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    神經(jīng)營養(yǎng)因子-3聯(lián)合全反式維甲酸與β-巰基乙醇誘導(dǎo)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化效果比較

    2018-10-18 01:20:28張杰秦華麗蔣明

    張杰,秦華麗,蔣明

    (1.溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院 耳鼻咽喉頭頸外科,浙江 溫州 325015;2.長(zhǎng)沙市婦幼保健院 耳鼻咽喉頭頸外科,湖南 長(zhǎng)沙 410007;3.中南大學(xué)湘雅三醫(yī)院 耳鼻咽喉頭頸外科,湖南 長(zhǎng)沙 410013)

    近年來骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)治療神經(jīng)退行性病變?nèi)找媸艿綄W(xué)者重視。BMSCs具有高度自我復(fù)制能力和多向分化潛能,且在適宜條件下能向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化[1]。目前最常見的誘導(dǎo)劑為神經(jīng)營養(yǎng)因子與化學(xué)制劑。本研究比較堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)預(yù)誘導(dǎo)后,再用神經(jīng)營養(yǎng)因子-3(neurotrophin-3,NT-3)聯(lián)合全反式維甲酸(retinoic acid,RA)與β-巰基乙醇(beta-mercaptoethanol,β-BME)進(jìn)行分步誘導(dǎo)的方法來體外誘導(dǎo)BMSCs向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化的效果差異。

    1 材料和方法

    1.1 材料 澳洲胎牛血清、0.25%胰酶-0.02%EDTA、青鏈霉素購自美國Gibco公司;PE anti-rat CD29、CD90、CD45、IgG1購自美國BioLegend公司;β-BME、bFGF、RA、NT-3購自美國PeProtech公司;Cy3標(biāo)記山羊抗兔IgG(H+L)購自上海碧云天公司;L-DMEM培養(yǎng)基購自美國Hyclone公司;大鼠抗山羊神經(jīng)元特異性烯醇化酶(neuron-specific endase,NSE)購自武漢博士德公司;4~6周齡,40~60 g雄性SD大鼠購自中南大學(xué)湘雅三醫(yī)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,動(dòng)物許可證號(hào)為SYXK(湘)2014-0013。

    1.2 方法

    1.2.1 分離培養(yǎng)大鼠BMSCs:用腹腔注射水合氯醛麻醉后,無菌條件下取大鼠股骨和脛骨,用2 mL注射器抽取含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基反復(fù)沖洗骨髓,離心去上清,以1×105個(gè)/mL的細(xì)胞密度接種于25 cm2細(xì)胞透氣培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),置于飽和CO2,濕度5%,37 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。按照8 h首次換液,后3 d換液1次的方法,待細(xì)胞長(zhǎng)滿后傳代。每日在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化。

    1.2.2 BMSCs表面標(biāo)記分子的鑒定:待P3代BMSCs長(zhǎng)滿瓶底90%以上時(shí),胰酶消化后移入15 mL離心管內(nèi),1 000 r/min,離心5 min,PBS重懸細(xì)胞,重復(fù)3次,調(diào)節(jié)細(xì)胞密度到1×106個(gè)/mL,分別加入抗體試劑PE-CD29、PE-CD90、PE-CD45各3管,及1管PEIgG1,置冰上避光孵育30 min。4 ℃,2 000 r/min,離心5 min,棄上清,PBS重懸,重復(fù)3次,洗凈未結(jié)合的抗體。每管加入200 μL PBS重懸細(xì)胞,流式細(xì)胞儀檢測(cè),重復(fù)3次,CELLQUEST軟件分析結(jié)果。

    1.2.3 體外誘導(dǎo)BMSCs向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化:取P3代BMSCs胰酶消化后,按8×103個(gè)/mL的密度接種于預(yù)先放有消毒蓋玻片的6孔板內(nèi)制備細(xì)胞爬片,加完全培養(yǎng)液2 mL,待細(xì)胞60%~70%融合。用預(yù)誘導(dǎo)液2 mL(98% L-DMEM+2% FBS+10 ng/mL bFGF[2])誘導(dǎo)24 h后,隨機(jī)分為A組(NT-3+RA,換用98% LDMEM+2% FBS+20 ng/mL NT-3+0.5 μmol/L RA[3])和B組(β-BME,換用98% L-DMEM+2% FBS+1 mmol/L β-BME[3]),2組各用2 mL誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)1 h、5 h、24 h、7 d、14 d、21 d后于倒置相差顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化。

    1.2.4 細(xì)胞免疫熒光鑒定:取細(xì)胞爬片用PBS洗3次,5 min/次,再用4%多聚甲醛固定15 min,PBS洗3次,5 min/次,再用0.5% Triton-X100浸泡打孔15 min,PBS洗2次,5 min/次,后用封閉液封閉,4 ℃冰箱過夜。加已用封閉液稀釋的一抗200 μL,37 ℃避光孵育3 h。用含0.1% Triton-X100的PBS漂洗4次,5 min/次。加入已用PBS稀釋的二抗200 μL,37 ℃避光孵育1 h。用含0.1% Triton-X100的PBS漂洗4次,5 min/次。用ddH2O按1∶2 000稀釋的DAPI,避光染色5 min;PBS漂洗4次,5 min/次,甘油封片,在倒置熒光顯微鏡下觀察并拍照。隨機(jī)選擇10個(gè)非重疊視野,分別計(jì)算誘導(dǎo)后1 h、5 h、24 h、7 d、14 d、21 d的NSE陽性率(NSE染色陽性率=陽性細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù))。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法 采用SPSS13.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。正態(tài)分布計(jì)量資料用表示,同組內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)比較用單因素重復(fù)測(cè)量方差分析,相同時(shí)間點(diǎn)2組間比較用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 BMSCs原代培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)結(jié)果 剛接種的BMSCs呈圓形,大部分懸浮在培養(yǎng)液中。各個(gè)時(shí)間段的BMSCs形態(tài)見圖1。

    2.2 BMSCs表面標(biāo)志物鑒定結(jié)果 由流式細(xì)胞儀檢測(cè),CD45 PE陽性率分別為8.34%、6.95%、6.94%,平均7.41%;CD90 PE陽性率分別為99.98%、99.98%、99.98%,平均99.98%;CD29 PE陽性率分別為98.21%、98.32%、97.20%,平均97.91%;故CD29 PE、CD90 PE為陽性表達(dá),CD45 PE為陰性表達(dá)。見圖2。

    圖1 BMSCs原代培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)結(jié)果(×100)

    圖2 BMSCs表面標(biāo)志物流式鑒定結(jié)果

    2.3 BMSCs誘導(dǎo)后細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化 A組加NT-3+RA誘導(dǎo)1 h,少數(shù)胞體有軸突樣改變,見圖3A;誘導(dǎo)5 h細(xì)胞漩渦樣生長(zhǎng),部分胞體軸突明顯延伸,較前增多,并出現(xiàn)少許多角形細(xì)胞,見圖3B;誘導(dǎo)24 h細(xì)胞數(shù)量增多,出現(xiàn)少許胞體變圓的細(xì)胞,見圖3C;誘導(dǎo)至7 d大多數(shù)細(xì)胞胞體變圓,可有雙觸角或多觸角細(xì)胞,可呈多角形,內(nèi)可見2~3個(gè)核仁。胞間漩渦狀趨勢(shì)逐漸消失,部分細(xì)胞間相互連接交織成橋梁狀,見圖3D;誘導(dǎo)至14 d細(xì)胞突起較前明顯延長(zhǎng),并出現(xiàn)一、二級(jí)分支,形成雙級(jí)或多極的突起,突起間互相連接,呈網(wǎng)絡(luò)狀,見圖3E;誘導(dǎo)21 d,仍可見少許存活的神經(jīng)元樣細(xì)胞,其連接的突起變細(xì),細(xì)胞橋梁趨向斷離,其中部分細(xì)胞出現(xiàn)顆粒及空泡,呈死亡趨勢(shì),見圖3F。B組加β-BME誘導(dǎo)1 h,部分胞體呈短棒形或圓形,見圖4A;5 h時(shí)見胞體可呈雙觸角或多觸角樣改變,有些亦見雙核仁,部分細(xì)胞胞質(zhì)中出現(xiàn)顆粒和空泡,見圖4B;24 h時(shí)見懸浮的細(xì)胞碎片增多,大部分細(xì)胞胞體破裂,趨向老化死亡,見圖4C。

    圖3 BMSCs經(jīng)NT-3+RA誘導(dǎo)后各時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化(×100)

    2.4 2組BMSCs的NSE表達(dá)情況比較 免疫熒光結(jié)果示,A組誘導(dǎo)分化24 h和B組誘導(dǎo)分化5 h后NSE均陽性表達(dá),見圖5。

    圖4 BMSCs經(jīng)β-BME誘導(dǎo)后細(xì)胞學(xué)形態(tài)變化(×100)

    圖5 2組NSE免疫熒光鑒定結(jié)果(×200)

    B組在誘導(dǎo)24 h后大部分細(xì)胞死亡。經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,A組誘導(dǎo)分化7 d后達(dá)到高峰,NSE表達(dá)率為(81.92±5.02)%,與其他時(shí)間點(diǎn)比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。B組誘導(dǎo)5 h后NSE表達(dá)最高,與1 h比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。在1 h和5 h B組NSE表達(dá)率高于A組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。見表1。

    3 討論

    BMSCs起源于中胚層組織,是一種具有多分化潛能的非造血干細(xì)胞,在一定條件下可以被誘導(dǎo)分化為外胚層起源的神經(jīng)元樣細(xì)胞。已有研究發(fā)現(xiàn)BMSCs分化的神經(jīng)元樣細(xì)胞能修復(fù)受損的神經(jīng)[4],并且移植后能為自身修復(fù)提供支架[5],因此BMSCs可以作為治療神經(jīng)退行性疾病的理想種子細(xì)胞。

    隨著研究的不斷深入,研究者發(fā)現(xiàn)了很多種BMSCs向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化的誘導(dǎo)劑,主要有:RA、抗氧化劑(β-BME[3]、褪黑素、丁羥茴醚、二甲亞砜等)、神經(jīng)營養(yǎng)因子及生長(zhǎng)因子[3](NT-3和bFGF)、中藥[6]等。但其誘導(dǎo)機(jī)制仍然不明確。其中,RA能催化胚胎干細(xì)胞定向誘導(dǎo)分化為神經(jīng)元,能調(diào)控細(xì)胞的生長(zhǎng)增殖及分化,有很強(qiáng)的誘導(dǎo)劑功能[7],能和生長(zhǎng)因子聯(lián)合,增加神經(jīng)細(xì)胞的合成[8]。β-BME為強(qiáng)抗氧化劑,可以通過提高胞內(nèi)cAMP水平[9],進(jìn)一步誘導(dǎo)BMSCs轉(zhuǎn)變成神經(jīng)細(xì)胞樣形態(tài)。bFGF是一種具有多種功能的多肽生長(zhǎng)因子,可以促使BMSCs向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化[1],參與分化啟動(dòng),細(xì)胞的生長(zhǎng)、發(fā)育和組織損傷的修復(fù)[10],可能與wnt信號(hào)通路相關(guān)[11]。而NT-3作為神經(jīng)營養(yǎng)素家族中的一員,在誘導(dǎo)BMSCs向神經(jīng)元樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化過程中非常重要[12]。

    為了尋找BMSCs的最佳誘導(dǎo)方案,獲得更佳的誘導(dǎo)結(jié)果,研究者采用了各種研究方案去提高誘導(dǎo)率,但是不同的誘導(dǎo)劑,其轉(zhuǎn)化效率大為不同,如:FGF-RA方案[13]陽性分化率約為40%,而BME-RA方案[14]的分化率約為20%。而且不同研究者可能因操作手法的差別,即使采用相同的方法也可能得出不同的誘導(dǎo)率[15]。此外,DEZAWA等[16]的研究表明聯(lián)合誘導(dǎo)分化高于單獨(dú)誘導(dǎo)分化,HERMANN等[17]的研究結(jié)果則證實(shí)分步誘導(dǎo)優(yōu)于單一步驟誘導(dǎo),且能夠獲得較高的分化效率。

    表1 BMSCs誘導(dǎo)分化成神經(jīng)元樣細(xì)胞NSE陽性表達(dá)率(,%)

    表1 BMSCs誘導(dǎo)分化成神經(jīng)元樣細(xì)胞NSE陽性表達(dá)率(,%)

    與同組內(nèi)其他時(shí)間點(diǎn)比:aP<0.01;與A組同時(shí)間點(diǎn)比:bP<0.01

    組別 n 1 h 5 h 24 h 7 d 14 d 21 d A組 3 1.60±0.44 5.53±1.21 18.55±0.55 81.92±5.02a 68.98±2.41 15.72±1.90 B組 3 6.09±0.76b 15.41±2.11ab — — — —

    劉謙虛[18]的研究認(rèn)為RA誘導(dǎo)穩(wěn)定表達(dá)腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子的BMSCs表達(dá)NSE陽性率高于單獨(dú)的RA誘導(dǎo),且單用RA與不加誘導(dǎo)劑的空白對(duì)照組無明顯變化,故本研究采取分步誘導(dǎo)+聯(lián)合誘導(dǎo),bFGF預(yù)誘導(dǎo)24 h后,再換用NT-3+RA及β-BME誘導(dǎo),探索相對(duì)較好的誘導(dǎo)方案。結(jié)果發(fā)現(xiàn)2組均能誘導(dǎo)BMSCs向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化,但是NT-3+RA組細(xì)胞存活時(shí)間較β-BME組顯著延長(zhǎng),故后期誘導(dǎo)分化率較β-BME組高,但β-BME組短期誘導(dǎo)分化率較高。這些結(jié)果與前人研究基本一致。有學(xué)者認(rèn)為[19]化學(xué)藥物可導(dǎo)致BMSCs的肌動(dòng)蛋白網(wǎng)絡(luò)斷裂,并引起細(xì)胞質(zhì)回縮,可有似神經(jīng)元細(xì)胞樣伸出軸突的假象,這也可能是β-BME誘導(dǎo)后細(xì)胞生存時(shí)間短的原因。而NT-3+RA組細(xì)胞存活時(shí)間長(zhǎng),而且后期分化率高,可能與NT-3的神經(jīng)營養(yǎng)作用有關(guān)。故NT-3+RA方案較β-BME方案更佳。但考慮到誘導(dǎo)劑還存在可能的致畸性[3],而且移植的細(xì)胞在中樞神經(jīng)系統(tǒng)存活時(shí)間較短暫[15],故誘導(dǎo)的BMSCs能否通過移植來治療神經(jīng)退化性疾病仍需進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)來證實(shí)。

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