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    普洱茶提取物及其復(fù)合配方改善糖尿病大鼠的糖脂代謝紊亂

    2018-08-19 05:43:10李惠陳曦劉暢黃晶洪淼郝麗萍楊雪鋒
    現(xiàn)代食品科技 2018年7期
    關(guān)鍵詞:玉米須普洱茶果糖

    李惠,陳曦,劉暢,黃晶,洪淼,郝麗萍,楊雪鋒

    (1.華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院公共衛(wèi)生學(xué)院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學(xué)系,食品營養(yǎng)與安全湖北省重點實驗室,湖北武漢430030)(2.武漢躍萊健康產(chǎn)業(yè)有限公司研究院,湖北武漢 430023)

    Ⅱ型糖尿?。═ype 2 diabetes mellitus,T2DM)發(fā)病率逐年升高[1],成為威脅全球人類健康的重要公共衛(wèi)生問題。2016年世界衛(wèi)生組織公布的數(shù)據(jù)顯示:2014年全球糖尿病發(fā)病率為8.5%,約有4.22億患者。而2型糖尿病更是占其中的90%,中國目前Ⅱ型糖尿病的發(fā)病率已超過全球平均水平,高達 11.6%[2]。糖尿病患病率逐年增加對于我國經(jīng)濟發(fā)展、人民健康和生活水平都是一項巨大的挑戰(zhàn)。長期高能量膳食導(dǎo)致的糖脂代謝紊亂和胰島素抵抗在2型糖尿病的發(fā)生發(fā)展中具有重要的作用,尋求有效的膳食干預(yù)措施防治Ⅱ型糖尿病成為研究者關(guān)注的熱點。

    研究表明,普洱茶具有一定程度的降糖降脂作用。動物實驗表明,普洱茶水提物能夠促進Wistar大鼠骨骼肌葡萄糖轉(zhuǎn)運,改善大鼠胰島素抵抗[3],還可以降低小鼠內(nèi)臟脂肪含量,但是對小鼠的體重不產(chǎn)生影響[4]。也有研究表明,普洱茶提取物和綠茶提取物能夠降低STZ糖尿病模型大鼠空腹血糖,同時均能降低血糖曲線下面積,但是普洱茶提取物在降低動物空腹血糖和血糖曲線下面積方面要優(yōu)于綠茶提取物[5]。菊粉低聚果糖又稱為菊糖,是一種功能性植物多糖,水解后生成低聚果糖[6],也具有一定調(diào)節(jié)糖脂代謝的功效。動物實驗發(fā)現(xiàn),低聚果糖能夠增加胰島素敏感性,改善大鼠的胰島素抵抗狀態(tài)[7],并且能夠調(diào)節(jié)腸道菌群的構(gòu)成,增加乳酸桿菌、雙歧桿菌等有益菌的含量,從而調(diào)節(jié)糖尿病大鼠的血糖水平[8,9]。另有研究發(fā)現(xiàn),低聚果糖可以增加Wistar大鼠的排便量以及糞便脂肪含量,減少脂肪攝取,達到降脂的效果[10]。玉米須含有多種對人體有益的化學(xué)成分及營養(yǎng)物質(zhì),我國傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)記載其有顯著的利尿、降血糖、抑菌等功效[11]。也有動物實驗表明,玉米須可以降低小鼠的基礎(chǔ)血糖水平,并且抑制外源葡萄糖刺激下的血糖升高[12]。玉米須水提物則可以降低2型糖尿病大鼠血清游離脂肪酸、膽固醇和甘油三酯水平,改善大鼠脂代謝[13]。可見,普洱茶提取物、低聚果糖和玉米須提取物對于糖脂代謝紊亂具有一定的調(diào)節(jié)作用,但其復(fù)合配方改善糖/脂代謝紊亂和胰島素抵抗的研究尚未見報道。本文將著重探討三者復(fù)合配方對糖尿病大鼠糖/脂代謝紊亂和胰島素抵抗的影響,為開發(fā)新的保健食品提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 受試物

    普洱茶提取(棕色粉末,3000 g/袋,茶多酚含量≥10%),由大閩食品(漳州)有限公司提供,人體推薦攝入量2 g/d,按成人60 kg·bw計為0.033 g/(kg·bw)。

    低聚果糖,(菊粉,白色粉末,4000 g/袋,低聚果糖含量≥95%);由河南旗諾食品配料有限公司提供,人體推薦攝入量6 g/d,按成人60 kg·bw計為0.100 g/(kg·bw)。

    玉米須提取物,(淺棕色粉末,3000 g/袋,葡萄聚糖≥60%),由南京澤朗生物科技有限公司提供,人體推薦攝入量 2 g/d,按成人 60 kg·bw 計為 0.033 g/(kg·bw)。

    復(fù)合配方,普洱茶粉、低聚果糖、玉米須提取物按一定的比例混合,人體推薦攝入量10 g/d,按成人60 kg·bw 計為 0.167 g/(kg·bw)。

    1.2 試劑和儀器

    鏈脲佐菌素(Streptozocin,STZ)、無水檸檬酸,上海凌峰化學(xué)試劑有限公司;檸檬酸三鈉,上海凌峰化學(xué)試劑有限公司;葡萄糖試劑盒,北京中生北控生物科技股份有限公司;血清胰島素ELISA試劑盒,瑞典Mercodia公司;總膽固醇試劑盒,北京中生北控生物科技股份有限公司;甘油三酯試劑盒,北京中生北控生物科技股份有限公司;SpectraMax M2全自動酶標儀,美國Molecular Devices/MD公司;低溫高速離心機,德國Eppendorf 5804R;血糖儀及血糖試紙,羅氏診斷產(chǎn)品有限公司;ZW-A微量震蕩器,中外合資深圳天南海北有限公司;電動勻漿器,美國Terre Haute公司。

    1.3 飼料

    大鼠飼料購自北京華阜康生物科技股份有限公司。高熱能飼料組成為:豬油10%、蔗糖15%、蛋黃粉15%、酪蛋白5%、膽固醇1.2%、膽酸鈉0.2%、磷酸氫鈣0.6%、石粉0.4%、小鼠維持飼料52.6%。

    1.4 動物實驗

    本次實驗糖/脂代謝紊亂、胰島素抵抗模型造模方法,參照國食藥監(jiān)?;痆2012]107號《輔助降血糖功能評價方法》。

    健康成年雄性Sprague Dawley大鼠80只,體重為 130~150 g,由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供(批準證號:SCXK<京>2016-0011)。飼養(yǎng)于華中科技大學(xué)實驗動物中心(實驗動物設(shè)施許可證號:SYXK(鄂)2016-0057)。環(huán)境溫度 20~26 ℃,相對濕度40%~70%。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,按體重隨機分為8組:正常對照組、模型對照組及6個受試物組。正常對照組給予普通飼料,模型對照組和受試物組給予高脂飼料。普洱茶、低聚果糖、玉米須組分別按人體推薦攝入量的 20 倍(0.667 g/(kg·bw)、2.000 g/(kg·bw)、0.667 g/(kg·bw))經(jīng)口灌喂給予受試物,低、中、高劑量復(fù)合配方組分別按人體推薦配方劑量的5倍(0.833 g/(kg·bw))、10 倍(1.667 g/(kg·bw))、20 倍(3.333 g/(kg·bw))經(jīng)口灌胃給予受試物,正常對照組和模型對照組同時經(jīng)口灌喂給予同體積的溶劑。大鼠灌胃量0.75 mL/(100 g·bw)。

    飼養(yǎng)期間,每周記錄實驗大鼠的體重變化。飼養(yǎng)4周后,模型對照組和6個受試物組禁食12 h(不禁水),給予鏈脲佐菌素30 mg/(kg·bw)腹腔注射,注射量1 mL/(100 g·bw)。注射后繼續(xù)給予高熱能飼料喂飼3~5 d,進行葡萄糖耐量試驗。實驗結(jié)束,各組動物禁食3~4 h處死,取腹壁脂肪稱重,計算臟體比。取血清及組織樣品-80 ℃保存,測定血清胰島素、血清及肝臟總膽固醇、甘油三酯水平。

    1.5 指標檢測

    1.5.1 葡萄糖耐量試驗

    實驗開始和實驗結(jié)束時,分別進行葡萄糖耐量試驗。各組動物禁食 3~4 h,進行尾靜脈采血,棄去第一滴血,采用羅氏血糖儀測定空腹血糖即給葡萄糖前(0 h)血糖值,各受試物組給予不同濃度受試物,模型對照組給予同體積溶劑,正常對照組不做處理,15 min后各組經(jīng)口給予葡萄糖2.5 g/(kg·bw),測定給葡萄糖后各組0.5、2 h的血糖值。觀察各組空腹血糖、給葡萄糖后(0.5、2 h)血糖及血糖曲線下面積(Area under curve of glucose,AUC)的變化。AUC=(0 h血糖+0.5 h)×0.5/2+(2 h+0.5 h)×1.5/2。

    1.5.2 血清葡萄糖、胰島素檢測

    1.5.2.1 血清葡萄糖檢測

    采用葡萄糖試劑盒測定大鼠血清葡萄糖濃度。將葡萄糖校準品分別進行0、2、4、8、16倍稀釋,制作標準曲線;

    血清8倍稀釋后加入96孔板混勻,波長505 nm,全自動酶標儀讀取各孔吸光度。根據(jù)標準曲線和各孔吸光度值計算血清葡萄糖濃度。

    1.5.2.2 血清胰島素檢測

    各組動物禁食3 h,采用大鼠ELISA試劑盒檢測血清胰島素。將胰島素校準品分別進行0、2、4、8、16倍稀釋,制作標準曲線,將血清和酶結(jié)合液加入96孔板混勻,孵育2 h,洗脫6次,加入底物孵育15 min后終止反應(yīng)。波長450 nm,全自動酶標儀讀取各孔吸光度。根據(jù)標準曲線和各孔吸光度值計算血清胰島素濃度。根據(jù)血清葡萄糖濃度和胰島素濃度計算胰島素抵抗指數(shù)(Homeostasis model assessment,HOMA-IR)。胰島素抵抗指數(shù)(HOMA-IR)=胰島素/22.5e-ln血糖≈血清葡萄糖濃度×胰島素濃度/22.5。

    1.5.3 血清以及肝臟TC、TG檢測

    采用膽固醇和甘油三酯檢測試劑盒測定大鼠血清和肝臟總膽固醇(Total cholesterol,TC)、甘油三酯(Triglycerides,TG)濃度。將校準品分別進行0、2、4、8、16倍稀釋,制作標準曲線;血清4倍稀釋后加入96孔板混勻,37 ℃孵育10 min,波長510 nm,全自動酶標儀讀取各孔吸光度。根據(jù)標準曲線和各孔吸光度值計算血清TC、TG濃度。準確稱取大鼠肝臟樣品100 mg,置于900 μL異丙醇中,冰上勻漿后于4 ℃冰箱靜置48 h,隨后3000 r離心15 min,取上清,測定步驟同血清TC、TG測定。

    1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

    采用Excel進行數(shù)據(jù)錄入,統(tǒng)計分析采用T檢驗、方差分析SNK檢驗(方差齊時)及DunnettT3檢驗(方差不齊時)(SPSS 23.0)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 大鼠體重變化及臟體比

    大鼠體重變化情況如表1所示。各組大鼠初始體重無顯著性差異,模型對照組體重從第一周末開始顯著高于正常對照組(p<0.05);普洱茶組和高劑量復(fù)方組體重從第一周末開始顯著低于模型對照組(p<0.05),中劑量復(fù)方組體重從第二周末開始顯著低于模型對照組(p<0.05),低劑量復(fù)方組體重從第四周末開始也顯著低于模型對照組(p<0.05)。模型對照組及各受試物組經(jīng)STZ造模后,出現(xiàn)多食、多飲、多尿以及體重下降“三多一少”的2型糖尿病癥狀,所以實驗?zāi)┢诖笫篌w重出現(xiàn)下降的趨勢。

    實驗結(jié)束時,各組大鼠腹壁脂肪重量及腹壁脂肪占體重的比值(臟體比)見表 2。模型對照組腹壁脂肪重量及臟體比顯著高于正常對照組(p<0.05)。經(jīng)方差分析,與模型對照組相比,普洱茶組、低聚果糖組、低、中、高劑量復(fù)方組腹壁脂肪重量及臟體比明顯降低(p<0.05),而玉米須組沒有顯著差異。

    表1 受試物對大鼠體重的影響Table 1 Effects of test substances on body weight in rats(±SD,g)

    表1 受試物對大鼠體重的影響Table 1 Effects of test substances on body weight in rats(±SD,g)

    注:*p< 0.05,與正常對照組比較;#p< 0.05,與模型對照組比較。

    組別 動物數(shù)量/n 始重 第一周末 第二周末 第三周末 第四周末 末重正常對照組 10 239.80±6.75 298.80±8.34 353.20±16.99 376.40±13.16 416.40±12.83 427.20±17.20模型對照組 8 242.80±6.61 310.00±10.66* 370.90±16.75* 413.30±17.97* 455.00±24.15* 428.30±28.28普洱茶組 8 246.40±11.06 285.50±21.19# 334.00±30.30# 362.50±32.65# 390.60±47.36# 364.60±39.65#低聚果糖組 8 242.80±8.45 293.80±24.33 345.40±33.68 384.40±42.62 427.90±44.42 415.60±34.55玉米須組 8 245.60±9.26 309.10±20.38 376.30±28.27 403.60±42.56 439.30±48.99 419.10±48.95低劑量復(fù)方組 8 240.80±3.37 297.30±10.19 346.00±16.7 379.60±18.35 404.10±21.94# 387.10±46.5中劑量復(fù)方組 8 240.40±5.37 291.90±15.63 338.30±15.45# 372.00±16.85# 404.60±24.4# 379.00±25.14#高劑量復(fù)方組 8 241.00±6.87 281.60±7.54# 315.50±9.68# 334.10±7.12# 360.00±6.00# 337.40±11.94#

    表2 受試物對大鼠腹壁脂肪重量和臟體比的影響Table 2 Effects of test substances on abdominal fat weight and organ coefficient in rats(±SD)

    表2 受試物對大鼠腹壁脂肪重量和臟體比的影響Table 2 Effects of test substances on abdominal fat weight and organ coefficient in rats(±SD)

    組別 動物數(shù)量/n 腹壁脂肪/g 臟體比/%正常對照組 10 2.58±1.48 0.61±0.35模型對照組 8 5.55±1.16* 1.29±0.23*普洱茶組 8 2.05±0.38# 0.57±0.11#低聚果糖組 8 3.83±1.39# 0.91±0.29#玉米須組 8 5.09±1.69 1.22±0.39低劑量復(fù)方組 8 1.58±0.49# 0.40±0.10#中劑量復(fù)方組 8 2.62±1.47# 0.69±0.40#高劑量復(fù)方組 8 1.64±0.71# 0.49±0.21#

    注:*p< 0.05,與正常對照組比較;#p< 0.05,與模型對照組比較。

    2.2 受試物對大鼠葡萄糖耐量的影響

    大鼠實驗前后糖耐量試驗結(jié)果的比較見表 3。實驗后模型對照組0.5小時血糖值≥10 mmol/L,模型對照組0.5 h、2 h任一時間點血糖值、血糖曲線下面積顯著高于正常對照組(p<0.05),可見本實驗糖代謝紊亂模型成立。經(jīng)方差分析,與模型對照組相比:中劑量復(fù)方組0.5 h血糖顯著降低(p<0.05),其他受試物組未見明顯變化。血糖曲線下面積出現(xiàn)下降的趨勢,但是也未見顯著差異。

    2.3 受試物對大鼠胰島素抵抗指數(shù)(HOMA-IR)的影響

    實驗結(jié)束時,各組大鼠血清葡萄糖濃度、胰島素濃度和胰島素抵抗指數(shù)結(jié)果見表 4。經(jīng)方差分析,模型對照組血清葡萄糖濃度和胰島素濃度顯著高于正常對照組(p<0.05),可見胰島素抵抗模型成立。與模型對照組相比,各受試物組血清葡萄糖濃度沒有顯著差異;普洱茶組、低聚果糖組及低、中、高劑量復(fù)方組胰島素濃度和胰島素抵抗指數(shù)呈顯著下降(p<0.05)。

    表3 實驗前后大鼠空腹血糖及血糖曲線下面積Table 3 Fasting glucose and the area under curve of glucose before and after the experiment(±SD,mmol/L)

    表3 實驗前后大鼠空腹血糖及血糖曲線下面積Table 3 Fasting glucose and the area under curve of glucose before and after the experiment(±SD,mmol/L)

    注:*p< 0.05,與正常對照組比較;#p< 0.05,與模型對照組比較。

    組別 實驗前(±SD) 實驗后(±SD)空腹血糖 0.5 h血糖 2 h血糖 AUC 空腹血糖 0.5 h血糖 2 h血糖 AUC正常對照組 6.62±0.42 8.90±0.61 7.74±0.86 16.37±0.95 6.18±0.23 8.15±0.56 7.64±0.64 15.39±0.80模型對照組 6.63±0.37 8.36±0.30 7.91±0.47 15.96±0.26 23.04±2.07* 31.98±1.34* 25.68±4.96* 56.99±4.63*普洱茶組 7.00±0.35 8.94±0.34 8.24±0.89 16.89±0.82 21.58±5.80 30.50±3.64 26.49±4.09 55.78±6.91低聚果糖組 6.78±0.36 8.43±0.77 7.53±0.62 15.78±1.20 22.23±7.72 25.11±9.31 22.76±8.22 47.75±16.71玉米須組 7.05±0.31 8.73±0.71 8.24±1.53 16.68±1.78 24.05±6.43 29.71±4.30 25.84±6.72 56.48±10.92低劑量復(fù)方組 6.80±0.30 9.09±0.99 7.48±0.85 16.41±1.15 19.78±8.42 25.68±7.09 22.71±7.90 49.11±14.14中劑量復(fù)方組 6.71±0.53 8.65±0.74 7.76±0.77 16.18±1.07 16.21±7.51 23.29±7.28# 20.71±7.29 42.88±12.94高劑量復(fù)方組 7.08±0.38 8.71±0.46 7.54±0.89 16.16±1.43 22.55±3.56 28.68±6.18 22.21±9.06 50.99±11.39

    表4 受試物對大鼠胰島素抵抗指數(shù)的影響Table 4 Effects of test substances on insulin resistance index in rats

    2.4 受試物對血清及肝臟總膽固醇(TC)和甘油三酯(TG)的影響

    實驗結(jié)束時,各組大鼠血清及肝臟總膽固醇和甘油三酯水平見表 5。模型對照組血清及肝臟 TC、TG濃度顯著高于正常對照組(p<0.05),可見脂代謝紊亂模型成立。經(jīng)方差分析,與模型對照組相比:普洱茶組、低、中、高劑量復(fù)方組血清TG呈明顯下降(p<0.05);普洱茶組以及中、高劑量復(fù)方組肝臟TC呈顯著下降(p<0.05);普洱茶組、玉米須組及高劑量復(fù)方組肝臟TG呈顯著下降(p<0.05)。

    表5 受試物對大鼠血清及肝臟中總膽固醇和甘油三酯的影響Table 5 Effects of test substances on serum and liver total cholesterol, triglyceride in rats

    3 結(jié)論

    3.1 超重或肥胖是Ⅱ型糖尿病發(fā)生發(fā)展的一個危險因素[14]。研究發(fā)現(xiàn),200 mg/(kg·bw)或 400 mg/(kg·bw)普洱茶提取物分別能夠使db/db小鼠體重降低9.83%和14.89%[15],低聚果糖能夠增加排便次數(shù)以及糞便脂肪含量,降低高碳水化合物高脂飼料喂養(yǎng)大鼠12.3%的體重[10],玉米須多糖則可能通過延長胃排空時間,降低食欲,加速腸蠕動,促進排便等作用降低體重[16]。本文觀察到,普洱茶組和低、中、高劑量復(fù)方組大鼠體重均顯著低于模型對照組,分別降低了 14.87%、9.62%、11.51%、21.22%,表明普洱茶提取物及復(fù)合配方能夠有效減緩高脂喂養(yǎng)導(dǎo)致的大鼠超重或肥胖的發(fā)展。低聚果糖顯著降低了大鼠腹壁脂肪重量及臟體比,但對大鼠體重的影響不明顯,玉米須則對大鼠體重和脂肪含量均無顯著影響。

    3.2 研究發(fā)現(xiàn),普洱茶水提物能夠增加 HepG2細胞葡萄糖的攝取,抑制大鼠腸道蔗糖酶、麥芽糖酶和豬胰腺淀粉酶的活性,抑制db/db小鼠血清胰島素和葡萄糖水平的升高,糖耐量試驗中,400 mg/(kg·bw)普洱茶水提物能夠使db/db小鼠1 h和3 h血糖升高值比對照組低46.39%和53.06%,有效改善小鼠糖耐量損傷和胰島素敏感性[15]。低聚果糖是一種重要的益生元[17]。有研究發(fā)現(xiàn),低聚果糖能夠增加STZ誘導(dǎo)的2型糖尿病Wistar大鼠的糖耐量,增加胰島素的分泌,有效降低空腹血糖水平[18],并且可提高β細胞的葡萄糖敏感性,降低餐后血糖[19]。玉米須多糖能夠使糖尿病小鼠血糖降低46.47%,促進肝糖原合成[20]。玉米須皂苷也具有較好的降糖活性,能降低正常小鼠血糖水平,對腎上腺素、四氧嘧啶、鏈脲佐菌素所致的小鼠高血糖模型都有較好的降糖作用,但是玉米須水提物對小鼠血漿胰島素水平?jīng)]有產(chǎn)生影響[21]。本次研究的葡萄糖耐量試驗中,中劑量復(fù)方組0.5 h血糖比模型對照組降低了27.17%。而普洱茶組、低聚果糖組及低、中、高劑量復(fù)方組大鼠胰島素濃度比模型對照組分別降低了66.44%、47.27%、65.46%、48.81%和69.42%,胰島素抵抗指數(shù)分別降低了79.88%、57.09%、76.95%、78.45%和75.26%,提示普洱茶粉、低聚果糖以及低、中、高劑量復(fù)方組可能具有降糖和改善胰島素抵抗的作用,而玉米須單品沒有表現(xiàn)出顯著的影響。苗明三等人的研究中發(fā)現(xiàn),玉米須皂苷能夠顯著降低STZ誘導(dǎo)的高糖模型小鼠血糖水平,中劑量組(0.2 g/(kg·bw))效果最佳,血糖下降率達39.64%[21],而本次實驗并沒有觀察到玉米須提取物顯著的降糖作用,可能是與受試物劑量和降糖活性成分含量有關(guān)。

    3.3 普洱茶提取物可以顯著下調(diào)固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白-1c等脂質(zhì)合成相關(guān)基因的表達,使大鼠腎周脂肪和睪周脂肪組織的重量分別降低 48.23%和43.34%[22]。低聚果糖可以增加胃內(nèi)容物的黏度,延長胃排空時間,有效降低Zucker Fa/Fa大鼠的自主進食和脂肪變性,使肝臟甘油三酯含量降低36.73%[23],低聚果糖還能夠減少肝臟甘油三酯和膽固醇的合成,促進膽固醇轉(zhuǎn)化為膽汁酸,飼料中添加 8%的低聚果糖可以使糞便膽汁酸的排泄增加56.25%[24]。玉米須水提物則能夠通過降低膽固醇合成產(chǎn)生降血脂的功效[25]。本次實驗中,與模型對照組相比,普洱茶組以及低、中、高劑量復(fù)方組血清 TG分別降低了 77.59%、67.67%、69.40%和 74.57%;普洱茶組以及中、高劑量復(fù)方組肝臟 TC分別降低了 40.18%、26.56%和38.25%;普洱茶組、玉米須組以及高劑量復(fù)方組肝臟TG分別降低了39.18%、36.06%和32.36%。普洱茶組、低聚果糖組、低、中、高劑量復(fù)方組腹壁脂肪重量分別降低了63.06%、30.99%、71.53%、52.79%和70.45%,臟體比分別降低了55.81%、29.46%、68.99%、46.51%和62.02%。提示普洱茶粉、低聚果糖、玉米須以及低、中、高劑量復(fù)方組均具有一定改善大鼠脂代謝紊亂的作用。

    3.4 綜上所述,本研究采用高脂聯(lián)合小劑量 STZ建立糖/脂代謝紊亂、胰島素抵抗模型,普洱茶提取物對該模型大鼠表現(xiàn)出顯著的減重、降脂以及改善胰島素抵抗的良好效果;低聚果糖則能夠有效降低大鼠腹壁脂肪重量和臟體比,改善胰島素抵抗狀態(tài);而玉米須在降低肝脂方面具有一定的功效。三種受試物的復(fù)合配方則能夠顯著降低大鼠體重、血脂、肝脂、腹壁脂肪含量和臟體比,并能有效改善大鼠葡萄糖耐量和胰島素抵抗。本研究的結(jié)果為輔助降血糖和降血脂的保健食品開發(fā)提供了重要的理論依據(jù)。

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