張光耀, 莊正陵, 楊進波
(1宜城市人民醫(yī)院骨科, 湖北 宜城 430071; 湖北醫(yī)藥學院附屬襄陽市第一人民醫(yī)院 2骨科, 3檢驗科, 湖北 襄陽 441000)
骨肉瘤是一種常見的人類惡性骨腫瘤,多發(fā)于青少年,其發(fā)病率位于第3位,僅次于淋巴瘤和腦腫瘤,具有惡性程度高和易發(fā)生轉移的特點[1-2]。目前常用的治療手段是輔助化療、手術切除轉移灶以及術后化療,但30%~40%轉移骨肉瘤患者對化療的敏感性差,5年生存率較低,且易復發(fā)[3]。因此遠處轉移與復發(fā)是影響骨肉瘤治療與預后的重要因素。炎癥反應是導致腫瘤發(fā)生甚至復發(fā)的重要因素之一。機體發(fā)生損傷和感染可導致炎癥反應,誘導細胞發(fā)生惡變,引起DNA損傷,激活原癌基因或促進抑癌基因異常表達,從而導致腫瘤的產生[4-5],提示炎癥因子以及炎癥反應通路對骨肉瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關。血清淀粉樣蛋白A(serum amyloid A,SAA)是一種炎癥相關反應蛋白,當機體發(fā)生感染、腫瘤和創(chuàng)傷時,SAA的表達量顯著上調[6]。研究表明,SAA可作為一種腫瘤診斷和預防的非特異性標記物,與骨肉瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關[7]。因此,本研究通過小干擾RNA(small interfering RNA,siRNA)技術沉默SAA在骨肉瘤細胞中的表達,探究SAA在骨肉瘤中的發(fā)生、發(fā)展中的作用以及可能的作用機制。
人骨肉瘤細胞系U2OS購自ATCC;DMEM培養(yǎng)基、Opti-MEM無血清培養(yǎng)基、胎牛血清和胰蛋白酶購自Gibco;二甲基亞砜(dimethyl sulphoxide,DMSO)購自Sigma;細胞培養(yǎng)板購自Costar;siRNA由Santa Cruz Biotechnology合成;細胞裂解液和細胞活力檢測試劑盒購自蘇州碧云天生物技術研究所;細胞凋亡檢測試劑盒購自北京四正柏公司;Lipofectamine 2000購自Life Tech;兔抗人SAA抗體和兔抗人β-肌動蛋白(β-actin)抗體購自Abcam;兔抗人磷酸化p38絲裂原活化蛋白激酶(phosphorylated p38 mitogen-activated protein kinases,p-p38 MAPK)抗體購自Cell Signaling Technology;兔抗人磷酸化c-Jun氨基末端激酶(phosphorylated c-Jun N-terminal kinase,p-JNK)抗體和辣根酶標記的山羊抗兔或鼠IgG購自北京中杉金橋有限公司。-80 ℃冰箱購自中國海爾公司;移液器購自Eppendorf;電泳儀和轉膜槽購自Bio-Rad;CO2培養(yǎng)箱購自Heraeus。
2.1細胞的培養(yǎng) 人骨肉瘤細胞系U2OS培養(yǎng)于含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細胞融合度為95%左右,棄去培養(yǎng)基,加入0.25%胰酶-EDTA消化1 min,倒置顯微鏡中觀察到細胞完全脫落,加入15 mL完全培養(yǎng)基,吹打均勻,封裝在3個培養(yǎng)瓶中,置于37 ℃、5% CO2的細胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。
2.2細胞的干預 轉染前24 h,將細胞培養(yǎng)液更換為不含血清的DMEM培養(yǎng)基,置于37 ℃、5% CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至細胞融合度為80%左右,進行轉染。實驗分為空白對照(control)組、陰性對照(negative control siRNA,NC-siRNA)組和實驗組(SAA-siRNA),其中陰性對照組和實驗組分別轉染NC-siRNA和SAA-siRNA,空白對照組不做任何處理。轉染時,將siRNA和Lipofectamine 2000與Opti-MEM不含血清培養(yǎng)基混合均勻,參照Lipofectamine 2000轉染說明書進行操作,轉染6 h后更換為完全培養(yǎng)基,常規(guī)培養(yǎng)48 h后收集細胞進行后續(xù)實驗。Western blot法檢測各組細胞中SAA的蛋白表達。
2.3細胞活力的檢測 轉染前24 h,將骨肉瘤細胞U2OS接種于96孔培養(yǎng)板上,每孔1×104個細胞,每組4個復孔,培養(yǎng)24 h,根據(jù)方法2.2轉染各組細胞,CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)48 h,每孔加入新鮮的20 μL MTT試劑,CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育4 h,棄去上清液,每孔細胞加入200 μL DMSO,振蕩混勻10 min,采用酶標儀檢測490 nm波長下的吸光度(A)值,實驗重復3次,取其平均值。
2.4細胞凋亡情況的檢測 轉染前24 h,將骨肉瘤細胞U2OS接種于6孔培養(yǎng)板上,每孔1×105個細胞,轉染后繼續(xù)培養(yǎng)48 h,收集細胞,加入緩沖液調節(jié)細胞濃度至1×109/L,吸取100 μL細胞重懸液加入5 mL離心管中,加入5 μL Annexin V-FITC和1 μL 碘化丙啶(propidium iodide,PI),混勻,25 ℃避光反應15 min,加入400 μL緩沖液,1 h內上機測定細胞凋亡率,實驗重復3次。
2.5細胞侵襲和遷移能力的檢測 侵襲實驗中將Matrigel置于4 ℃過夜融化,與無血清培養(yǎng)基按1 ∶3的比例充分混勻,取25 μL加入Transwell小室上室中,37 ℃通風30 min,使Matrigel充分聚合成膠。磷酸鹽緩沖液(phosphate-buffered saline,PBS)清洗各組細胞,加入無血清培養(yǎng)基重新懸浮細胞,調整細胞濃度為5×108/L,吸取100 μL細胞懸浮液加入Transwell小室上室中,同時加入200 μL無血清培養(yǎng)基。Transwell小室下室中500 μL含血清的培養(yǎng)基作為趨化因子,置于5% CO2、37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,濕棉簽輕輕拭去上室膜的細胞和凝膠,預冷的4%甲醛固定30 min,蘇木素染色1 min,梯度乙醇脫水,隨機選取6個視野計數(shù)侵襲細胞,每組5個復孔,實驗重復3次,取平均值。遷移實驗中Transwell小室上室膜不加入Matrigel,其余步驟同侵襲實驗。
2.6Western blot檢測細胞MAPK信號通路相關蛋白的水平 收集含有各組細胞的培養(yǎng)基,1 000 r/min離心5min,棄去上清,加入1 mL 含PMSF的RIPA裂解混合液,置于冰上反應20~30 min,4 ℃離心10 min,上清即為所提取蛋白質。100 ℃煮10 min使蛋白質變性。清洗玻璃板,按比例配置10%的分離膠和5%濃縮膠,插入梳子。將凝膠與玻璃板置于電泳槽中,拔出梳子,加入電泳液至玻璃板上沿,取適量蛋白樣品加入上樣孔,90 V電壓電泳至Marker條帶分離,電壓調整為120 V,待溴酚藍遷移至分離膠底部,停止電泳。切除多余的凝膠,組裝轉膜裝置,調整電流至200 mA,置于冰上反應90 min。將條帶放入5%封閉液中,常溫封閉1~2 h;置于搖床上Tris-HCl緩沖鹽溶液+Tween(TBST)洗滌3次,每次5 min,加入適量 I 抗稀釋液,4 ℃過夜。搖床上TBST洗滌3次,每次5 min,加入適量 II 抗稀釋液,搖床上振蕩2 h,TBST洗滌3次,每次5 min,加入發(fā)光劑A、B液發(fā)光,成像儀中拍照,分析蛋白的相對表達水平。
實驗全部數(shù)據(jù)采用SPSS 22.0軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),各組均數(shù)間的兩兩比較采用SNK-q檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
采用Western blot檢測SAA蛋白在骨肉瘤細胞中的表達量,結果顯示,SAA-siRNA能在蛋白水平上顯著下調SAA水平,與空白對照組比較差異具有統(tǒng)計學顯著性(P<0.01),陰性對照組與空白對照組間差異無統(tǒng)計學顯著性,見圖1。
采用MTT法檢測siRNA靶向下調SAA表達對骨肉瘤細胞活力的影響,結果顯示,特異性下調SAA表達降低骨肉瘤細胞的活力,與空白對照組比較差異具有統(tǒng)計學顯著性(P<0.01),陰性對照組與空白對照組間的差異無統(tǒng)計學顯著性,見圖2。
Figure 1.The protein expression of SAA in the osteosarcoma cells. Mean±SD. n=3. **P<0.01 vs control group.
Figure 2.The effect of down-regulation of SAA expression on the viability of osteosarcoma cells. Mean±SD. n=3. ** P<0.01 vs control group.
采用Annexin V-FITC/PI雙染法檢測siRNA靶向下調SAA表達對骨肉瘤細胞凋亡的影響,結果顯示,特異性下調SAA表達增加骨肉瘤細胞的凋亡率,與空白對照組比較差異具有統(tǒng)計學顯著性(P<0.01),陰性對照組與空白對照組間的差異無無統(tǒng)計學顯著性,見圖3。
通過Transwell小室侵襲實驗檢測siRNA靶向下調SAA表達對骨肉瘤細胞侵襲的影響,結果顯示,特異性下調SAA表達抑制骨肉瘤細胞的侵襲能力,與空白對照組比較差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),陰性對照組與空白對照組間細胞的侵襲能力的差異無統(tǒng)計學顯著性,見圖4。
Figure 3.The effect of down-regulation of SAA expression on the apoptosis of osteosarcoma cells. Mean±SD. n=3. **P<0.01 vs control group.
Figure 4. The effect of down-regulation of SAA expression on invasion of osteosarcoma cells (scale bar=20 μm). Mean±SD. n=3. ** P<0.01 vs control group.
通過Transwell小室遷移實驗檢測siRNA靶向下調SAA表達對骨肉瘤細胞遷移的影響,結果顯示,特異性下調SAA表達抑制骨肉瘤細胞的遷移能力,與空白對照組比較差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),陰性對照組與空白對照組比較差異無統(tǒng)計學顯著性,見圖5。
Figure 5. The effect of down-regulation of SAA expression on migration of osteosarcoma cells (scale bar=20 μm). Mean±SD. n=3. ** P<0.01 vs control group.
Western blot檢測骨肉瘤細胞中MAPK信號通路相關蛋白的表達量,結果顯示,特異性下調SAA表達可抑制p-JNK和p-p38蛋白的水平,與空白對照組間差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),但總JNK和p38蛋白的水平差異無統(tǒng)計學顯著性;陰性對照組與空白對照組細胞的p-JNK和p-p38蛋白水平量的差異也無統(tǒng)計學顯著性,見圖6。
SAA是一種敏感的炎癥反應蛋白,直接參與炎癥反應過程。既往研究表明,在機體異常狀態(tài),SAA能誘導中性粒細胞和單核細胞產生腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α),并可誘導中性粒細胞產生白細胞介素8(interleukin-8,IL-8)和白細胞介素6(interleukin-6,IL-6 )[8-10]。SAA與中性粒細胞聯(lián)合作用促進細胞因子的釋放,引起血管內皮發(fā)生損傷和功能障礙。研究證實,SAA通過調控MAPK參與腎小球硬化以及腎小管間質纖維化過程[11-12]。近年來的研究表明,SAA與腫瘤的發(fā)生密切相關[13-14]。SAA不僅在正常組織中表達,在腫瘤組織比如肺癌、前列腺癌、骨肉瘤和結直腸癌中的水平明顯升高,提示SAA可作為腫瘤非特異性標記物以及預防、診斷的檢測因子[15-18]。SAA的表達水平受多種因素的調節(jié),與各種細胞信號通路的激活與抑制密切相關[19]。在本研究中,通過siRNA技術特異性沉默SAA在骨肉瘤中的水平,結果顯示,實驗組骨肉瘤細胞中SAA蛋白的表達量明顯降低;MTT法檢測結果顯示細胞的活力受到抑制;Annexin V-FITC/PI雙染法檢測細胞的凋亡率,結果表明下調骨肉瘤細胞中SAA的水平促進細胞凋亡;Transwell法檢測細胞的轉移能力發(fā)現(xiàn),降低骨肉瘤細胞中SAA的水平可抑制骨肉瘤細胞侵襲和遷移能力,提示SAA參與骨肉瘤發(fā)生發(fā)展過程,且增強腫瘤細胞的增殖以及轉移能力,但其具體的作用機制尚不完全清楚。
機體在正常情況下,細胞的增殖與凋亡處于動態(tài)平衡中,一旦打破這種平衡,則誘導腫瘤的發(fā)生;細胞的侵襲和遷移能力與腫瘤發(fā)生遠端轉移和預后密切相關[20-22]。細胞的增殖與凋亡、轉移是一個復雜的過程,直接受多種基因、細胞因子、信號傳導的調控[23]。細胞外多數(shù)信號傳導途徑均參與腫瘤細胞的增殖、凋亡、侵襲、遷移過程。MAPK信號通路在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮關鍵作用,參與腫瘤的產生、轉移等過程[24-26]。p38 MAPK和JNK是MAPK家族中的重要成員之一,受外界多種信號因子的調控,參與腫瘤細胞的增殖、分化、侵襲和遷移等過程[27-29]。研究表明,p38 MAPK和JNK活性的降低抑制了骨肉瘤細胞的侵襲、遷移能力[30]。本研究的結果顯示,特異性下調SAA在骨肉瘤中的表達量可抑制p38和JNK磷酸化水平,對總JNK和p38蛋白的表達量無明顯影響,表明SAA能夠激活p38 MAPK和JNK信號通路,激活p38 MAPK和JNK信號通路可能是SAA促進骨肉瘤細胞生長、凋亡和轉移的作用機制之一。
綜上所述,下調SAA的表達可抑制骨肉瘤細胞的生長,促進其凋亡,降低細胞的轉移能力,可能是通過p38 MAPK和JNK信號通路發(fā)揮其主要作用,提示下調SAA具有較好的誘導骨肉瘤細胞凋亡和抑制其轉移能力的作用,SAA有可能成為治療骨肉瘤的新靶標,在預防和治療骨肉瘤方面具有良好的應用前景。