喻大昭 曾凡松
摘要
基因?qū)蚣僬f闡明了病原菌無毒基因(avirulence gene, Avr gene)與寄主植物抗性基因(resistance gene, R gene)相互識別和互作的關(guān)系。禾谷類白粉菌無毒基因產(chǎn)物作為重要的激發(fā)子,能夠與其寄主R基因產(chǎn)物發(fā)生特異性互作,誘導(dǎo)植物細胞防衛(wèi)反應(yīng)。為了更加深入地了解這些無毒基因的作用,作者總結(jié)了最近關(guān)于AVRa1、AVRa10、AVRa13、AVRk1、AvrPm2和AvrPm3a2/f2等已克隆無毒基因的研究進展,討論了它們作為效應(yīng)蛋白(effector)或激發(fā)子的雙重功能,在毒性菌株中的變異規(guī)律,與其對應(yīng)R基因之間的互作模型,以及與轉(zhuǎn)座子等重復(fù)序列之間的關(guān)聯(lián)等。本文還對無毒基因研究方法的改進和未來的研究方向提出了建議。
關(guān)鍵詞
無毒基因; 禾谷類白粉菌
中圖分類號:
S 435.12
文獻標識碼: A
DOI: 10.16688/j.zwbh.2018290
Avirulence genes in cereal powdery mildews
YU Dazhao, ZENG Fansong
(Key Laboratory for Integrated Management of Crop Pests in Central China, Ministry of Agriculture of
China, Hubei Key Laboratory for Control of Crop Diseases, Insect Pests and Weeds, Institute of
Plant Protection and Soil Science, Hubei Academy of Agricultural Sciences, Wuhan 430064, China)
Abstract
The gene-for-gene hypothesis elucidates the recognition and interaction between avirulence gene (Avr gene) of pathogens and resistance gene (R gene) of hosts. Avr protein of the cereal powdery mildew pathogens, as important elicitors inducing defense reaction in plant cells, can interact specifically with the cognate R proteins of their hosts. To further understand the roles played by these Avr genes, we summarized the recent progress in Avr genes like AVRa1, AVRa10, AVRa13, AVRk1, AvrPm2 and AvrPm3a2/f2. The dual function of these avirulence genes acting as effectors or elicitors, their variation in virulent isolates, the interaction models between them and their cognate R genes, as well as their association with repetitive sequences such as transposons were discussed. Better methodologies used for Avr gene studies and future research focus were also suggested.
Key words
avirulence gene; cereal powdery mildews
在符合基因?qū)驅(qū)W說的植物病害中,植物的抗性基因(resistance gene, R gene)與病原菌的無毒基因(avirulence gene, Avr gene)相互識別,激發(fā)植物抗病性[1-2]。大多數(shù)R基因編碼保守的NLR(nucleotide-binding, leucine-rich repeat receptor, NLR)受體類蛋白[3]。R蛋白直接或間接地與其對應(yīng)的無毒基因產(chǎn)物識別,激發(fā)植物細胞過敏性壞死反應(yīng)(hypersensitive reaction, HR)[4]。一方面,在R蛋白施加的選擇壓力作用下,病原菌通過效應(yīng)子(effector)的進化來逃避R蛋白的識別,從而阻止寄主產(chǎn)生防衛(wèi)反應(yīng)[5]。另一方面,由于R蛋白識別的特異性主要是受其富含亮氨酸重復(fù)(leucine-rich repeat,LRR)結(jié)構(gòu)域控制的,植物可以通過LRR結(jié)構(gòu)域中少數(shù)幾個氨基酸的突變對抗性進行修飾[6]。因此,植物R蛋白與病原菌Avr蛋白之間存在著協(xié)同進化關(guān)系。由禾布氏白粉菌Blumeria graminis引起的禾谷類白粉病是大麥和小麥等作物上的重要病害,且白粉菌與其寄主之間存在基因?qū)蜿P(guān)系[7-8]。白粉菌無毒基因的克隆和功能分析不僅有助于從分子層面上理解病原菌毒性變異和與寄主協(xié)同進化的機制,而且有助于建立病原菌致病型快速檢測技術(shù),監(jiān)測病原菌的毒性變異,以便合理有效地利用抗性資源。因此,作者對禾谷類白粉菌無毒基因的來源、克隆、特征、功能、變異及其研究方法等方面進行了歸納和總結(jié)。
1 禾谷類白粉菌效應(yīng)子基因
病原菌通過向植物細胞中注入一類被稱為效應(yīng)子的分泌性毒性因子來抑制植物先天免疫反應(yīng)[9]。在這些效應(yīng)子基因中,一些能夠被植物特定的R蛋白識別的基因被稱為無毒基因[10]。因此,效應(yīng)子基因的鑒定可以為無毒基因的克隆提供候選基因。大麥白粉菌B.graminis f.sp. hordei(Bgh)基因組分析結(jié)果表明,Bgh含有491個N端帶有信號肽的候選分泌性效應(yīng)子蛋白(candidate secreted effector protein, CSEP)[11-12]。在小麥白粉菌B.graminis f.sp.tritici(Bgt)的基因組中鑒定出了437個CSEP編碼基因和165個不含有信號肽的效應(yīng)子基因。
而且,大部分Bgh效應(yīng)子基因(79%)和Bgt效應(yīng)子基因(99%)在吸器中表達,暗示它們可能在禾谷類白粉菌與寄主互作和致病過程中發(fā)揮作用[11, 13]。序列特征分析表明,白粉菌的這些效應(yīng)子基因通常編碼比較小的蛋白,在序列上與其他真菌的基因沒有同源性,它們彼此具有明顯的序列分化[12],說明它們可能靶向寄主細胞中不同的蛋白,執(zhí)行不同的功能。但是,大多數(shù)CSEP的N端信號肽下游含有一個保守的YFWxC基序[14]。該基序的保守性提示它們可能與卵菌效應(yīng)子保守RxLR基序類似,在效應(yīng)子蛋白分泌進入植物細胞過程中起作用[15]。另外,與其他非CSEP基因相比,CSEP基因具有更高的氨基酸替換dN/dS比值,這說明效應(yīng)子基因存在明顯的多樣化選擇趨勢,在與寄主協(xié)同進化過程中具有更快的進化速率[13, 16-17]。
2 禾谷類白粉菌無毒基因的特征和功能
到目前為止,在禾谷類白粉菌無毒基因中,只有少數(shù)幾個被克隆。從20世紀90年代開始,一些植病工作者對Bgh的無毒基因進行了遺傳分析。對菌株雜交后代的分析結(jié)果表明,AVRa6和AVRa7的無毒性均由兩個位點控制[18-20]。最近的研究表明,小麥白粉菌無毒基因AvrPm3位點的情況更加復(fù)雜。對菌株96224與菌株94202的雜交后代表型分析發(fā)現(xiàn),AvrPm3b和AvrPm3d的無毒位點由3個無毒位點控制[21-22]。這些結(jié)果說明多個基因參與了白粉菌與寄主之間的識別和互作。
AVRk1和AVRa10是最早從禾谷類白粉菌中克隆的無毒基因,這兩個基因?qū)儆谝粋€含有1 350個旁系同源物的大家族,EKA(effector homologous to AVRk1 and AVRa10)基因家族。功能分析證明,它們能夠分別與大麥的Mlk1、Mla10互作,激發(fā)寄主防衛(wèi)反應(yīng)。相反,這兩個基因在感病品種中表達時,則會促進病原菌的侵入[7]。這些結(jié)果反映出白粉菌無毒基因的雙重功能,即在非親和互作中的激發(fā)寄主免疫反應(yīng)功能和在親和互作中壓制寄主防衛(wèi)反應(yīng)的功能。最近,從Bgh中克隆了兩個無毒基因AVRa1和AVRa13,雖然它們在序列上沒有相關(guān)性,但都能分別被大麥等位基因Mla1和Mla13識別,說明病原菌已經(jīng)進化出用序列上完全不相關(guān)的無毒基因與序列上相似的R基因識別的互作模式[23]。
從Bgt中克隆的第一個無毒基因是對應(yīng)于小麥R基因Pm3a和Pm3f的AvrPm3a2/f2[21]。這個基因是一個典型的CSEP編碼基因。具有該基因的菌株能夠被Pm3a和Pm3f識別。除了這個基因參與了對無毒性的控制之外,還存在著一個抑制基因(suppressor,Svr)對AvrPm3a2/f2起調(diào)控作用。當Svr基因起作用時,AvrPm3a2/f2表達水平不足以滿足其與R基因識別,因此也不足以激發(fā)寄主防衛(wèi)反應(yīng)。相反,當Svr基因突變?yōu)闆]有功能的svr基因時,足量的AvrPm3a2/f2才能完成與R基因的互作,誘導(dǎo)寄主抗病反應(yīng)。這種模式使得病原菌在不改變無毒基因序列的情況下,也能夠通過另外一個基因在轉(zhuǎn)錄水平上的調(diào)控,逃避其與R基因的識別,從而增強了病原菌的適應(yīng)性[8]。而且,這一互作模型證明多個基因參與了AvrPm3與Pm3的互作,不僅豐富了基因?qū)驅(qū)W說的內(nèi)容,而且說明了病原菌無毒基因與寄主R基因互作的復(fù)雜性。
最近,我們與瑞士蘇黎世大學(xué)Beat Keller教授的研究團隊合作,從Bgt中克隆了另一個無毒基因AvrPm2。它編碼的蛋白N端含有21個氨基酸的信號肽,其信號肽下游具有保守的YFWxC基序,同時還含有卵菌的RxLR基序,具有典型CSEP的特征,能夠與Pm2識別并激發(fā)寄主細胞HR反應(yīng)[24]。AvrPm2在結(jié)構(gòu)上與已知的RNase類核糖核酸酶具有同源性,如大麥白粉菌BEC1011(Bgh effector candidate)和BEC1054。BEC1011參與抑制寄主細胞HR反應(yīng)[25],BEC1054則能夠與多個大麥蛋白互作,且對于吸器的形成是必需的。這兩個效應(yīng)子都參與了Bgh對大麥的致病過程[26]。這些結(jié)果說明AvrPm2可能也具有像AVRa10和AVRk1那樣的雙重功能。而且,RNase類核糖核酸酶可能是禾谷類白粉菌無毒基因的另一大來源。
3 禾谷類白粉菌無毒基因的變異
在寄主R基因施加的選擇壓力下,病原菌會通過無毒基因的變異產(chǎn)生對含有相應(yīng)的R基因植株表現(xiàn)親和的菌株。從目前已知的白粉菌無毒基因中,我們發(fā)現(xiàn)在無毒菌株與毒性菌株之間至少存在4種變異類型:單個氨基酸突變、連續(xù)氨基酸突變、插入突變和基因缺失。Bgt對Pm2的表型改變是由于AvrPm2所在基因組區(qū)域的12 kb的大片段缺失造成的。大片段的缺失可能是與旁側(cè)copia轉(zhuǎn)座子的同源重組事件有關(guān)。而且,在禾谷類白粉菌的另外兩種?;停邴湴追劬鶥.graminis f.sp. secalis和小黑麥白粉菌B.graminis f.sp. triticale中,保守的AvrPm2等位基因也存在類似12 kb的缺失[24]。這反映出無毒基因與其寄主R基因的協(xié)同進化關(guān)系。比較無毒菌株與毒性菌株的AVRk1序列發(fā)現(xiàn)三種變異:1)點突變導(dǎo)致蛋白提前終止;2)核苷酸插入導(dǎo)致移碼突變;3)連續(xù)多個氨基酸的突變。AVRa10的序列變異包括單個氨基酸的改變和單個堿基插入導(dǎo)致的移碼突變[7]。小麥白粉菌AvrPm3a2/f2在毒性菌株中由于兩個氨基酸的差異而不能被Pm3a和Pm3f識別[21,27]。Bgh的AVRa1的點突變還有能夠?qū)е聼o毒基因功能喪失的例子[23]。另外,Bgh對Mla13親和的毒性菌株要么通過無毒基因AVRa13提前終止,要么通過基因3′端一段連續(xù)的氨基酸突變來獲得毒性[23]。以上這些變異類型在其他真菌無毒基因中均有報道。例如,油菜莖基潰瘍病菌Leptosphaeria maculans的AvrLm1以及稻瘟病Magnaporthe oryzae的AVR-Pia、AVR-Pii和AVR-Pik/km/kp[28-29]。稻瘟菌對Pib的毒性不僅可以通過AvrPib的點突變、基因缺失(或片段缺失)來獲得,而且可以通過轉(zhuǎn)座子的插入來實現(xiàn)[30]。盡管白粉菌無毒基因的變異與轉(zhuǎn)座子等重復(fù)序列密切相關(guān),但目前還沒有在白粉菌中發(fā)現(xiàn)由于轉(zhuǎn)座子插入帶來的毒性變異。除上面提到的AvrPm2之外,Bgh無毒基因AVRa10和AVRk1所在基因家族的成員均與I型長散布核原件(long interspersed nuclear elements, LINE-1)反轉(zhuǎn)座子家族(TE1a)共進化,新的變異類型可能從大量的與AVRa10和AVRk1同源的基因中進化而來[31]。
4 禾谷類白粉菌無毒基因的克隆方法
截至目前,在禾谷類白粉菌中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的無毒基因(位點)中,絕大多數(shù)是通過圖位克隆的方法鑒定的[8]。這種經(jīng)典的遺傳學(xué)方法在沒有基因組序列的時代發(fā)揮了重要作用。但是,在沒有參考基因組的情況下,由于重復(fù)序列的存在,通過在很寬的連鎖標記區(qū)域進行染色體步移來獲得無毒基因并不是十分高效。禾谷類白粉菌基因組序列的公布[11,13]為白粉菌基因的克隆和功能解析提供了非常實用的工具,顯著提高了白粉菌無毒基因克隆的速度。AvrPm3a2/f2是第一個被克隆的小麥白粉菌無毒基因,該基因的克隆采用了二代測序技術(shù)和高通量基因型鑒定技術(shù)相結(jié)合的策略,大大提高了圖位克隆的效率[21]。近年來,由于測序通量的提高和成本的降低,為組學(xué)分析技術(shù)在無毒基因鑒定中的應(yīng)用帶來了更大的空間。Praz等利用來自不同地區(qū)60個菌株的基因組序列,進行了全基因組關(guān)聯(lián)分析,成功克隆了AvrPm2[24]。這一套數(shù)據(jù)可以用于多個無毒基因的篩選和克隆,避免了重復(fù)構(gòu)建雜交群體的工作。最近的AVRa1和AVRa13候選基因的克隆也采用了基于測序獲得的SNP關(guān)聯(lián)分析法,不同的是,SNP數(shù)據(jù)是來自對侵染葉片轉(zhuǎn)錄組的測序[23]。考慮到大多數(shù)效應(yīng)子基因在吸器中表達,這種策略有效地縮小了篩選范圍,而且減少了其他基因和不表達的效應(yīng)子基因的干擾。然而,白粉菌基因組含有大量的重復(fù)序列,這些序列的存在給無毒基因的克隆帶來困難[11,32]。在未來的研究中,利用自然群體和雜交群體的多組學(xué)數(shù)據(jù),直接靶向編碼基因的分析策略將使得無毒基因的克隆變得更加高效。
5 展望
雖然禾谷類白粉菌無毒基因的研究在最近幾年取得了顯著的進展,但還有很多方面需要進一步闡明。LINE-1類無毒基因AVRa10和AVRk1具有與轉(zhuǎn)座子重復(fù)序列密切相關(guān)的序列特征[31],這類無毒基因編碼產(chǎn)物是如何分別與Mla10、Mlk1互作,激發(fā)寄主防衛(wèi)反應(yīng)的? AvrPm2編碼的Avr蛋白在序列上和結(jié)構(gòu)上與RNase相似,且能夠激活Pm2介導(dǎo)的寄主細胞HR反應(yīng)[24],但仍然沒有明確兩者之間的互作是直接的還是間接的。這是因為AvrPm2與Bgh的AVRa13在序列上具有相似性,但是Pm2與Mla13在序列上卻沒有相似性。如果發(fā)生直接的互作,那么這些序列上沒有相關(guān)性且來源于不同寄主的R蛋白是如何被序列上相似的Avr蛋白識別的? 可能的解釋是AvrPm2和AVRa13均能夠與寄主中1個保守的警衛(wèi)蛋白(guardee)互作,且這個蛋白的變化能夠被Pm2和MLA13監(jiān)視。那么這些蛋白是如何行使其功能的,與Pm2之間是如何識別的還有待研究。對AvrPm3a2/f2起調(diào)控作用的基因Svr編碼一個效應(yīng)子,與已知的調(diào)控蛋白(例如轉(zhuǎn)錄因子或信號蛋白等)沒有序列相似性[21],那么這個基因是如何調(diào)節(jié)AvrPm3a2/f2的表達量的?下一步采用生物化學(xué)方法對這些蛋白進行深入的研究將有助于加深從分子層面了解無毒基因與R基因之間的互作機制。另外,盡管可以利用基因槍轉(zhuǎn)化方法對基因進行瞬時表達驗證,但仍然費時耗力,建立高效穩(wěn)定的白粉菌遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)體系將助力無毒基因的遺傳驗證。
參考文獻
[1] FLOR H H.Current status of the gene for gene concept[J]. Annual Review of Phytopathology,1971, 9(1):275-296.
[2] JONES J D, DANGL J L. The plant immune system [J]. Nature,2006, 444(7117):323-329.
[3] DODDS P N, RATHJEN J P. Plant immunity: Towards an integrated view of plant-pathogen interactions [J]. Nature Reviews Genetics, 2010, 11(8):539-548.
[4] MOFFETT P, FARNHAM G, PEART J, et al. Interaction between domains of a plant NBS-LRR protein in disease resistance-related cell death [J].The EMBO Journal,2002, 21(17):4511-4519.
[5] BOLLER T, HE S Y. Innate immunity in plants: an arms race between pattern recognition receptors in plants and effectors in microbial pathogens [J]. Science,2009, 324(5928):742-744.
[6] BRUNNER S, HURNI S, STRECKEISEN P, et al. Intragenic allele pyramiding combines different specificities of wheat Pm3 resistance alleles [J].Plant Journal, 2010, 64(3):433-445.
[7] RIDOUT C J, SKAMNIOTI P, PORRITT O, et al. Multiple avirulence paralogues in cereal powdery mildew fungi may contribute to parasite fitness and defeat of plant resistance[J]. The Plant Cell,2006, 18(9):2402-2414.
[8] BOURRAS S, MCNALLY K E, MULLER M C, et al. Avirulence genes in cereal powdery mildews: The gene-for-gene hypothesis 2.0 [J]. Frontiers in Plant Science,2016, 7:241.
[9] RAFIQI M, ELLIS J G, LUDOWICI V A, et al. Challenges and progress towards understanding the role of effectors in plant-fungal interactions [J]. Current Opinion Plant Biology,2012, 15(4):477-482.
[10] RAFIQI M, BERNOUX M, ELLIS J G, et al. In the trenches of plant pathogen recognition: Role of NB-LRR proteins [J].Seminars in Cell & Developmental Biology,2009, 20(9):1017-1024.
[11] SPANU P, ABBOTT J, AMSELEM J,et al. Genome expansion and gene loss in powdery mildew fungi reveal tradeoffs in extreme parasitism [J].Science,2010,330(6010):1543-1546.
[12] PEDERSEN C, THEMAAT E V L, MCGUFFIN L J, et al. Structure and evolution of barley powdery mildew effector candidates [J]. BMC Genomics,2012, 13:694.
[13] WICKER T, OBERHAENSLI S, PARLANGE F, et al. The wheat powdery mildew genome shows the unique evolution of an obligate biotroph [J].Nature Genetics,2013,45(9):1092-1096.
[14] GODFREY D, BHLENIUS H, PEDERSEN C, et al. Powdery mildew fungal effector candidates share N-terminal Y/F/WxC-motif [J].BMC Genomics, 2010, 11:317.
[15] WHISSON S C, BOEVINK P C, MOLELEKI L, et al. A translocation signal for delivery of oomycete effector proteins into host plant cells [J]. Nature,2007, 450(7166):115-118.
[16] MENARDO F, PRAZ C R, WICKER T, et al. Rapid turnover of effectors in grass powdery mildew (Blumeria graminis)[J]. BMC Evolutionary Biology, 2017, 17(1):223.
[17] BOURRAS S, PRAZ C R, SPANU P D, et al. Cereal powdery mildew effectors: a complex toolbox for an obligate pathogen[J]. Current Opinion in Microbiology,2018, 46:26-33.
[18] CAFFIER V. Segregation of avirulences and genetic basis of infection types in Erysiphe graminis f.sp. hordei [J].Phytopathology, 1996, 86(10):1112-1121.
[19] BROWN J K M, LE BOULAIRE S, EVANS N. Genetics of responses to morpholine-type fungicides and of avirulences in Erysiphe graminis f.sp. hordei [J].European Journal of Plant Pathology, 1996, 102(5):479-490.
[20] BROWN J K M, JESSOP A C. Genetics of avirulences in Erysiphe graminis f.sp. hordei [J].Plant Pathology,1995,44(6):1039-1049.
[21] BOURRAS S, MCNALLY K, BEN-DAVID R, et al. Multiple avirulence loci and allele-specific effector recognition control the Pm3 race-specific resistance of wheat to powdery mildew [J].Plant Cell, 2015, 27(10):2991.