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    金露梅提取物對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶的抑制作用

    2018-09-07 10:56:32李美華王渭清郭鳳霞嚴培瑛李錦萍
    中國藥科大學學報 2018年4期
    關(guān)鍵詞:水提物還原酶糖苷酶

    李美華,王渭清,曾 陽*,郭鳳霞,嚴培瑛,李錦萍

    (1青海師范大學生命科學學院,西寧 810008;2青海省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢測所,西寧 810000;3浙江大學城市學院,杭州 310015)

    金露梅(PotentillafruticosaL.)屬薔薇科(Rosaceae)委陵菜屬(Potentilla)植物,主要分布在青藏高原,是高寒地區(qū)一種典型的落葉灌木,嫩葉可代茶飲,花和葉可藥用[1]。金露梅屬于民族常用藥藏藥的一種。據(jù)藏藥典籍《晶珠本草》記載,其具有健脾、消暑、調(diào)經(jīng)的功效,現(xiàn)代研究主要對其化學成分進行測定,發(fā)現(xiàn)金露梅中含有黃酮類、鞣質(zhì)和醌類化合物。

    近年來,隨著人們生活水平的提高,食用過多碳水化合物和高脂高糖類食物致使餐后血糖升高,不僅會導(dǎo)致肥胖,還會引發(fā)2型糖尿病[2]。人們現(xiàn)今已研發(fā)出各類抗2型糖尿病的藥物,例如,從微生物和植物中獲得用于降糖及治療肥胖的α-淀粉酶抑制劑類藥物,合成了α-葡萄糖苷酶抑制劑和醛糖還原酶抑制劑類降糖藥物(阿卡波糖、依帕司他)等[3-6]。本課題組前期研究同屬植物小葉金露梅時發(fā)現(xiàn),小葉金露梅對α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶有抑制作用,并具有抗2型糖尿病的作用[7]。本文主要研究了金露梅不同提取物對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶3種酶的體外抑制作用以及金露梅提取物對餐后血糖的影響,為金露梅資源的開發(fā)利用提供理論參考。

    1 材 料

    1.1 藥材與試劑

    金露梅枝葉,采集于青海省大通達板山(由青海師范大學生命科學學院陳振寧教授鑒定為Potentillafruticosa)。α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶、醛糖還原酶、對硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG)(美國Sigma公司);3,5-二硝基水楊酸(國藥集團化學試劑公司);阿卡波糖(拜耳醫(yī)藥保健有限公司);依帕司他(揚子江藥業(yè)集團);葡萄糖測定試劑盒(上海榮盛生物藥業(yè)有限公司),其他試劑均為市售分析純。

    1.2 儀 器

    EYELA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(日本東京理化器械株式會社);Alpha 1-4 LD plus冷凍干燥機(德國Christ);Thermo-Shaker孵育器(托赫機電科技上海有限公司);XMARK全自動酶標儀(上海伯樂生命醫(yī)學產(chǎn)品有限公司);紫外可見分光光度計(上海美普達儀器有限公司)。

    1.3 動 物

    昆明種小鼠60只,雌雄各半,6~8周齡、體重(20±2) g,由西安交通大學醫(yī)學實驗動物中心提供,合格證號:SCXK(陜)2012-003。實驗前適應(yīng)性飼養(yǎng)1周,自由飲食、攝水。

    2 方 法

    2.1 提 取

    粉碎金露梅干燥枝葉1 kg,95%甲醇回流1 h,重復(fù)3次,抽濾、合并濾液,真空濃縮[8-9]。濃縮后于等量水中分散,然后以石油醚萃取,真空干燥萃取液得石油醚萃取部位;剩余水層用乙酸乙酯萃取,萃取液真空干燥得乙酸乙酯萃取部位;剩余水層真空干燥得水層部位。另取金露梅粗粉,10倍蒸餾水浸提3次,得水浸膏,冷凍干燥得水提物。其中金露梅95%甲醇提取石油醚萃取部位、乙酸乙酯萃取部位和水層部位以及金露梅水提物的得率分別為2.41%,5.02%,4.13%和16.33%,于4 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    2.2 金露梅提取物對α-淀粉酶的抑制活性測定

    2.2.1α-淀粉酶標準曲線的測定 在無抑制劑的條件下,觀察α-淀粉酶活力其隨酶量的變化關(guān)系。反應(yīng)體系設(shè)置為400 μL:在0.5 mL EP管中依次加入pH為6.0的0.05 mol/L磷酸緩沖液300 μL,淀粉溶液50 μL,不同濃度α-淀粉酶(0,0.08,0.15,0.25,0.4,0.5 mg/mL)各50 μL,搖勻后37 ℃恒溫水浴15 min。依次加入3,5-二硝基水楊酸250 μL,混勻、70 ℃水浴15 min,將反應(yīng)液置于540 nm處測定吸收度[10]。

    2.2.2α-淀粉酶的抑制活性測定 按照“2.2.1”項方法,取pH為6.0的0.05 mol/L磷酸緩沖液250 μL,依次加入不同濃度的各提取物的待測樣品(0.039,0.078,0.156,0.313,0.625,1.25,2.5 mg/mL)各50 μL、淀粉溶液50 μL、α-淀粉酶50 μL,搖勻后37 ℃混勻并恒溫水浴15 min。依次加入3,5-二硝基水楊酸250 μL ,混勻、70 ℃水浴15 min,將反應(yīng)液置于540 nm波長處測定吸收度。

    抑制劑活力單位定義:pH 6.0、37 ℃條件下每降低1個單位酶活力所需的抑制劑量。抑制率=(抑制劑活力/酶活力)×100%。各提取物對α-淀粉酶活性抑制率按公式(1)進行計算。

    (1)

    式中,Α1:原有的酶活力;Α2:加入抑制劑后的酶活力;Α3:樣品背景;Α4:無3,5-二硝基水楊酸試劑背景;A5:加入3,5-二硝基水楊酸試劑后背景。

    所得結(jié)果輸入SPSS 22.0進行半數(shù)抑制濃度(IC50)的計算。

    2.3 金露梅提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制活性測定

    2.3.1α-葡萄糖苷酶標準曲線的測定 在無抑制劑的條件下,用全自動酶標儀和不可拆96孔板測定酶的活性。反應(yīng)體系為200 μL:在pH 6.8的磷酸緩沖液150 μL和8.92 mmol/L PNPG 25 μL中分別加入不同濃度的α-葡萄糖苷酶(0,0.02,0.04,0.06,0.08,0.1,0.12 U/mL) 25 μL。每個濃度設(shè)置3個平行,將反應(yīng)體系置于37 ℃恒溫孵育器內(nèi)20 min,迅速在400 nm波長處測定吸收度[11],繪制標準曲線。

    2.3.2α-葡萄糖苷酶抑制活性的測定 按照“2.3.1”項方法,測定苷酶對酶的抑制活性。反應(yīng)體系為200 μL:在磷酸緩沖液(pH 6.8) 125 μL和8.92×10-3mol/L PNPG 25 μL中分別加入不同濃度的各提取物(0.039,0.078,0.156,0.313,0.625,1.25,2.5,5 mg/mL)及不同濃度梯度的陽性藥物阿卡波糖(0.195,0.391,0.781,1.563,3.13,6.25,12.5,25 mg/mL)各25 μL和0.05 U/mLα-葡萄糖苷酶25 μL。

    為了消除測定結(jié)果中樣品和底物的影響,需測定樣品和底物的吸收度,并以磷酸緩沖液代替樣品和底物進行校正:如公式(2)所示。

    (2)

    式中,Α1:原有的酶活力;Α2:加入抑制劑后的酶活力;Α3:PNPG背景;Α4:樣品背景。

    所得結(jié)果輸入SPSS 22.0計算IC50。

    2.4 金露梅提取物醛糖還原酶的抑制活性測定

    用全自動酶標儀和不可拆96孔板測定酶的活性。反應(yīng)體系設(shè)為200 μL:依次加入pH 6.2的0.2 mol/L磷酸緩沖液125 μL,不同濃度各提取物(0.039,0.078,0.156,0.313,0.625,1.25,2.5 mg/mL)及相同濃度梯度的陽性藥物依帕司他各25 μL,1.5 mmol/L NADPH 20 μL,5×10-6U/L醛糖還原酶10 μL,加入100 mmol/L DL-甘油醛20 μL啟動反應(yīng),以磷酸緩沖液作空白對照,25 ℃恒溫孵育器溫浴3 min后連續(xù)測定340 nm處5 min內(nèi)的吸收度,并間接測定各樣品對醛糖還原酶的抑制活性。酶活力等于反應(yīng)體系每分鐘吸收度與用磷酸緩沖液代替底物后每分鐘吸收度的差與100的乘積。

    所得結(jié)果輸入SPSS 22.0計算IC50。

    2.5 糖耐量測定

    取正常血糖小鼠60只,按體重隨機分成6組,每組10只,雌雄各半。適應(yīng)性飼養(yǎng)1周,禁食不禁水12 h后,尾靜脈采血測量小鼠空腹血糖并作記錄。分別用高、低劑量金露梅水提物(1.0、0.5 g/kg),按照生藥量計分別為6.124、3.062 g/kg;高、低劑量金露梅乙酸乙酯部位(1.0、0.5 g/kg),按照生藥量計分別為19.92、9.96 g/kg;生理鹽水(按體重)、阿卡波糖(0.12 g/kg)給小鼠灌胃,每天1次,連續(xù)7 d,第7 d灌胃后禁食12 h,第8 d灌胃空腹測血糖后,用2.0 g/kg的淀粉給小鼠負荷劑量,在灌胃后30、60、90、120 min測量小鼠血糖并記錄。所得結(jié)果用SPSS 22.0軟件進行顯著性差異統(tǒng)計。

    3 結(jié) 果

    3.1 α-淀粉酶的測定結(jié)果

    3.1.1α-淀粉酶標準曲線 求得α-淀粉酶回歸方程為Y=3.109X+0.1721,R2=0.993 1,吸收度在α-淀粉酶質(zhì)量濃度0.08~0.5 mg/mL范圍內(nèi),線性關(guān)系良好。

    3.1.2 各提取物不同濃度下對α-淀粉酶的影響 如表1所示,金露梅水提物、石油醚部位和乙酸乙酯部位的IC50分別為0.432、1.193、0.507 mg/mL。在金露梅水提物、石油醚部位和乙酸乙酯部位質(zhì)量濃度分別為0.039,0.078,0.156,0.313,0.625,1.25,2.5 mg/mL時,各個提取物對α-淀粉酶的抑制率隨濃度的升高而升高,在0.039~2.5 mg/mL范圍內(nèi),對α-淀粉酶的抑制作用具有較好的量效關(guān)系,金露梅水層部位無抑制活性。表明,金露梅水提物和乙酸乙酯部位對α-淀粉酶具有較好的抑制作用。

    c/(mg/mL)Inhibition/%WEMEPMEE2.591.15±2.2861.46±2.6782.34±2.351.2586.32±2.3252.52±2.5176.15±2.140.62565.41±2.1240.12±1.9658.46±1.770.31334.33±1.9524.39±2.0137.53±1.860.15617.52±1.6713.22±1.3419.06±1.820.0787.63±0.758.76±0.6911.17±0.810.0393.22±0.422.13±0.214.02±0.45

    WE:Water extract;MEP:Methanol extraction of petroleum ether;MEE:Methanol extraction of ethyl acetate

    3.2 α-葡萄糖苷酶的測定結(jié)果

    3.2.1α-葡萄糖苷酶的標準曲線 求得α-葡萄糖苷酶曲線方程Y=0.98X+0.016,R2=0.999 4。吸收度隨α-葡萄糖苷酶量的變化而變化,α-葡萄糖苷酶質(zhì)量濃度在0.02~0.12 U/mL時與吸收度呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系。

    3.2.2 各提取物不同濃度下對α-葡萄糖苷酶的影響 如表2、3所示,金露梅水提物、石油醚部位、乙酸乙酯部位、阿卡波糖的IC50分別為0.164、0.768、0.466、2.938 mg/mL。金露梅水提物及石油醚部位、乙酸乙酯部位質(zhì)量濃度分別為0.039,0.078,0.156,0.313,0.625,1.25,2.5,5 mg/mL時,各個提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制率隨濃度的升高依次升高,在質(zhì)量濃度0.039~5 mg/mL范圍內(nèi),對α-葡萄糖苷酶的抑制作用,具有較好的量效關(guān)系,且金露梅水提物和乙酸乙酯部位抑制活性顯著高于阿卡波糖,水層部位無抑制活性。表明:金露梅水提物和乙酸乙酯部位對α-葡萄糖苷酶有很好的抑制作用。

    c/(mg/mL)Inhibition/%WEMEPMEE599.37±2.2476.89±2.2992.37±2.642.591.75±2.8772.11±2.6889.5±2.781.2588.45±2.5462.14±2.6679.71±2.780.62579.11±2.4651.29±1.9762.52±2.610.31370.08±2.9842.2±2.8539.93±2.450.15649.06±2.3425.37±1.9916.52±2.220.07831.03±1.562.11±1.0110.59±1.980.03917.32±1.200.17±0.051.67±0.69

    c/(mg/mL)Inhibition/%2579.45±1.9612.573.34±2.546.2565.22±2.023.12556.31±2.161.562 541.76±1.650.78129.55±1.280.390 617.36±1.540.195 34.55±1.23

    3.3 各提取物不同濃度下對醛糖還原酶的影響

    如表4所示,金露梅水提物、石油醚部位、乙酸乙酯部位及依帕司他的IC50分別為0.742、2.158、1.098、0.773 mg/mL。金露梅水提物及石油醚部位、乙酸乙酯部位質(zhì)量濃度分別為0.039,0.078,0.156,0.313,0.625,1.25,2.5 mg/mL時,各提取物對醛糖還原酶的抑制率隨質(zhì)量濃度的升高依次升高,在質(zhì)量濃度0.039~2.5 mg/mL范圍內(nèi),對醛糖還原酶的抑制作用呈現(xiàn)較好的量效關(guān)系,金露梅水提物抑制率高于依帕司他,水層部位無抑制活性。說明金露梅水提物對醛糖還原酶有很好的抑制作用。

    c/(mg/mL)Inhibition/%WEMEPMEEEpalrestat2.565.44±2.7446.23±1.8760.33±2.0367.29±2.171.2559.32±2.2242.22±2.6953.24±1.9262.43±2.280.62552.43±1.5932.78±1.4745.25±1.0253.76±0.990.312 543.56±1.9519.65±1.2732.89±1.8537.11±1.650.156 2524.19±1.6511.32±1.289.98±1.8713.14±2.080.078 134.09±1.032.14±1.211.67±1.265.25±0.98

    3.4 金露梅提取物對小鼠餐后血糖的影響

    如表5所示,各給藥組與空白組對比,金露梅水提物和乙酸乙酯部位的高、低劑量組均能降低小鼠餐后血糖。金露梅水提物和乙酸乙酯部位高劑量組在給藥30、90、120 min后,能降低用淀粉負荷后小鼠的血糖水平(P<0.05),差異顯著;金露梅水提物和乙酸乙酯部位高劑量組在給藥60 min后,能明顯降低用淀粉負荷后小鼠的血糖水平(P<0.01),差異極顯著;金露梅水提物和乙酸乙酯部位低劑量組在給藥30、60 min后,能降低用淀粉負荷后小鼠的血糖水平(P<0.05)。

    GroupDose/(g/kg)Blood glucose/(mmol/L)Overnight fasting30 min60 min90 min120 minControl-5.77±0.778.17±1.099.13±0.838.18±0.717.72±1.32Acarbose0.125.07±1.286.28±1.21*7.08±1.47*6.58±1.355.95±1.18*WE1.05.35±0.846.25±0.99*6.52±1.01**6.45±1.34*5.58±1.14*0.54.88±1.356.57±0.67*7.15±1.26*7.25±1.456.13±1.05MEE1.05.48±0.696.28±0.93*6.93±0.86**6.48±0.92*5.38±0.71*0.55.18±0.936.65±1.06*7.22±1.23*7.28±0.896.33±0.78

    *P<0.05;**P<0.01vscontrol group

    4 討 論

    α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶是催化水解碳水化合物過程中重要的酶。醛糖還原酶能將葡萄糖催化還原為山梨醇,還可催化還原脂質(zhì)過氧化反應(yīng)產(chǎn)生醛及其衍生物,繼而在糖代謝多元醇通路中起限速作用。因此,這幾類酶的抑制劑可以有效對抗2型糖尿病及其并發(fā)癥[11-14]。

    本研究通過金露梅不同提取物對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶的抑制作用進行研究,發(fā)現(xiàn)金露梅水提物對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶的抑制作用大于乙酸乙酯萃取部位,石油醚萃取部位對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶的抑制作用最弱。

    體外篩選結(jié)果顯示,金露梅水提物、95%甲醇提取乙酸乙酯萃取部位對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶的活性有較強的抑制作用,水層部位無抑制活性。結(jié)果表明,金露梅對α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶均有不同程度的抑制作用。小鼠糖耐量實驗結(jié)果表明,金露梅提取物具有一定的降低餐后血糖的作用。

    目前為止,被發(fā)現(xiàn)有降血糖功能的委陵菜屬植物包括翻白草(PotentilladiscolorBunge.)、朝天委陵菜(PotentillasupinaLinn.)、蛇含委陵菜(PotentillakleinianaWight et Arn.)[7]等,但對金露梅的降血糖作用研究甚少。本研究通過體外篩選金露梅的α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶和醛糖還原酶的抑制活性作用,體內(nèi)對其進行降血糖作用的研究,為金露梅植物的降血糖功能提供依據(jù),同時也為金露梅后續(xù)開發(fā)提供理論基礎(chǔ)。

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