎn)品;紫外分光光度儀為HITACHI產(chǎn)品.
1.2.1 重組表達(dá)載體及菌株構(gòu)建:以人基因組DNA為模板克隆人cysC基因,回收純化目的片段,采用BamHⅠ與HindⅢ限制性內(nèi)切酶對目的片段進(jìn)行消化,獲得cysC基因片段.將cysC基因片段經(jīng)與BamHⅠ與HindⅢ限制性內(nèi)切酶處理的pET32a原核表達(dá)載體通過DNA連接酶鏈接,獲得重組表達(dá)載體pET32a-cysC.使用電轉(zhuǎn)化將重組表達(dá)載體轉(zhuǎn)入E.coliDH5α感受態(tài)菌株中,挑取平板陽性菌株進(jìn)行培養(yǎng),提取質(zhì)粒DNA進(jìn)行限制性內(nèi)切酶酶切鑒定.同理,使用電轉(zhuǎn)化將經(jīng)鑒定的重組表達(dá)載體pET32a-cysC轉(zhuǎn)入E.coliBL21感受態(tài)菌株中,挑取陽性菌株進(jìn)行培養(yǎng),提取質(zhì)粒DNA進(jìn)行限制性內(nèi)切酶酶切鑒定.
1.2.2 人CysC誘導(dǎo)表達(dá)及鑒定:將經(jīng)鑒定的重組BL21-cysC菌株接種于100ml新鮮LB培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)至對數(shù)生長中期時(shí),加入0.4mmol/L IPTG進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),4h后10000rpm離心培養(yǎng)液,棄上清.5ml PBS緩沖溶液重懸沉淀,并進(jìn)行超聲破碎,采用SDS-PAGE檢測破碎后上清和沉淀中人CysC蛋白表達(dá)情況.
1.2.3 人CysC蛋白純化及復(fù)性:擴(kuò)大培養(yǎng)并收集IPTG誘導(dǎo)培養(yǎng)4h的重組BL21-cysC菌株,超聲破碎,通過鎳柱純化CysC蛋白包涵體及可溶性上清,采用透析法對純化產(chǎn)物進(jìn)行復(fù)性,復(fù)性緩沖液1配方:20mmol/L Tris-HCl、1mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA)、0.5mol/L精氨酸、1.33mmol/L還原性/氧化性谷胱甘肽、0.8mol/L脲,pH=8.0;復(fù)性緩沖液2 配方:20mmol/L Tris-HCl、100mmol/L NaCl、1mmol/L EDTA、0.02%疊氮化鈉,pH=8.0.復(fù)性溫度控制在2~8℃.
1.2.4 復(fù)性后CysC蛋白免疫反應(yīng)性檢測:采用Western Blotting檢測復(fù)性后CysC蛋白免疫反應(yīng)性.
對重組E.coli DH5α菌株質(zhì)粒采用BamHⅠ與HindⅢ限制性內(nèi)切酶,結(jié)果陽性,證明cysC基因表達(dá)載體構(gòu)建成功.見圖1.
圖1 重組質(zhì)粒限制性內(nèi)切酶酶切產(chǎn)物電泳圖(通道1:pET32a-cysC;通道M:DNA分子量標(biāo)準(zhǔn))
從圖2可以看出,沉淀和上清中均有pET32a-cysC蛋白表達(dá),且沉淀中表達(dá)量更高,表明pET32a-cysC蛋白大部分以包涵體形式存在,小部分可溶于上清中.
圖2 IPTG誘導(dǎo)重組BL21-cysC菌株表達(dá)CysC蛋白(通道M:蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn);通道1:超聲破碎后沉淀物;通道2:超聲破碎后上清)
采用Western Blotting檢測純化和復(fù)性后CysC蛋白,圖3中可見分子量約34kD大小的重組CysC蛋白,表明重組CysC蛋白具有一定免疫學(xué)活性.
圖3 純化后CysC蛋白檢測(通道M:蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn);通道1:CysC蛋白純化產(chǎn)物)
圖4 復(fù)性CysC蛋白Western Blotting分析
表達(dá)載體對基因表達(dá)和蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)及其活性具有很大的影響,并能影響蛋白質(zhì)純化及復(fù)性[6].本研究采用pET32a作為cysC基因表達(dá)載體,采用IPTG誘導(dǎo)cysC表達(dá),我們發(fā)現(xiàn)重組CysC在pET32a中盡管大多數(shù)為包涵體形式,但有部分以可溶性形式存在,這與李江峰等[7]報(bào)道CysC在pET28a、pCold1等表達(dá)載體中均已包涵體形式存在有差異.這種差異的實(shí)際益處在于可溶性重組CysC的后續(xù)純化和復(fù)性操作更為簡單.重組CysC蛋白包涵體形成至少與兩方面原因有關(guān),一是CysC蛋白中存在兩個(gè)二硫鍵和較為復(fù)雜的β-片層結(jié)構(gòu),真核生物蛋白在原核表達(dá)載體中表達(dá)及修飾過程中難以進(jìn)行正確折疊,造成疏水基團(tuán)暴露[8];二是與表達(dá)載體使用的蛋白質(zhì)標(biāo)簽所具有的的功能有關(guān),本研究采用的pET32a中使用的是His標(biāo)簽,分子量較小,有利于目標(biāo)蛋白的純化、分析,對其折疊并不會造成太大的影響,有助于在復(fù)性過程中獲得具有更高生物活性的蛋白[9].
包涵體復(fù)性的目的是獲取有生物學(xué)活性的蛋白,是極為關(guān)鍵的步驟.本研究在復(fù)性緩沖液體系中引入還原性/氧化性谷胱甘肽的目的在于促進(jìn)重組CysC蛋白形成正確的的二硫鍵,在其他蛋白表達(dá)時(shí)可根據(jù)特定蛋白二硫鍵數(shù)量適當(dāng)調(diào)整還原性和氧化性谷胱甘肽的比例[10].精氨酸能夠避免復(fù)性中重組CysC蛋白相互聚集,具有穩(wěn)定蛋白質(zhì)的作用.本研究通過Western Blotting檢測分析復(fù)性CysC蛋白的免疫學(xué)活性,結(jié)果顯示有部分重組蛋白表現(xiàn)出免疫學(xué)活性.提示本研究所采用的復(fù)性方法能夠一定程度地恢復(fù)重組蛋白質(zhì)的生物學(xué)活性.
綜上,本研究成功構(gòu)建大腸桿菌cysC表達(dá)重組工程菌,經(jīng)純化、復(fù)性得到的重組CysC蛋白具有一定免疫活性,為今后cysC基因原核表達(dá)和復(fù)性提供了一定借鑒,在一定程度上為今后CysC的生產(chǎn)和臨床應(yīng)用提供了一定方法學(xué)基礎(chǔ).