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    杜氏鹽藻LYCB基因克隆及在鹽脅迫下的表達(dá)分析

    2018-10-22 09:05:54安茜周雅莉宋亞楠岳敏趙熙寧王計(jì)平李潤(rùn)植
    關(guān)鍵詞:杜氏番茄紅素胡蘿卜素

    安茜,周雅莉,宋亞楠,岳敏,趙熙寧,王計(jì)平,李潤(rùn)植

    (山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 分子農(nóng)業(yè)與生物能源研究所,山西 太谷 030801)

    杜氏鹽藻(DunaliellaSalina) 是一種無細(xì)胞壁,可以在高鹽、高溫條件下生存的光合自養(yǎng)的單細(xì)胞真核綠藻,是迄今為止發(fā)現(xiàn)的最耐鹽的生物之一[1]。它能高水平富集類胡蘿卜素,糖類及油脂等,可作為天然的優(yōu)質(zhì)保健品,具有較高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和商業(yè)價(jià)值。盡管對(duì)杜氏鹽藻耐鹽機(jī)制和類胡蘿卜素等天然產(chǎn)物的代謝機(jī)理進(jìn)行了諸多研究,但類胡蘿卜素生物合成及其調(diào)控網(wǎng)絡(luò)還有待深入解析[2,3]。

    類胡蘿卜素是一種天然色素,廣泛分布于微生物和植物光合組織中[4]。它是一種含8個(gè)異戊二烯單位的四萜類化合物, 由2個(gè)二萜縮合而成[5]。植物類胡蘿卜素生物合成的前體物質(zhì)為異戊烯二磷酸(isopenteny diphosphate, IPP)[6~8]。IPP可在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上由乙酰CoA經(jīng)羥甲基戊二酰-CoA途徑(mevalonate, MVA)合成, 更多的是在質(zhì)體內(nèi)由磷酸甘油醛與丙酮酸經(jīng)2-C-甲基-D-赤蘚糖醇-4-磷酸途徑(2-C-methyl-D-erythritol-4-phosphate, MEP)合成[6~8]。形成的IPP經(jīng)多次縮合生成第一個(gè)類胡蘿卜素即八氫番茄紅素(phytoene),再經(jīng)脫氫、環(huán)化、羥基化、環(huán)氧化等生物化學(xué)反應(yīng)轉(zhuǎn)變?yōu)槠渌惡}卜素。

    番茄紅素(lycopene)環(huán)化是植物體內(nèi)類胡蘿卜素生物合成途徑中的一個(gè)重要部分,它是由番茄紅素 β-環(huán)化酶(lycopene β-cyclase, LYCB)和番茄紅素 ε-環(huán)化酶(lycopene ε-cyclase,LYCE)共同催化[9]。在合成β-胡蘿卜素時(shí),LYCB經(jīng)過2次催化反應(yīng)將番茄紅素先轉(zhuǎn)化為γ-胡蘿卜素,然后再生成β-胡蘿卜素(β-carotene)。在合成α-胡蘿卜素時(shí),番茄紅素先在LYCE催化下,生成δ-胡蘿卜素,然后再在LYCB催化下,生成α-胡蘿卜素(α-carotene)。但是,在萵苣中有一種特殊的LYCE,可以將番茄紅素催化生成ε-胡蘿卜素[10]。Stickforth等在藍(lán)細(xì)菌中分離并鑒定了一種新的環(huán)化酶,可催化形成β-環(huán)和ε-環(huán),將番茄紅素催化生成α-胡蘿卜素[11]。

    番茄紅素β-環(huán)化酶(LYCB)是β-胡蘿卜素合成途過程的關(guān)鍵酶之一,其在基因轉(zhuǎn)錄活性水平上影響著上游番茄紅素和下游β-胡蘿卜素等產(chǎn)物的積累。Moreno等發(fā)現(xiàn)超量表達(dá)DcLCYb1胡蘿卜中β-胡蘿卜素顯著提高,而沉默DcLCYb1時(shí)會(huì)降低β-胡蘿卜素的含量[12];柑橘中LCYB表達(dá)量下調(diào)會(huì)導(dǎo)致番茄紅素的積累[13~15]。因此,本研究選用從運(yùn)城鹽湖中分離獲得的一株生長(zhǎng)較好,β-胡蘿卜素含量較高的杜氏鹽藻株系Ds-YC011為試驗(yàn)材料,通過高保真PCR擴(kuò)增,獲得DsLYCB基因的cDNA克隆,并應(yīng)用生物信息學(xué)手段分析該酶蛋白理化性質(zhì)。同時(shí),采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)分析在高鹽(3 mol·L-1NaCl)脅迫下,DsLYCB的表達(dá)模式,進(jìn)一步測(cè)試了藻細(xì)胞中β-胡蘿卜素含量的變化。本文為進(jìn)一步研究DsLYCB的功能及作用機(jī)制奠定了基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    1.1.1 藻種及培養(yǎng)

    杜氏鹽藻(Dunaliellasalina)株系Ds-YC011由山西農(nóng)業(yè)大學(xué)分子農(nóng)業(yè)與生物能源所從山西運(yùn)城鹽湖分離和保存。鹽藻培養(yǎng)基為DM培養(yǎng)基,25 ℃,1 250 lx光強(qiáng),光暗比1∶1,每天搖瓶2~3次。RNA 提取試劑Trizol 購(gòu)自 Invitrogen 公司,AMV 第一鏈 cDNA 合成試劑盒為abm試劑盒,凝膠回收試劑盒和質(zhì)粒DNA提取試劑盒購(gòu)自北京天根生物公司。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 杜氏鹽藻總RNA的提取

    取生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)期的本地鹽藻,收集藻細(xì)胞,按照Trizol法提取鹽藻總RNA。-80 ℃保存,備用。

    1.2.2 杜氏鹽藻LYCB基因的擴(kuò)增

    參考abm試劑盒使用方法進(jìn)行操作。用經(jīng)過濃度和純度測(cè)定后的總RNA作為模板,反轉(zhuǎn)錄的反應(yīng)體系參照說明書,反應(yīng)條件:25 ℃,10 min;42 ℃,15 min;85 ℃,5min,得到的cDNA用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。依據(jù) GeneBank 中杜氏鹽藻(D.salina)DsLYCB基因轉(zhuǎn)錄本序列 (EU327 876.1)設(shè)計(jì)擴(kuò)增全長(zhǎng)的引物L(fēng)YCB-F:5’-CGCGGATCCATGCAGGCCCTGCAGCAA-3’和LYCB-R:5’-CCCAAGCTTTCAACTTTTTTGTCCTTGCG-3’。高保真RT-PCR 反應(yīng)采用Pfu DNA Polymerase 酶,反應(yīng)體系參照說明書,反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性5 min,58 ℃退火30 s, 68 ℃延伸2 min 30 s,30 次循環(huán),68 ℃ 保溫 15 min,16 ℃ 15 min。將所有擴(kuò)增片斷純化回收后連接到PMD18-T 載體上,轉(zhuǎn)入感受態(tài)大腸桿菌DH5-α中,篩選出陽性克隆,提取質(zhì)粒DNA送通用生物公司(安徽) 測(cè)序。

    1.2.3DsLYCB的生物信息學(xué)分析

    將上述獲得的序列在NCBI-ORF(Open Reading Frame,ORF)中查找其開放閱讀框并將核酸、氨基酸進(jìn)行比對(duì)[16]。通 過 ExPASy-ProParam 工具(http://www.expasy.ch/tools/protparam.htmL)對(duì)該蛋白質(zhì)進(jìn)行基本的理化性質(zhì)分析。利用ProtScale對(duì)該蛋白序列進(jìn)行親水性/疏水性分析。利用SOPMA軟件(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/np)預(yù)測(cè)并分析蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu),采用SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org/repository/)同源建模數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)該蛋白進(jìn)行三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)[17]。應(yīng)用 CBS預(yù)測(cè)信號(hào)肽、轉(zhuǎn)運(yùn)肽及其跨膜結(jié)構(gòu)域[18,19]。利用MEGA 7.0 軟件采用NJ 法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹[20]。

    1.2.4 熒光定量RT-PCR(qRT-PCR)分析

    向正常條件(1.5 mol·L-1NaCl)培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的鹽藻培養(yǎng)液中添加固體NaCl,使其終濃度達(dá)到3 mol·L-1,在25 ℃下進(jìn)行培養(yǎng)。分別提取高鹽脅迫0 h(對(duì)照)、1、4、12、24 h 的鹽藻的總RNA。3個(gè)生物學(xué)重復(fù)提取藻細(xì)胞總RNA。用核酸濃度儀測(cè)定提取的總RNA 的純度和濃度。取各RNA 樣品2 μL用于反轉(zhuǎn)錄。DsLYCB基因熒光定量引物為:LYCB-F:5’-TGCAAATGCTCTTTGTCCTG-3’和LYCB-R:5’-CCCTGTCTGCGTAGTCATCA-3’,18 S內(nèi)參引物為:

    N-1∶5’-TTGGGTAGTCGGGCTGGTC-3’,N-2∶5’-CGCTGCGTTCTTCATCGTT-3’[21]。熒光定量PCR反應(yīng)體系為:Eva Green 2X qPCR 反應(yīng)液5 μL,上下游引物各0.3 μL,cDNA 模板0.5 μL,ddH2O 3.9 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性10 min;95 ℃變性15 s,57 ℃退火1 min,40個(gè)循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后確認(rèn)擴(kuò)增曲線和融解曲線。采用2-ΔΔCt法計(jì)算DsLYCB基因的相對(duì)表達(dá)量含量[22]。通過SPSS 軟件對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    1.2.5 杜氏鹽藻類胡蘿卜素的提取及其含量的測(cè)定

    經(jīng)高鹽處理后的杜氏鹽藻,分別取脅迫0 h(對(duì)照)、1、4、12、24 h的藻液20 mL,采用周靜等人[23]的方法提取類胡蘿卜素并測(cè)定其含量。

    2 結(jié)果

    2.1 杜氏鹽藻LYCB基因克隆

    對(duì)源于鹽藻藻株Ds-YC011藻細(xì)胞cDNA進(jìn)行高保真RT-PCR擴(kuò)增目標(biāo)cDNA, 擴(kuò)增產(chǎn)物電泳分離結(jié)果(圖1)顯示,RT-PCR反應(yīng)擴(kuò)增出一條長(zhǎng)度約為1 970 bp的目標(biāo)條帶。經(jīng)測(cè)序獲得1 910 bp的核苷酸序列。編碼區(qū)序列與NCBI GeneBank 中杜氏鹽藻LYCB基因(EU327 876.1)序列比對(duì)結(jié)果表明,從Ds-YC011鹽藻株系擴(kuò)增的DsLYCBcDNA克隆與GeneBank中錄入的杜氏鹽藻LYCB基因核酸序列有4%的差異,但推測(cè)的氨基酸序列無差異。這表明分離獲得了正確的DsLYCBcDNA克隆。

    圖1 杜氏鹽藻DsLCYB基因的 cDNA克隆Fig.1 cDNA clone of DsLCYB gene in D. salina注:M為Marker;A、B、C為DsLYCB全長(zhǎng)Note: M is Marker; A, B, C are full length of DsLYCB

    2.2 杜氏鹽藻DsLCYB酶蛋白特性的生物信息學(xué)分析

    上述擴(kuò)增到的杜氏鹽藻DsLCYB基因cDNA全長(zhǎng)為1 910 bp,其中 5’非翻譯為 83 bp,3’非翻譯為72 bp,開放閱讀框(ORF)1 755 bp(核苷酸序列位置84~1 838),編碼 584 個(gè)(核苷酸序列位置84~1 838),編碼 584 個(gè)氨基酸的蛋白質(zhì)(圖2)。

    推導(dǎo)的該蛋白質(zhì)理論等電點(diǎn)(pI) 為 7.66,相對(duì)分子質(zhì)量64 541.99Da。負(fù)電荷殘基(Asp+Glu)數(shù)為57,正電荷殘基(Arg+Lys)數(shù)為58,不穩(wěn)定系數(shù)為35.32,因此將該蛋白歸為穩(wěn)定蛋白,其疏水性平均值為-0.183,表現(xiàn)為親水性,無明顯的疏水區(qū)域。DsLCYB基因編碼氨基酸序列通過 ProtScale 軟件進(jìn)行親水性/疏水性分析,結(jié)果表明,杜氏鹽藻DsLCYB蛋白第152 位 Arg疏水性最強(qiáng),分值達(dá)到-2.530,第104 位Ile親水性最強(qiáng),分值達(dá)到1.380,預(yù)測(cè)該蛋白為疏水性蛋白(圖3)。在CBS 軟件上對(duì)杜氏鹽藻DsLCYB 蛋白進(jìn)行的亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè),其結(jié)果表明,杜氏鹽藻DsLCYB 蛋白沒有信號(hào)肽和跨膜區(qū)域,為非分泌蛋白,該蛋白定位在葉綠體。二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)顯示,無規(guī)則卷曲占39.73%,α-螺旋占39.9%。使用SWISS-Model 在線預(yù)測(cè)分析 DsLCYB 蛋白3D結(jié)構(gòu)(圖4)顯示,結(jié)果表明與二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)一致。

    圖2 杜氏鹽藻DsLCYB 基因cDNA全長(zhǎng)及其推導(dǎo)氨基酸序列Fig.2 DsLCYB gene cDNA sequence and its deduced amino acid sequence

    圖3 杜氏鹽藻DsLCYB蛋白疏水性預(yù)測(cè)Fig.3 Prediction of DsLCYB protein hydrophobicity

    圖4 杜氏鹽藻DsLCYB蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)模擬Fig.4 3 D structure of DsLCYB protein from Dunaliella salina

    2.3 杜氏鹽藻DsLYCB與其他植物L(fēng)YCB蛋白系統(tǒng)進(jìn)化分析

    以DsLYCB 蛋白序列為搜索序列。對(duì)NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行 Blast分析。從BLAST獲得序列中選取與DsLYCB同源性較高的 12 個(gè)物種的LYCB蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。 這12個(gè)LYCB蛋白分別來自雨生紅球藻(Haematococcuslacustris)、佐夫色綠藻(Chromochloriszofingiensis)、萊茵衣(Chlamydomonaseustigma)、團(tuán)藻(Volvoxcarterif.nagariensis)、單針藻(Monoraphidiumneglectum)、膠球藻(CoccomyxasubellipsoideaC-169)、微茫藻(Micractiniumconductrix)、原殼小球(Auxenochlorellaprotothecoides)、克萊門柚(Citrusclementina)、山崳菜(Eutremasalsugineum)、江南卷柏(Selaginellamoellendorffii)和風(fēng)疹薺菜(Capsellarubella)。結(jié)果(圖5)顯示:這12個(gè)LYCB蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹共分為兩大支,即8個(gè)藻類LYCB聚為一枝,4個(gè)高等植物的LYCB聚為另一枝。杜氏鹽藻DsLYCB與雨生紅球藻LYCB蛋白親緣關(guān)系最近, 與萊茵衣藻LYCB蛋白親緣關(guān)系次之。

    2.4 杜氏鹽藻DsLYCB在高鹽脅迫下的表達(dá)分析及其對(duì)類胡蘿卜素積累的影響

    提取的各樣品藻細(xì)胞總RNA,經(jīng)核酸濃度儀測(cè)定OD260/280均在1.8~2.2,可以用作隨后cDNA合成和熒光定量PCR檢測(cè)DsLYCB基因的表達(dá)譜。定量表達(dá)分析結(jié)果(圖6)表明,高鹽脅迫下,DsLYCB基因表達(dá)量明顯上升,在脅迫4 h時(shí)表達(dá)量達(dá)到峰值,為正常生長(zhǎng)條件(1.5 mol·L-1)下的2倍,差異達(dá)到著水平(P<0.05)。在脅迫后期,DsLYCB表達(dá)量逐漸下降,但仍顯著高于對(duì)照正常條件下表達(dá)量。說明DsLYCB基因?yàn)辂}脅迫上調(diào)表達(dá)基因。對(duì)高鹽脅迫處理?xiàng)l件下杜氏鹽藻藻細(xì)胞中類胡蘿卜素含量測(cè)試(圖7)顯示,隨著高鹽脅迫時(shí)間增加,杜氏鹽藻類胡蘿卜素含量呈現(xiàn)上升趨勢(shì),在脅迫1~4 h期間增加最快,12 h后類胡蘿卜素含量趨于穩(wěn)定。顯然,在高鹽脅迫條件下,DsLYCB基因表達(dá)譜變化模式與藻細(xì)胞富集類胡蘿卜素動(dòng)態(tài)過程呈正相關(guān)性。

    圖5 杜氏鹽藻DsLYCB與其他12種植物L(fēng)YCB蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.5 Phylogenetic tree of the LYCB proteins from Dunaliella salina and other 12 organisms

    圖6 杜氏鹽藻DsLYCB基因在3 mol·L-1鹽脅迫下表達(dá)量變化Fig.6 Expression of DsLYCB gene in Dunaliella salina at 3 mol·L-1 salt stress

    圖7 高鹽脅迫對(duì)杜氏鹽藻類胡蘿卜素積累的變化Fig.7 Effect of high salt stress on carotenoid acculmulation in Dunaliella salina

    3 討論

    藻類類胡蘿卜素合成途徑與植物相似,在類胡蘿卜素合成過程中,番茄紅素 β- 環(huán)化酶(LYCB)在類胡蘿卜素次生代謝途徑中可直接將番茄紅素催化生成β-胡蘿卜素。2006年,陶俊等從枇杷中分離并獲得番茄紅素β-環(huán)化酶基因的片段[24];張建成等從紅肉臍橙中克隆到β-環(huán)化酶基因片段[25];同時(shí)LYCB基因也應(yīng)用于轉(zhuǎn)基因工程技術(shù)中,梁燕等從胡蘿卜獲得番茄紅素β-環(huán)化酶的反義RNA并將該基因轉(zhuǎn)入煙草細(xì)胞中,結(jié)果發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)化胡蘿卜株組織中的胡蘿卜素含量相對(duì)較高[26]。晏露等從杜氏鹽藻中克隆到番茄紅素β-環(huán)化(LYCB)基因[27]。杜氏鹽藻在極端條件下可以大量積累類胡蘿卜素,但是,在這些研究中,分離得到的大多為cDNA序列,但是對(duì)其作用機(jī)理研究較少。

    本研究從運(yùn)城鹽湖分離的一株鹽藻(Ds-YC011)中擴(kuò)增獲得DsLYCB基因的cDNA全長(zhǎng)序列,利用生物信息學(xué)對(duì)該基因氨基酸的特性及其空間結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析和預(yù)測(cè),并且研究了在高鹽脅迫下不同時(shí)期的表達(dá)量的變化及類胡蘿卜素含量的變化。杜氏鹽藻LYCB全長(zhǎng)1 910 bp,開放閱讀框(ORF)長(zhǎng)1 769 bp,編碼584個(gè)氨基酸。LYCB為不穩(wěn)定親水性蛋白,無跨膜結(jié)構(gòu)。二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)顯示該蛋白分子中α-螺旋結(jié)構(gòu)最多,占39.9%。同源比對(duì)結(jié)果表明,杜氏藻DsLYCB蛋白與雨生紅球藻親緣關(guān)系最近。經(jīng)過高鹽脅迫,DsLYCB基因的表達(dá)量隨著脅迫時(shí)間的增加呈先升高后緩慢降低的趨勢(shì),但總體表達(dá)量顯著高于對(duì)照。類胡卜素含量隨著脅迫時(shí)間的增加,表現(xiàn)為先上升后基本穩(wěn)定的趨勢(shì),但類胡蘿卜素含量總體高于對(duì)照。高鹽脅迫上調(diào)杜氏鹽藻DsLYCB基因的表達(dá)量,且DsLYCB基因表達(dá)譜與類胡蘿卜素富集模式相吻合。

    本研究通過克隆獲得了杜氏鹽藻DsLYCB基因 cDNA 全長(zhǎng)序列,對(duì)其進(jìn)行了生物信息學(xué)分析,并對(duì)其進(jìn)行鹽脅迫表達(dá)分析,為在杜氏鹽藻中DsLCYB調(diào)節(jié)β-胡蘿卜素生物合成的分子機(jī)制奠定了分子基礎(chǔ)。

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