張俊環(huán),孫浩元,Boris Kr?ka,楊 麗,姜鳳超,張美玲,王玉柱
(1. 北京市林業(yè)果樹科學(xué)研究院,北京 100093;2.孟德爾大學(xué) 園藝學(xué)院,布爾諾 69144)
李痘病毒(Plumpoxvirus,PPV)病是桃、杏、李、櫻桃等核果類果樹最危險(xiǎn)的病害之一。PPV侵染后,葉片和果實(shí)表現(xiàn)出明顯癥狀,葉片出現(xiàn)褪綠壞死斑,果實(shí)出現(xiàn)環(huán)斑或嚴(yán)重變形并在成熟前落果,嚴(yán)重時(shí)則全樹死亡,引起嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失,在易感品種中損失可高達(dá)80%[1-2]。PPV病最先于1915年在保加利亞發(fā)現(xiàn),之后在整個(gè)歐美地區(qū)廣泛流行,嚴(yán)重限制了歐美地區(qū)核果類果樹的發(fā)展[3-4],2009年日本也發(fā)現(xiàn)了PPV的發(fā)生[5]。李痘病毒可經(jīng)蚜蟲傳播,擴(kuò)散速度快,在短時(shí)間內(nèi)即可能給全國(guó)整個(gè)核果類產(chǎn)業(yè)的發(fā)展帶來災(zāi)難性后果。病害的嚴(yán)重性在很大程度上取決于寄主是感病還是耐病品種,因此,國(guó)外核果類果樹學(xué)者一直致力于抗PPV品種的選育研究,2007年歐盟國(guó)家啟動(dòng)了杏的抗PPV育種計(jì)劃(FP7-KBBE-2007-1),在分子輔助育種方面做了大量研究,主要是進(jìn)行抗PPV連鎖標(biāo)記的篩選。2002年,Hurtado等[6]抗/感分離群體構(gòu)建杏遺傳圖譜,并最終將抗PPV連鎖標(biāo)記定位到了第一連鎖群的上端。2012年,Soriano等[7]將抗PPV基因的定位區(qū)間進(jìn)一步縮小,并篩選出3個(gè)SSR連鎖標(biāo)記,但后來Decroocq等[8]對(duì)這3個(gè)標(biāo)記進(jìn)行驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)并不能有效地用于輔助選擇。近期有研究報(bào)道通過高通量測(cè)序技術(shù)進(jìn)行杏、李、桃等核果類果樹PPV抗性基因的篩選[9-12]。但直到如今,仍尚未發(fā)現(xiàn)能夠有效控制PPV的措施;一旦果樹感病,只能立即砍樹,進(jìn)行清園處理。
目前,中國(guó)還沒有發(fā)現(xiàn)核果類果樹感染PPV的報(bào)道,但不能完全保證無帶毒植株的存在,因?yàn)镻PV與李屬壞死環(huán)斑病毒等所引起的癥狀十分相似,并且感病初期植株的表型癥狀不明顯,很難用肉眼觀察區(qū)分[13]。另一方面,這也表明了我國(guó)本土的杏、李資源或許存在抗PPV基因,國(guó)外鑒定的杏抗PPV品種的抗性基因多來源于中國(guó)杏品種資源[14]。抑或是病毒還沒有傳播進(jìn)我國(guó)的杏、李產(chǎn)區(qū),但是,隨著近些年國(guó)內(nèi)外資源的頻繁交流,每年從國(guó)外輸入中國(guó)的李屬果樹砧木、果實(shí)及種子的數(shù)量較大,其中不能完全排除攜帶PPV的可能。由于種子、砧木等植物材料中PPV濃度很低,檢測(cè)難度較大,容易出現(xiàn)漏檢和假陰性的情況,導(dǎo)致PPV傳入的可能性較大,同時(shí)有些引進(jìn)品種是PPV易感材料,如從國(guó)外引進(jìn)的易于扦插生根的杏砧木Myrabalan,增加了PPV傳入的風(fēng)險(xiǎn)。由此可見,我國(guó)現(xiàn)已處于PPV傳播或感染的危險(xiǎn)境地。因此,一方面迫切需要建立起特異性強(qiáng)、靈敏度高、快速高效的檢測(cè)技術(shù),以有效防止PPV的入侵,控制PPV這一病毒在我國(guó)杏、李產(chǎn)區(qū)的流行發(fā)展;另一方面需要利用已有的優(yōu)勢(shì)資源,著手尋找抗PPV資源。本研究在比較確定杏樹PPV病毒感染的分子快速鑒定方法的同時(shí),利用捷克孟德爾大學(xué)園藝學(xué)院Boris教授構(gòu)建的杏PPV抗性分離的F1群體,篩選與PPV抗性基因緊密連鎖的分子標(biāo)記,并進(jìn)一步篩選我國(guó)杏資源中存在的PPV抗性材料,以期為抗PPV基因的挖掘研究奠定基礎(chǔ)。
以抗PPV的2個(gè)杏品種Harlayne和Betinka[15]為親本材料進(jìn)行雜交,獲得PPV抗性分離的F1群體。2015年4月在杏樹展葉期從捷克孟德爾大學(xué)的杏園采集F1群體及其親本的葉片,從北京林業(yè)果樹科學(xué)研究院杏、李資源圃采集新鮮的杏、李資源(表1)的嫩葉,液氮速凍后保存于-80 ℃?zhèn)溆谩?/p>
按照多糖多酚植物總RNA提取試劑盒(離心柱型)的方法提取葉片材料的總RNA。試劑盒(Cat.# DP441)購自天根生化科技(北京)有限公司。
表1 供試的杏、李品種Tab.1 Cultivarnames of tested materials including apricot plum
注:1~8為引進(jìn)的杏和李資源;9~53為國(guó)內(nèi)杏品種。
Note:1-8 were introduced cultivars of apricot or plum;9-53 were domestic apricot cultivars.
cDNA的制備:以總RNA為模板進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,按照Thermo_Scientic Revert Aid First Strand cDNA Synthesis Kit試劑盒的說明進(jìn)行,反轉(zhuǎn)錄體系為45 μL。
以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,陽性對(duì)照為攜帶PPV病毒基因的質(zhì)粒(由中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院植保所李世訪研究員實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng))。擴(kuò)增體系為20 μL:10×Buffer 2 μL、25 mmol/L Mg2+1.6 μL、10 mmol/L dNTP 0.4 μL、上下游引物各0.4 μL、模板cDNA 1 μL和0.5 U/μLTaq酶0.2 μL,ddH2O 14 μL。PPV基因的擴(kuò)增引物序列為F:5′-CAGACTACAGCCTCGCCAGA-3′,R:5′-ACCGAGACCACTACACTCCC-3′,擴(kuò)增產(chǎn)物片段大小為243 bp[16]。RT-PCR反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性5 min,然后以94 ℃變性45 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s,進(jìn)行35個(gè)循環(huán),72 ℃延伸10 min。PCR反應(yīng)程序在MyCyclerTMthermal cycler(Bio-Rad Laboratories,Inc.,USA)PCR儀上進(jìn)行。PCR產(chǎn)物用1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),并在凝膠分析系統(tǒng)下觀察、照相。
采用伯樂的SYBR?Premix ExTaqTMⅡ(Bio-Rad,Hercules,CA,USA)試劑盒,實(shí)時(shí)熒光 RT-PCR反應(yīng)體系為10 μL體系:2×Premix 5 μL、PPV通用引物(同1.3)各1 μL、ddH2O 2 μL、cDNA模板1 μL,以杏Actin基因?yàn)閮?nèi)參基因,其引物序列為F:5′-ACATTGTTCTTAGTGGTGGGTC-3′,R:5′-AGATTCGTCATACTCTGCCTTT-3′[17]。每個(gè)樣品設(shè)3個(gè)重復(fù),均以ddH2O作為模板的空白對(duì)照。用Bio-Rad CFX 96TM熒光定量PCR儀進(jìn)行檢測(cè),反應(yīng)條件為95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性5 s,55 ℃退火15 s,65 ℃延伸5 s,循環(huán)39次。循環(huán)后設(shè)置在55~95 ℃每提高1 ℃時(shí)讀取熒光值并生成溶解曲線?;蛳鄬?duì)表達(dá)量的計(jì)算,參考Livak等[18]的方法,以2-ΔΔCT表示,ΔΔCT=樣本CT值的平均數(shù)-內(nèi)參CT值的平均值。
按照高效植物基因組DNA提取試劑盒(Cat.# DP350)的方法提取葉片材料的總DNA。試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司。
采用BSA(Bulked Segregation Analysis)法,即根據(jù)F1性狀鑒定的結(jié)果,將雜交群體分成2組,1個(gè)高抗組,1個(gè)易感組,每組5株,將這2組的DNA分別進(jìn)行等量混合,組成對(duì)等基因池。
SSR-PCR反應(yīng)體系參照Zhang等[19]的方法。擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性45 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s,進(jìn)行35個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸8 min,然后置于4 ℃待電泳檢測(cè)。選用的SSR引物是已經(jīng)利用杏材料篩選出的多態(tài)性較好的引物,包括Decroocq等[8]研究中抗PPV基因QTL定位區(qū)間的SSR位點(diǎn)。所有擴(kuò)增產(chǎn)物采用0.6%聚丙烯酰胺凝膠電泳與銀染法檢測(cè)。
2.1.1 RNA提取 對(duì)從捷克采回的2份感病杏葉片材料(C-1、C-2)和資源圃的8份引進(jìn)資源材料(2-1、25-26、25-29、25-32、25-35、25-39、23-38、157/3S)進(jìn)行了總RNA的提取以及RNA質(zhì)量和濃度的檢測(cè)。如圖1所示,提取的總RNA中,基因組DNA已完全去除,而且28S和18S核糖體RNA條帶非常明顯;RNA質(zhì)量和濃度的檢測(cè)結(jié)果顯示,所有樣品的RNA濃度在86~220 ng/μL,OD260/280比值介于1.8~2.1,能夠滿足后續(xù)RT-PCR和熒光定量PCR試驗(yàn)的要求。
M.Marker;泳道1~10對(duì)應(yīng)的杏樣品編號(hào):2-1、25-26、25-29、25-32、25-35、25-39、23-38、157/3S、C-1、C-2。M.Marker;The numbers of apricot samples in the lanes 1-10 were 2-1,25-26,25-29,25-32,25-35,25-39,23-38,157/3S,C-1,C-2.
2.1.2 RT-PCR快速檢測(cè)PPV 在優(yōu)化反應(yīng)體系和反應(yīng)條件的基礎(chǔ)上,篩查引進(jìn)的8份杏資源材料是否感染PPV。從圖2可知,這8份引進(jìn)材料均未擴(kuò)增出目的條帶(243 bp),只有陽性對(duì)照樣品擴(kuò)出了此條帶。表明8個(gè)引進(jìn)的杏樣品均不攜帶PPV。
M.Marker;泳道1~8對(duì)應(yīng)的杏樣品編號(hào):2-1、25-26、25-29、25-32、25-35、25-39、23-38、157/3S;PC.陽性對(duì)照;NC.陰性對(duì)照。M.Marker;The numbers of apricot samples in the lanes 1-8 were 2-1,25-26,25-29,25-32,25-35,25-39,23-38,157/3S;PC.Positive control;NC.Negative control.
2.1.3 qRT-PCR熒光定量分析 為了進(jìn)一步檢驗(yàn)RT-PCR方法的可靠性和材料是否帶毒的確定性,對(duì)8份材料和2份已知感病的對(duì)照材料進(jìn)行了高特異、高敏感性的熒光定量PCR分析。由圖3-A、B可知,內(nèi)參基因和目的基因的指數(shù)擴(kuò)增期和平臺(tái)期均十分明顯,而且內(nèi)參基因和目的基因的溶解曲線均呈單峰型,證明擴(kuò)增的特異性較好??梢愿鶕?jù)樣品的CT值計(jì)算出目的基因的相對(duì)表達(dá)量。由圖3-C可以看出,8個(gè)杏樣本中均未檢測(cè)出PPV基因的表達(dá),而在對(duì)照的2個(gè)帶毒樣本C-1和C-2中,這一基因的相對(duì)表達(dá)量高達(dá)58 734.39和184 478.25。熒光定量檢測(cè)結(jié)果與2.1建立的RT-PCR快速檢測(cè)方法對(duì)8個(gè)杏樣本的檢測(cè)結(jié)果完全一致,證明了所建立的RT-PCR快速檢測(cè)體系是高效、可靠的。
A.基因擴(kuò)增曲線;B.溶解曲線;C.PVV基因相對(duì)表達(dá)量;ND.未檢測(cè)到。A.Amplification plot;B.Melt curve plot;C.Relative expression of PVV gene; ND.No detected.
2013年7月捷克孟德爾大學(xué)園藝學(xué)院Boris實(shí)驗(yàn)室利用2個(gè)抗PPV的杏品種Harlayne和Betinka作親本進(jìn)行雜交,獲得了近200株的F1分離群體。2014年對(duì)群體單株的抗病性進(jìn)行生物學(xué)鑒定。2015年7月從捷克采回F1分離群體的葉片樣品100份,包括34份抗病個(gè)體、34份易感個(gè)體和32份耐病個(gè)體。
2.3.1 群體DNA樣本的制備 對(duì)100份F1分離群體及其2個(gè)親本的樣本基因組DNA進(jìn)行提取與DNA質(zhì)量和濃度檢測(cè),全部樣品的OD260/280在1.8~2.0,樣品的濃度均大于100 ng/μL,總量均大于10 μg;DNA電泳結(jié)果顯示:所有樣品主帶清晰,樣品無RNA污染,個(gè)別樣品有蛋白質(zhì)污染,但不影響后續(xù)試驗(yàn);因此,樣品的純度、濃度與總量均能較好地保證后續(xù)的SSR分子標(biāo)記試驗(yàn)。圖4顯示了部分樣品的DNA瓊脂糖電泳結(jié)果。
2.3.2 SSR引物的親本間篩選以及在抗病/感病對(duì)等基因池間的篩選 用11對(duì)SSR引物同時(shí)在親本Betinka和Harlayne,以及抗病混合池和感病混合池間之間進(jìn)行篩選,所有的引物均能夠擴(kuò)增出清晰條帶,占總引物數(shù)的100%,其中有6對(duì)引物能夠同時(shí)在親本間以及抗病混合池和感病混合池間擴(kuò)增出相同的差異條帶,占總引物數(shù)的54.5%,這6條多態(tài)性引物序列見表2。圖5顯示了11對(duì)引物在兩親本間以及抗病/感病混合池間的擴(kuò)增結(jié)果。
圖4 部分F1個(gè)體的DNA提取結(jié)果Fig.4 Agarose gel electrophoresis of DNA samplesextracted from F1 population inapricot
表2 親本和對(duì)等基因池間多態(tài)性一致的引物Tab.2 The polymorphic primers between two parents and two DNA bulks
11對(duì)引物分別為PGS1.24、PGS1.23、PGS1.21、PaCTA17、Pchcms4、UDP96-005、PaCITA5、UDA-025、UDAp-414、Pchgms4和CPPCT27;相鄰的4個(gè)泳道是一對(duì)引物;篩選樣品分別為抗病基因池、感病基因池、抗性親本Betinka和易感親本Harlayne。The eleven pairs of primers including PGS1.24,PGS1.23,PGS1.21,PaCTA17,Pchcms4,UDP96-005,PaCITA5,UDA-025,UDAp-414,Pchgms4 and CPPCT27;The primers in adjacent four lanes were the same;The samples for screening were resistance gene pool,susceptible gene pool,resistance parent Betinka and susceptible parent Harlayne,respectively.圖5 11對(duì)引物在2個(gè)對(duì)等基因池間和2個(gè)親本間的擴(kuò)增結(jié)果Fig.5 The profile of 11 SSR loci amplification in the two parents and two DNA bulks
2.3.3 抗病/感病對(duì)等基因池間多態(tài)性引物在部分分離群體間的復(fù)選 用對(duì)等基因池和親本間相同的多態(tài)性引物繼續(xù)在親本和46個(gè)分離群體間進(jìn)行復(fù)選,46個(gè)分離群體根據(jù)表型(PPV抗性)不同分為3組:抗病群體(R)、耐病群體(T)和易感群體(S),3類群體分別選用的后代個(gè)體數(shù)量為16,12,18個(gè)。結(jié)果如圖6所示,6對(duì)引物中只有1對(duì)引物(PGS1.23)在后代的分離群體中擴(kuò)增出有規(guī)律的多態(tài)性條帶。在PGS1.23擴(kuò)增出的差異帶中,條帶a在大多易感后代和親本Betinka中出現(xiàn),而在F1群體的大多數(shù)抗性個(gè)體(R)中未出現(xiàn),說明該條帶可能與易感性狀相關(guān);條帶b抗性后代和抗性親本Harlayne中出現(xiàn),而在多數(shù)易感后代中沒有出現(xiàn),說明該條帶可能與杏的PPV抗性性狀有連鎖。
2.3.4 連鎖標(biāo)記在分離群體的驗(yàn)證 在F1分離的極端群體(易感和高抗)和兩親本間對(duì)篩選出的連鎖標(biāo)記PGS1.23進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果見圖7。PGS1.23在19個(gè)易感后代(S1~S19)中有15個(gè)擴(kuò)增出了片段a,在18個(gè)高抗(R1~R18)后代中有14個(gè)擴(kuò)增出了片段b,此標(biāo)記檢測(cè)分離群體PPV抗性的符合度達(dá)到了78.3%,基本可用于PPV抗性的輔助選擇。PPV抗性是一個(gè)多基因控制的性狀,今后還需要進(jìn)一步尋找其他連鎖程度更高的分子標(biāo)記,以更好地應(yīng)用于PPV抗性育種過程中的早期輔助選擇。
M.Marker;S1~S19.PPV易感個(gè)體;T1~T12.PPV耐病個(gè)體;R1~R18.PPV抗性個(gè)體;B.Betinka;H.Harlayne;a和b是特異條帶。圖7同。M.Marker;S1-S19.PPV-susceptible progeny;T1-T12.PPV-tolerant progeny;R1-R18.PPV-resistant progeny;B.Betinka;H.Harlayne;a,b.The special bands.The same as Fig.7.
圖7 連鎖標(biāo)記PGS1.23在易感抗病F1群體和親本間的擴(kuò)增結(jié)果Fig.7 The amplification profile of the linkage marker PGS1.23intwo parents and F 1 individuals
利用篩選到的連鎖標(biāo)記對(duì)本課題組資源圃保存的杏資源進(jìn)行PPV高抗資源的篩選,以期建立我國(guó)抗PPV的杏資源名錄。如圖8所示,菜籽黃、楊繼元、垂枝山杏、大早熟和媳婦杏具有抗性品種Harlayne和Betinka的擴(kuò)增片段b,其中菜籽黃、楊繼元、媳婦杏與Harlayne的擴(kuò)增結(jié)果基本一致。篩選出的抗PPV資源,為進(jìn)一步挖掘抗PPV的基因提供了材料基礎(chǔ),也可作為親本用于抗PPV品種的選育研究。
圖8 連鎖標(biāo)記PGS1 23對(duì)45份中國(guó)杏資源和2個(gè)參照品種Betinka和Harlayne的擴(kuò)增結(jié)果Fig.8 The profile of SSR amplification of the linkage marker PGS1.23in45Chinaapricotcultivarsandtwo control cultivars Betinka and Harlayne
目前檢測(cè)PPV的常用方法有酶聯(lián)免疫ELISA、普通RT-PCR、多重PCR以及實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)等。相對(duì)于ELISA方法,PCR方法更加高效和靈敏。Wetzel等[16]于1991年建立了普通RT-PCR檢測(cè)PPV的方法,根據(jù)病毒基因序列設(shè)計(jì)出引物,用此引物在感染PPV的材料中均能檢測(cè)到243 bp的擴(kuò)增片段,后來PPV的PCR檢測(cè)方法中均以是否擴(kuò)增出這一特異的片段為判斷標(biāo)準(zhǔn)[20]。本研究結(jié)果表明:熒光定量PCR和普通RT-PCR方法均能快速、準(zhǔn)確地檢測(cè)PPV病毒是否存在,但普通的RT-PCR檢測(cè)方法更加簡(jiǎn)單,成本相對(duì)較低,所以可優(yōu)先選用RT-PCR方法對(duì)杏、李等核果類果樹PPV病毒病進(jìn)行快速檢測(cè)。通常使用的植物材料、試劑及設(shè)備不同時(shí),所用的PCR反應(yīng)體系和反應(yīng)條件也有所不同。本研究針對(duì)杏葉片材料和所使用的試劑盒材料,建立了杏的PPV快速檢測(cè)RT-PCR反應(yīng)體系。建立PPV的快速檢測(cè)技術(shù)體系,可對(duì)已收集與保存的杏、李資源進(jìn)行PPV抗性評(píng)價(jià),也可對(duì)從歐美PPV高發(fā)地區(qū)引進(jìn)的櫻桃和桃等核果類果樹資源進(jìn)行擴(kuò)展檢測(cè),為控制PPV病毒在我國(guó)的發(fā)生與傳播提供一定的技術(shù)支撐。
SSR分子標(biāo)記技術(shù)結(jié)合BSA法是篩選與目的基因緊密連鎖的DNA分子標(biāo)記的一個(gè)有效方法。在果樹和作物上,通過此方案已經(jīng)對(duì)許多控制重要農(nóng)藝性狀的基因進(jìn)行了標(biāo)記的篩選[21-23]。本研究利用此方法,對(duì)已經(jīng)發(fā)表的PPV抗性基因定位區(qū)間內(nèi)的多個(gè)SSR標(biāo)記在PPV抗性分離群體中進(jìn)行進(jìn)一步的篩選,結(jié)果發(fā)現(xiàn)標(biāo)記PGS1.23與抗PPV基因連鎖程度最高,檢測(cè)分離群體PPV抗性的符合度達(dá)到了78.3%。而Decroocq等[8]用PGS1.23在多個(gè)歐洲品種材料上都沒有擴(kuò)增產(chǎn)物,這可能與試驗(yàn)材料和條件有關(guān)。獲得與抗PPV基因緊密連鎖分子標(biāo)記PGS1.23,一方面,可用于抗PPV育種的早期輔助選擇,在苗期進(jìn)行抗病株系的篩選,可有效節(jié)約人力、土地資源,并加快抗病育種進(jìn)程;另一方面,可用來在我國(guó)本土杏、李資源中尋找抗PPV的重要材料。目前,我國(guó)杏、李主產(chǎn)區(qū)尚未發(fā)生過PPV病毒病的爆發(fā)流行,由此可認(rèn)為我國(guó)本土的資源中也許存在抗病性材料,所以利用建立起來的檢測(cè)技術(shù)和抗PPV連鎖標(biāo)記對(duì)資源圃現(xiàn)有的杏、李資源進(jìn)行PPV抗性評(píng)價(jià),初步篩選出了5份抗PPV的杏品種資源,可為抗PPV育種提供較好的親本材料,也為進(jìn)一步對(duì)抗PPV基因的挖掘研究奠定了基礎(chǔ)。