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    分離純化胰島細(xì)胞超薄切片的瓊脂預(yù)包埋制備方法

    2018-10-19 06:23:30首都醫(yī)科大學(xué)100069金良韻姬曼孫竹林
    首都食品與醫(yī)藥 2018年5期
    關(guān)鍵詞:膠原酶透射電鏡離心管

    首都醫(yī)科大學(xué)(100069)金良韻 姬曼 孫竹林

    利用電子顯微鏡對樣品進(jìn)行觀察和研究,不僅要有先進(jìn)精密的儀器,更要有制備樣品所需的各種技術(shù)技巧[1]。由于胰島細(xì)胞體積小,分布分散,給電鏡取材造成了困難;而在人類胰島細(xì)胞數(shù)量龐大,僅占胰腺總體積的1%~2%,如常規(guī)電鏡取材則費(fèi)時(shí)費(fèi)力。本研究采用了膠原酶Ⅺ灌注法對小鼠進(jìn)行取材,避免了取不到胰島細(xì)胞的尷尬。同時(shí)采用瓊脂預(yù)包埋的方法,該方法對樣品進(jìn)行多次離心沉淀不會損傷樣品超微結(jié)構(gòu)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動物 健康C57/6J雄性小鼠

    1.2 主要儀器設(shè)備與試劑 ①超薄切片機(jī)(leica UC7),透射電鏡(HITACHI HT7700)。②戊二醛、鋨酸、乙醇、丙酮、Epon812、醋酸雙氧鈾、檸檬酸鉛,均購自美國EMS(Electron microscopy science)公司。瓊脂糖為美國Sigma公司產(chǎn)品。膠原酶Ⅺ(#C7657)為美國Sigma-Aldrich公司產(chǎn)品。

    1.3 方法

    1.3.1 分離、純化胰島細(xì)胞團(tuán) 將小鼠麻醉,打開腹腔充分暴露十二指腸及周邊胰腺,探查膽總管,用動脈夾夾閉靠近十二指腸的乳頭處,經(jīng)膽總管注射2.5mL膠原酶Ⅺ溶液,可見膠原酶沿胰尾順序充盈,再將其胰尾及其他部分完整摘取,放入50mL離心管中,38℃水浴箱消化10min,加入遇冷HBSS緩沖液至40mL停止消化,1400rpm離心1min,棄掉上清液,重復(fù)離心3次。加入4℃ Histopaque1077 7mL重懸,再沿離心管管壁緩慢加入4℃DMEM培養(yǎng)基7mL,可見離心管內(nèi)液體分液,2000rpm,離心10min。并緩慢吸出兩液間的胰島移至含有6mLHBSS的細(xì)胞培養(yǎng)皿(60mm)中。在體式顯微鏡下,用移液槍挑取完整胰島,將挑取出來的胰島放入另一個(gè)含有6mLHBSS的細(xì)胞培養(yǎng)皿(60mm)中,手動挑取重懸胰島3次。

    1.3.2 戊二醛預(yù)固定 在培養(yǎng)皿中加入預(yù)冷的4℃戊二醛3~5mL,固定10min,再將液體移至離心管中,離心1500rmp,10min,棄掉上清,重復(fù)加入預(yù)冷的戊二醛,放入4℃冰箱固定2h。后去掉上清液,加入0.1MPB緩沖液洗3次,每次10min。待后續(xù)包埋。

    1.3.3 瓊脂預(yù)包埋 用0.1MPB緩沖液配制瓊脂,將其配成2%瓊脂溶液,用酒精燈加熱至瓊脂完全溶解,待瓊脂溶液溫度降到43℃,仍然保持溶液狀態(tài)。將胰島細(xì)胞離心(1500rpm,5min),吸出離心管中的PB緩沖液,僅留少量緩沖液浸過胰島細(xì)胞,待瓊脂溶液溫度降至43℃,向胰島細(xì)胞離心管中快速加入適量液態(tài)的2%瓊脂溶液,再加入適量PB,迅速離心(1500rpm,3~5min),胰島細(xì)胞呈團(tuán)狀同瓊脂塊一同沉于離心管底,放入4℃冰箱中凝固。

    1.3.4 鋨酸后固定 用1%鋨酸對其進(jìn)行后固定,時(shí)間以不超過2h為宜。固定后樣品組織呈黑色,將帶有胰島細(xì)胞的塊狀瓊脂取出,并向其修整為1mm3的小塊,再放入試管中繼續(xù)后續(xù)步驟。雙蒸水對細(xì)胞清洗3次,每次10min。

    1.3.5 脫水、置換、滲透及包埋 分別對其進(jìn)行50%、70%、90%、100%酒精脫水,每次10min;環(huán)氧丙烷置換2次,每次15min;Epon812樹脂低純度(1∶1)滲透40min室溫,中純度(1∶3)滲透40min室溫,純樹脂滲透40min室溫。包埋聚合35℃5h,60℃5h,70℃9h。

    1.3.6 超薄切片 將聚合完成的樹脂塊在leica UC7徠卡切片機(jī)上切成70nm厚度的超薄切片。撈至100目的銅網(wǎng),待紅外線烘干后,醋酸雙氧鈾染色20min,檸檬酸鉛染色2min,蒸餾水沖洗后于透射電鏡(HITACHI HT7700)下觀察。

    2 結(jié)果

    超薄電鏡下(透射電鏡HT7700)觀察胰島細(xì)胞,核為圓形,核膜清晰完整,核周間隙正常,胞質(zhì)內(nèi)可見結(jié)構(gòu)清晰的線粒體、核糖體、粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等細(xì)胞器,另可見較多的內(nèi)分泌顆粒,多數(shù)為胰島B細(xì)胞的分泌顆粒,內(nèi)部為胰島素,少數(shù)為其他類型的內(nèi)分泌顆粒,均獲得結(jié)構(gòu)清晰完整的胰島細(xì)胞。

    附圖1、附圖2 小鼠胰腺細(xì)胞。可見細(xì)胞膜界限清晰、細(xì)胞核完整、胞漿內(nèi)見大量內(nèi)分泌顆粒。透射電鏡×2000倍、×2500倍。

    附圖3、附圖4 小鼠胰腺細(xì)胞。細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)清晰、可見細(xì)胞膜間連接,胞漿內(nèi)見大量內(nèi)分泌顆粒和線粒體。透射電鏡×3000倍、×4000倍。

    3 討論

    要想獲得最終完美的電鏡圖像,每一個(gè)步驟都會是其影響因素,因此在制作過程中不能放過任何一個(gè)細(xì)節(jié)。本實(shí)驗(yàn)的取材采取了膠原酶Ⅺ灌注法,并用瓊脂預(yù)包埋的方法,成功地得到了小鼠胰島細(xì)胞的透射電鏡樣品,獲得了良好的超微結(jié)構(gòu)。張旭東等[2]利用直接取材法也成功得到了胰島細(xì)胞的超薄切片,但本實(shí)驗(yàn)方法的優(yōu)點(diǎn)在于:①制成樹脂包埋塊以后無需半薄定位,直接超薄切片,避免反復(fù)定位,更快速,省去時(shí)間成本。②直接取材的方法,經(jīng)常定位不準(zhǔn)確,取不到有效區(qū)域,則需要重新取樣,反而費(fèi)時(shí)費(fèi)力。而本實(shí)驗(yàn)可以做到精準(zhǔn)取材,高速有效,能夠在有限的觀察視野下,看到更多的胰島細(xì)胞。而后利用瓊脂預(yù)包埋法,把相對松散又細(xì)小的胰島細(xì)胞集中在一起,更加提高了超薄切片上的有效區(qū)域,有利于實(shí)驗(yàn)人員更為全面地觀察和判斷胰島細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)。本實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵不是瓊脂的濃度,而是瓊脂低熔點(diǎn)的特性,在高溫煮沸瓊脂后將溫度降至40℃時(shí),瓊脂仍然為液體狀態(tài),加入后與胰島細(xì)胞混合,離心,待溫度降到40℃以下時(shí)則瓊脂凝固,此時(shí)胰島細(xì)胞已經(jīng)離心、團(tuán)聚至瓊脂最下方。此外,瓊脂的低熔點(diǎn)也避免了細(xì)胞內(nèi)超微結(jié)構(gòu)受損。除了瓊脂低熔點(diǎn)的特性以外,膠原酶Ⅺ的濃度和時(shí)間也是決定獲取胰島細(xì)胞多與少的關(guān)鍵因素:如若濃度過低或時(shí)間過短,會使胰島尚未完全分離,而外分泌腺則會混入其中;若濃度過高或時(shí)間過長,則會破壞胰島包膜,消化過度。

    本實(shí)驗(yàn)方法中需要注意的細(xì)節(jié)有:①鋨酸進(jìn)行后固定以后,帶有瓊脂的胰島細(xì)胞會顯色,被氧化成黑色,需要修掉多余的瓊脂塊,最后留少量瓊脂,以便后續(xù)的脫水和滲透。如果瓊脂濃度過高也不利于脫水和滲透。②將瓊脂加入到胰島細(xì)胞時(shí)的溫度:溫度過高容易燙損細(xì)胞,溫度過低容易使瓊脂凝固,無法離心沉淀。

    綜上所述,本實(shí)驗(yàn)通過膠原酶Ⅺ灌注的方法取材,后經(jīng)利用低熔點(diǎn)瓊脂預(yù)包埋,成功制備出胰島細(xì)胞的超薄切片,可有效獲得數(shù)量較多的并且超微結(jié)構(gòu)不受損傷的胰島細(xì)胞結(jié)構(gòu)。在利用膠原酶Ⅺ灌注取材的時(shí)候會相對比直接取材相對更費(fèi)事,但是這種方法可以在制樣后段有效地提高工作效率,并對胰島調(diào)節(jié)血糖的機(jī)制提供了可靠而有效的方法。

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