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      烏頭霜霉病病原菌生物學(xué)特性及致病力

      2019-01-03 02:05:58王婷陳茂婷王卓源周丹王光志
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年21期
      關(guān)鍵詞:孢子囊烏頭霜霉病

      王婷 陳茂婷 王卓源 周丹 王光志

      摘要:通過系統(tǒng)測定烏頭霜霉病病原菌的生物學(xué)特性,研究其致病力,為烏頭霜霉病的深入研究和防治提供理論依據(jù)。采用懸滴法研究環(huán)境條件溫度、pH值、碳源對孢子囊萌發(fā)的影響,采用硫酸法控制小容器內(nèi)相對濕度,測定相對濕度對孢子囊萌發(fā)的影響,并用離體葉盤法接種霜霉菌孢子囊懸浮液觀察烏頭發(fā)病情況并統(tǒng)計病情指數(shù)。結(jié)果顯示,孢子囊在4~25 ℃范圍內(nèi)均可萌發(fā),18 ℃時萌發(fā)率最高;相對濕度低于95%時孢子囊不能萌發(fā),在相對濕度為100%時孢子囊萌發(fā)率最高,水分為孢子囊萌發(fā)的必需條件;孢子囊在pH值為5.74~8.06的條件下均可萌發(fā),且在pH值為5.93 時萌發(fā)率最高;在4種供試碳源的培養(yǎng)條件下,孢子囊都可萌發(fā),其中可溶性淀粉培養(yǎng)條件下孢子囊萌發(fā)率最高。接種48 h后,葉背面初現(xiàn)水漬狀病斑,2.5 d后可以看到明顯病斑,呈彌散型,7 d后病斑開始壞死。觀察期內(nèi),隨著接種時間的延長,病情指數(shù)逐漸升高。該研究明確了不同環(huán)境條件下烏頭霜霉病病原菌的生物學(xué)特性,為該病的深入研究提供了理論依據(jù)。

      關(guān)鍵詞:烏頭;霜霉病;病原菌;孢子囊;生物學(xué)特性;致病力;離體葉盤法;病情指數(shù)

      中圖分類號: S435.67文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

      文章編號:1002-1302(2019)21-0172-03

      收稿日期:2018-08-20

      基金項目:四川省教育廳重點項目(編號:15ZA0098)。

      作者簡介:王婷(1993—),女,四川達(dá)州人,碩士研究生,研究方向為中藥資源學(xué)。E-mail:1747817056@qq.com。

      通信作者:王光志,博士,教授,研究方向為中藥資源學(xué)。E-mail:kzwon@163.com。

      烏頭(Aconitum carmichaelii Debx.)為毛茛科烏頭屬藥用植物,其干燥母根稱川烏,子根的加工品稱附子,均為川產(chǎn)道地藥材,療效好,用量大。烏頭在四川省栽培面積廣,在道地產(chǎn)區(qū)江油地區(qū)有1 900多年的種植歷史。在多年栽培過程中,烏頭病害頻發(fā),其中以根腐病、白絹病、霜霉病對產(chǎn)量的影響較大。霜霉病在苗期尤為普遍,一般發(fā)病率為3%~20%,最高達(dá)30%[1];烏頭霜霉病具有發(fā)病率高、傳染性強(qiáng)的特點,重病苗最后褐化枯死,造成缺株,對附子藥材的產(chǎn)量造成嚴(yán)重影響,也對藥農(nóng)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。余永年在1979年首次對烏頭霜霉病進(jìn)行報道,將該病病原菌鑒定為烏頭霜霉Peronospora aconiti Yu[2],該菌為專性寄生真菌。筆者所在課題組前期對四川省江油地區(qū)烏頭種植基地感病烏頭做了初步探索研究,根據(jù)病原菌形態(tài)學(xué)特征以及rDNA-ITS區(qū)序列對其進(jìn)行了鑒定[3]。本研究探討了烏頭霜霉病致病菌的生物學(xué)特性和致病性特征,以期進(jìn)一步為該病害的深入研究提供理論依據(jù)和基礎(chǔ)。

      1材料與方法

      1.1樣品采集

      烏頭霜霉病病葉采自四川省江油市太平鎮(zhèn)普照村附子種植基地(104°41′27″E、31°43′47″N),海拔512 m。病葉采集后裝于無菌密封袋中,置于采樣箱中帶回。健康葉采自成都中醫(yī)藥大學(xué)藥用植物園內(nèi)栽培的健康植株。以上供試材料的來源均經(jīng)成都中醫(yī)藥大學(xué)中藥資源教研室王光志教授鑒定為毛茛科烏頭屬植物烏頭(A. carmichaeli Debx.)。

      1.2孢子囊懸浮液制備

      用流動自來水將采集病葉表面的泥土等雜質(zhì)沖洗干凈,經(jīng)無菌蒸餾水潤洗后用滅菌濾紙吸干表面水分,在18 ℃、相對濕度為100%的黑暗條件下過夜培養(yǎng)[4]。培養(yǎng)后用無菌毛刷刷下新鮮孢子囊,以無菌蒸餾水配制新鮮孢子囊懸浮液,4層滅菌紗布過濾即得。

      1.3烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)方式觀察

      參照崔鐵軍等的方法[5]并稍作改動,新鮮孢子囊懸浮液在18 ℃下培養(yǎng)24 h后吸取少量懸浮液制片并于顯微鏡下觀察。

      1.4烏頭霜霉病病原菌生物學(xué)特性測定

      1.4.1溫度對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      懸滴法培養(yǎng)新鮮孢子囊懸浮液[6]。分別置于溫度為0、4、10、16、18、22、25 ℃下,于3、6、8、12、24 h后分別鏡檢孢子囊萌發(fā)率,每處理設(shè)3次重復(fù),每重復(fù)觀察不少于200個孢子囊。

      1.4.2相對濕度對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      采取新發(fā)病葉片,將孢子囊彈撒在載玻片上,在干燥器內(nèi)用硫酸法控制濕度[7],置于相對濕度分別為90%、95%、98%、100%的干燥器中,18 ℃下培養(yǎng),以蒸餾水為對照,3、5、10、24、36 h后分別鏡檢孢子囊萌發(fā)率。每處理設(shè)3次重復(fù),每重復(fù)觀察不少于200個孢子囊。

      1.4.3pH值對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      用Na2HPO4和NaH2PO4配制pH值5.74~8.06范圍內(nèi)7個不同梯度的磷酸緩沖液,室溫下懸滴法培養(yǎng),3、6、9、12、24 h后鏡檢孢子囊萌發(fā)率。每處理設(shè)3次重復(fù),每重復(fù)觀察不少于200個孢子囊。

      1.4.4碳源對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      用無菌蒸餾水分別配制葡萄糖、蔗糖、可溶性淀粉及甘油溶液,使其濃度均為5%,室溫下懸滴法培養(yǎng),3、6、9、12、24 h后鏡檢孢子囊萌發(fā)率。每處理設(shè)3次重復(fù),每重復(fù)觀察不少于200個孢子囊。

      1.5烏頭霜霉病病原菌的致病力研究

      取健康烏頭植株頂端第2張至第3張真葉,自來水沖洗干凈表面雜質(zhì),75%乙醇浸泡30 s,滅菌蒸餾水潤洗3次,無菌濾紙吸干表面水分[8]。健康葉片消毒后,取葉尖部分制成直徑為10 mm的葉盤。將葉盤和完整葉片放入0.8%水瓊脂培養(yǎng)皿中,每皿5個葉盤或1張整葉,葉背朝上。每個葉盤點滴法接種35 μL孢子囊懸浮液,整葉均勻點接孢子囊懸浮液,每點5 μL,對照組接種等量滅菌蒸餾水[9]。接種后放置于18 ℃、相對濕度為100%的培養(yǎng)箱中,12 h光照/12 h黑暗條件下培養(yǎng)。每天觀察并拍照記錄離體健康葉的變化,統(tǒng)計病情指數(shù)(烏頭霜霉分級標(biāo)準(zhǔn)見表1),7 d后每天取1組葉片撕取表皮進(jìn)行顯微觀察,直至葉片壞死。

      2結(jié)果與分析

      2.1烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)方式

      如圖1所示,孢子囊以形成芽管的方式萌發(fā),可產(chǎn)生1個或2個芽管,芽管可形成分支,未見游動孢子囊形成。

      2.2溫度對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      在供試溫度范圍內(nèi),0 ℃條件下無孢子囊萌發(fā),4~25 ℃范圍內(nèi)孢子囊均可萌發(fā),但4 ℃條件下前9 h無孢子囊萌發(fā)。孢子囊萌發(fā)率隨溫度升高呈先升高后降低的趨勢,18 ℃ 時達(dá)最大值(表2)。溫度過低或過高都會降低孢子囊萌發(fā)能力。

      2.3相對濕度對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      孢子囊在相對濕度98%~100%范圍內(nèi)可萌發(fā),相對濕度≤95%時,孢子囊不萌發(fā),且相對濕度98%與相對濕度100%條件下孢子囊萌發(fā)率差異較大。在供試相對濕度范圍內(nèi),相對濕度為100%條件下孢子囊萌發(fā)率最高。但對照組蒸餾水條件下孢子囊萌發(fā)率高于供試組(表3)。

      2.4pH值對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      pH值5.74~8.06范圍內(nèi)烏頭霜霉病病原菌孢子囊均可萌發(fā),在pH值為5.93時孢子囊萌發(fā)率最高(表4)。

      2.5碳源對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響

      在4種供試碳源處理下,烏頭霜霉病病原菌孢子囊均可萌發(fā),且以可溶性淀粉作為碳源時孢子囊萌發(fā)率最高(表5)。

      2.6烏頭霜霉菌致病力

      形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果顯示,接種2 d后,葉背面初現(xiàn)水漬狀病斑,病斑新增速度較快,對照組接種點2 d沒有病斑顯現(xiàn)。接種2.5 d后,可看到明顯病斑,呈彌散型。病斑于7 d后增長速度減緩,且葉背開始壞死,壞死病斑呈棕褐色。對照組開始壞死時間與試驗組相差不大。由圖2可知,觀察期內(nèi)隨著培養(yǎng)時間的延長,病情指數(shù)顯著增長,從0增長至77.8%。接種7 d后,孢子囊大量萌發(fā);接種10 d后,葉片開始腐爛。

      3結(jié)論與討論

      余永年于1979年首次對烏頭霜霉病進(jìn)行報道,首次發(fā)現(xiàn)致病菌為霜霉屬新種烏頭霜霉(P. aconiti Yu)?并于1984年補(bǔ)充了對烏頭霜霉卵孢子的描述[2],此后未見烏頭霜霉相關(guān)研究報道。筆者所在課題組歐洪根據(jù)病原菌形態(tài)學(xué)特征以及rDNA-ITS區(qū)序列2個方面對病原菌進(jìn)行了鑒定,明確了病原菌的分類地位;同時初步研究了烏頭霜霉病的傳播機(jī)制,并建立了快速分子檢測病原菌的方法[3]。李娜等以四川省江油地區(qū)栽培烏頭為研究對象,探索了烏頭葉面微生物菌群動態(tài)變化特征及其與烏頭霜霉病的相關(guān)性[10]。江油地區(qū)的藥農(nóng)目前多用多菌靈防治烏頭霜霉病,但效果甚微。關(guān)于烏頭霜霉病病原菌生物學(xué)特性的研究鮮有報道?;诖耍驹囼炘诠P者所在課題組前期鑒定烏頭霜霉病病原菌為烏頭霜霉的基礎(chǔ)上,就不同溫度、pH值、相對濕度、碳源等環(huán)境因素對烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)的影響進(jìn)行了對比分析。

      霜霉目真菌主要通過在菌絲分化的或不分化的孢囊梗上產(chǎn)生孢子囊而進(jìn)行無性繁殖,孢子囊萌發(fā)產(chǎn)生游動孢子或直接產(chǎn)生芽管,然后發(fā)育成菌絲,霜霉屬卵菌的孢子囊萌發(fā)方式為直接萌發(fā)產(chǎn)生芽管[12],單軸霉屬的葡萄霜霉以產(chǎn)生游動孢子的方式萌發(fā)[13]。本試驗觀察到烏頭霜霉僅以孢子囊形成芽管的方式萌發(fā),未見游動孢子釋放。在崔鐵軍等的研究中,寄生霜霉孢子囊萌發(fā)除了以產(chǎn)生芽管的方式外還可以通過形成孢囊梗產(chǎn)生次生孢子囊[5]。烏頭霜霉與寄生霜霉同為于卵菌門(Oomycota)霜霉目(Peronosporales)霜霉科(Peronosporaceae)霜霉屬(Peronospora)。但在本試驗中,未見次生孢子囊。

      初步研究表明,在供試溫度條件范圍內(nèi),孢子囊在4~25 ℃ 范圍內(nèi)均可萌發(fā),但4 ℃條件下孢子囊萌發(fā)率較低且前9 h無孢子囊萌發(fā),0 ℃時孢子囊無萌發(fā)力,孢子囊萌發(fā)的最適溫度為18 ℃。江油地區(qū)的烏頭霜霉病多暴發(fā)于3—4月,這與烏頭霜霉病病原菌萌發(fā)的最適溫度很可能有關(guān)。李金花等在罌粟霜霉病病原菌及其生物學(xué)特性研究中表明,孢子囊在最適溫度16 ℃條件下培養(yǎng)24 h,萌發(fā)率為58.5%[7]。在王艷等對菘藍(lán)霜霉病病原菌生物學(xué)特性研究中,霜霉菌孢子囊在最適溫度16 ℃條件下培養(yǎng)24 h,萌發(fā)率為3400%[13]。本試驗結(jié)果與之相比明顯偏低,這可能是病原菌寄主不同所導(dǎo)致的。

      在供試pH值條件下,孢子囊均可萌發(fā),孢子囊萌發(fā)的最適pH值為5.93,試驗表明弱酸性有利于烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)。劉紹芹對三裂葉豚草霜霉菌生物學(xué)特性研究顯示,在最適pH值8條件下的孢子囊培養(yǎng)12 h,萌發(fā)率為4330%[14]。本試驗顯示,在最適pH值5.93條件下培養(yǎng)24 h,萌發(fā)率為7.25%,這可能與江油烏頭種植地區(qū)土壤酸堿性有關(guān)。這為烏頭霜霉病的防治提供了一條新的思路,也許可以通過調(diào)節(jié)烏頭種植的土壤pH值來降低烏頭霜霉病染病率。此外,在不同pH值的緩沖液中孢子囊萌發(fā)率都比在蒸餾水條件下的孢子囊萌發(fā)率低,這表明不同pH值的緩沖液都可以抑制孢子囊的萌發(fā),對此有待進(jìn)行更深層次的研究。

      在供試相對濕度范圍內(nèi),孢子囊在相對濕度95%以下不能萌發(fā);相對濕度98%時孢子囊萌發(fā)率較低,且前10 h無孢子囊萌發(fā),至24 h孢子囊萌發(fā)率僅為1.00%;相對濕度100%時孢子囊萌發(fā)率達(dá)到最大值,36 h孢子囊萌發(fā)率為11.50%;蒸餾水條件下孢子囊36 h萌發(fā)率則達(dá)到了14.00%,表明水分為孢子囊萌發(fā)的必需條件。而江油地區(qū)3—5月是感染傳播霜霉病的高發(fā)時節(jié),且多雨。在王艷等所做的菘藍(lán)霜霉病原菌及其生物學(xué)特性研究中,相對濕度100%條件下孢子囊36 h萌發(fā)率為3.20%,蒸餾水中孢子囊36 h萌發(fā)率為18.33%[13],本試驗與其結(jié)果相近。

      在葡萄糖、蔗糖、可溶性淀粉和甘油這4種供試碳源中,可溶性淀粉培養(yǎng)條件最適合孢子囊萌發(fā),該條件下培養(yǎng)24 h萌發(fā)率為9.00%。在劉旭等對不同地區(qū)葡萄霜霉病病菌生物學(xué)特性研究中,重慶地區(qū)的葡萄霜霉菌在葡萄糖、麥芽糖、蔗糖這3種碳源條件下培養(yǎng)24 h,孢子囊萌發(fā)率分別為6252%、56.17%、62.16%,陜西地區(qū)的葡萄霜霉菌在這3種碳源條件下培養(yǎng)24 h,孢子囊萌發(fā)率分別為43.75%、3831%、49.47%[15]。不同地區(qū)的同一種霜霉菌在相同條件下的孢子囊萌發(fā)率具有明顯差異,土壤營養(yǎng)成分可能也是影響孢子囊萌發(fā)率的主要因素之一。

      孢子囊懸浮液接種1 d后,葉片表面未觀察到病斑的形成,病情指數(shù)仍然為0,接種2 d后葉背開始出現(xiàn)水漬狀病斑,同時病情指數(shù)經(jīng)統(tǒng)計為11.1%,這與司勝偉觀察的黃瓜霜霉病病情指數(shù)較為接近[16]。之后病斑擴(kuò)散速度較快,病情指數(shù)也隨之增加。接種7 d后病情指數(shù)增長速度放緩,壞死病斑也開始出現(xiàn),但壞死病斑出現(xiàn)時間與李佩芳觀察到的時間[17]有所出入。

      綜上,在離體條件下孢子囊萌發(fā)率均較低,但在烏頭葉片上接種孢子囊懸浮液后,觀察到葉片上的孢子囊?guī)缀跞慨a(chǎn)生芽管萌發(fā),推測寄主選擇性是烏頭霜霉萌發(fā)的重要因素。與其他學(xué)者關(guān)于不同植物的霜霉病病原菌生物學(xué)特性研究結(jié)果相比,烏頭霜霉病病原菌孢子囊萌發(fā)率普遍偏低。如常永義等在全球紅葡萄霜霉病病菌生物學(xué)特性研究中,發(fā)現(xiàn)清水中培養(yǎng)24 h孢子囊萌發(fā)率高達(dá)89.25%[18]。在王艷等的研究中,與烏頭霜霉同為霜霉屬的菘藍(lán)霜霉在清水中最高萌發(fā)率也較低,為34%[13]。這可能與霜霉病病原菌的種屬來源、寄主以及不同霜霉菌萌發(fā)方式不同有關(guān)。鑒于烏頭霜霉菌專性寄生的特點,烏頭霜霉可能只在寄主烏頭葉片上大量萌發(fā),離體情況下無法大量萌發(fā)。本研究明確了烏頭霜霉在不同環(huán)境條件下的生物學(xué)特性及其致病力,旨在為烏頭霜霉病的相關(guān)研究奠定基礎(chǔ),為該病的發(fā)生與防治提供理論依據(jù)。附子及川烏作為川產(chǎn)道地藥材,烏頭霜霉病的發(fā)生嚴(yán)重影響了其產(chǎn)量和質(zhì)量,目前對該病害的發(fā)生和防治均未引起足夠重視。因此,須要盡快開展針對該病害的抗病品種選育工作,從源頭保證烏頭植株的健康,同時還應(yīng)該篩選出高效防治藥劑,從而有效控制烏頭霜霉病的發(fā)生和蔓延。

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