王鳳麗,孫士明,李志
(1大連市中心醫(yī)院,遼寧大連116033;2齊齊哈爾醫(yī)學(xué)院附屬第三醫(yī)院)
肝細(xì)胞癌的發(fā)生是多種因素協(xié)同作用的結(jié)果,與基因的異常表達(dá)直接或間接相關(guān)。黏蛋白1(MUC1)又名PEM,是黏蛋白家族成員之一。越來越多的研究提示,MUC1作為癌基因與細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化、遷移及侵襲相關(guān)[1]。有研究報(bào)道,在肝癌細(xì)胞及肝癌組織中也發(fā)現(xiàn)MUC1異常表達(dá),但MUC1與肝癌發(fā)生發(fā)展的關(guān)系尚不明確[2~4]。2015年12月~2017年12月,我們觀察了MUC1基因沉默對(duì)細(xì)胞增殖及侵襲能力的影響,現(xiàn)分析結(jié)果并探討其作用機(jī)制。
1.1 材料 肝癌HepG2細(xì)胞購(gòu)于上海細(xì)胞庫(kù);pGCsilencerTMU6.Neo.GFP.NC質(zhì)粒購(gòu)于上海吉?jiǎng)P基因化學(xué)技術(shù)有限公司;WST-1細(xì)胞增殖檢測(cè)試劑盒購(gòu)于羅氏公司;細(xì)胞培養(yǎng)相關(guān)試劑購(gòu)于Hyclone公司;TRIzol及細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine2000購(gòu)于Invitrogen公司;Transwell小室購(gòu)于Corning 公司;小鼠抗人MUC1單克隆抗體購(gòu)于Neomarker公司;兔抗人β-actin/cyclin D1/c-myc/MMP-9單克隆抗體購(gòu)于Epitomics公司。
1.2 siRNA表達(dá)載體構(gòu)建 根據(jù)GenBank登陸的MUC1(J05582)保守序列,依據(jù)siRNA設(shè)計(jì)原則選擇GACTGATGCCAGTAGCACT及GCAGCCTCTCGATATAACC兩個(gè)靶點(diǎn),設(shè)計(jì)合成了兩對(duì)siRNA的模板DNA序列,并將其連接到pGC silencer U6/Neo/GFP載體上獲得pGC-MUC1-siRNA1、pGC-MUC1-siRNA2質(zhì)粒。選取重組質(zhì)粒pGCsilencerTMU6.Neo.GFP.NC(pGC-NC)作為無關(guān)序列對(duì)照質(zhì)粒。
1.3 HepG2細(xì)胞MUC1基因沉默 采用含10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞,待細(xì)胞融合>90%時(shí)隨機(jī)分為四組,NC組轉(zhuǎn)染pGC-NC質(zhì)粒,HMR-1組、HMR-2組分別轉(zhuǎn)染pHMR-2pGC-MUC1-siRNA、pHMR-2pGC-MUC1-siRNA2質(zhì)粒,空白對(duì)照組常規(guī)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染方法:采用陽離子脂質(zhì)法,用含10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,經(jīng)胰酶消化后接種于24孔板,置于37 ℃ 5% CO2孵箱中培養(yǎng),次日待細(xì)胞融合>90%,吸棄上清,用無血清培養(yǎng)基洗細(xì)胞兩次;將pGC-NC和pGC-MUC1-siRNA1、pGC-MUC1-siRNA2質(zhì)粒與Lipofectamine2000按1∶3的比例混合,轉(zhuǎn)染HepG2細(xì)胞,具體操作方法按照說明書。轉(zhuǎn)染細(xì)胞于37 ℃ 5% CO2孵箱中孵育48 h。分別采用RT-PCR法、Western blotting法檢測(cè)各組MUC1 mRNA和蛋白的相對(duì)表達(dá)量。結(jié)果顯示,HMR-1組及HMR-2組細(xì)胞MUC1 mRNA和蛋白相對(duì)表達(dá)量均低于NC組及空白對(duì)照組(P均<0.05),提示轉(zhuǎn)染質(zhì)粒沉默MUC1成功。見表1。
1.4 相關(guān)指標(biāo)觀察
1.4.1 細(xì)胞增殖活性 將HepG2細(xì)胞培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,0.25%胰酶消化,臺(tái)盼藍(lán)計(jì)數(shù),接種至96孔板,每孔接種5×103個(gè)細(xì)胞。次日,待細(xì)胞匯合大于70%時(shí)隨機(jī)分為四組,分組及處理同1.3。采用WST-1試劑盒分別于轉(zhuǎn)染后24、48 h檢測(cè)各組細(xì)胞450 nm波長(zhǎng)處吸光度(A)值。
表1 四組細(xì)胞MUC1 mRNA和MUC1蛋白相對(duì)表達(dá)量比較
注:與NC組比較,*P<0.05;與空白對(duì)照組比較,△P<0.05。
1.4.2 細(xì)胞侵襲情況 采用Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)。用無血清培養(yǎng)液將Matrige膠進(jìn)行1∶10稀釋,取100 μL加入到Transwell小室包被小室底部上室面,置于37 ℃、5% CO2孵箱中濕化3 h,取轉(zhuǎn)染48 h的四組細(xì)胞(細(xì)胞分組及處理同1.3),用含1%血清的IMDM調(diào)整細(xì)胞密度為5×105個(gè)/mL。Transwell小室上室加入200 μL單細(xì)胞懸液,下室加入600 μL含10% NCS的IMDM培養(yǎng)液,每組3個(gè)復(fù)孔,將培養(yǎng)板置于37 ℃、5% CO2孵箱中培養(yǎng)48 h,用棉簽輕輕擦掉上室中膜上的細(xì)胞。于倒置顯微鏡下隨機(jī)選取5個(gè)不同視野計(jì)數(shù)穿膜細(xì)胞數(shù),并計(jì)算各組細(xì)胞相對(duì)侵襲率(與NC組比較),每組重復(fù)3次取平均值。
1.4.3 細(xì)胞cyclinD1、c-myc、MMP-9 mRNA表達(dá) 采用RT-PCR法檢測(cè)。收集轉(zhuǎn)染48 h的四組細(xì)胞(細(xì)胞分組及處理同1.3)。采用TRIzol試劑裂解細(xì)胞,提取細(xì)胞總RNA;采用半定量RT-PCR法檢測(cè)各組細(xì)胞cyclinD1、c-myc、MMP-9 mRNA表達(dá),以β-actin為內(nèi)參照。引物由上海生物工程科技有限公司合成,引物信息及反應(yīng)條件見表2。PCR產(chǎn)物采用1.5%瓊脂糖凝膠電泳分離,于凝膠成像儀中采集圖像,并通過ImageJ軟件分析電泳條帶灰度值。
1.4.4 細(xì)胞cyclinD1、c-myc、MMP-9蛋白表達(dá) 采用Western blotting法。收集轉(zhuǎn)染48 h的四組細(xì)胞(細(xì)胞分組及處理同1.3),采用RIPA蛋白裂解液(1%Triton X-100、1% deoxycholate、0.1% SDS)裂解細(xì)胞,收集細(xì)胞裂解上清,采用BCA試劑盒檢測(cè)細(xì)胞裂解液蛋白濃度,取等量的蛋白于100 ℃沸水中變性5 min,在10% SDS-PAGE中電泳分離,并轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,加入一抗(兔抗人β-actin、cyclin D1、c-myc、MMP-9單克隆抗體)雜交4 ℃孵育過夜;次日HRP標(biāo)記的二抗(山羊抗小鼠/兔IgG)雜交,室溫孵育1 h;ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒顯色,利用化學(xué)發(fā)光儀采集圖像,計(jì)算各組細(xì)胞中各蛋白的相對(duì)表達(dá)量。
表2 各基因的引物序列及反應(yīng)條件
2.1 各組細(xì)胞增殖能力比較 見表3。
表3 四組細(xì)胞增殖能力比較
注:與NC組比較,*P<0.05;與空白對(duì)照組比較,△P<0.05。
2.2 各組細(xì)胞侵襲能力比較 空白對(duì)照組、NC組、HMR-1組、HMR-2組細(xì)胞相對(duì)侵襲率分別為1.09±0.13、1.00±0.15、0.26±0.07、0.36±0.09,HMR-1組、HMR-2組均低于NC組、空白對(duì)照組(P均<0.05)。
2.3 各組細(xì)胞cyclinD1、c-myc、MMP-9 mRNA及蛋白表達(dá)比較 見表4。
表4 四組細(xì)胞cyclinD1、c-myc、MMP-9 mRNA及蛋白相對(duì)表達(dá)量比較
注:與NC組比較,*P<0.05;與空白對(duì)照組比較,△P<0.05。
MUC1蛋白是一個(gè)高分子量的跨膜糖蛋白,由胞外區(qū)域(MUC1-N)、跨膜區(qū)域(MUC1-TM)及胞漿尾段(MUC1-CT)三部分組成,最先由Shimizu等[5]于1982年從人的乳汁中分離得到,編碼基因位于lq21。MUC1蛋白正常表達(dá)于腺上皮細(xì)胞近管腔面,呈極性分布。在部分腫瘤細(xì)胞及腫瘤組織中MUC1高表達(dá),異常糖基化,失去極性,分布于整個(gè)細(xì)胞表面。MUC1蛋白胞外段可作為受體與其配體結(jié)合,或作為配體與其受體結(jié)合發(fā)揮生物學(xué)作用,其胞內(nèi)段與細(xì)胞內(nèi)多條信號(hào)傳導(dǎo)通路相關(guān)聯(lián),在細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化、遷移及侵襲中起重要作用。Tsutsumida等[6]將攜帶人全長(zhǎng)MUC1基因的重組載體轉(zhuǎn)染人胰腺癌S2-013細(xì)胞,使之過表達(dá)MUC1蛋白,該細(xì)胞增殖能力明顯增強(qiáng)。反之,利用RNAi技術(shù)沉默S2-013 細(xì)胞株MUC1 mRNA 及蛋白表達(dá),則可抑制胰腺癌細(xì)胞體外增殖及體內(nèi)成瘤能力。Xu等[7]采用MUC1 siRNA 轉(zhuǎn)染人非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞株NCI-H1650 下調(diào)MUC1基因表達(dá),也得到了類似的結(jié)果。本研究采用RNAi技術(shù),通過干擾沉默MUC1基因表達(dá),結(jié)果顯示,HMR-1、HMR-2組較NC組、空白對(duì)照組細(xì)胞增殖活性明顯減低,證實(shí)MUC1可抑制肝癌細(xì)胞的增殖。
有研究報(bào)道,MUC1-CT與細(xì)胞內(nèi)多條信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路相關(guān),在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用[8~10]。作為Wnt/β-catenin信號(hào)通路的靶基因,細(xì)胞周期蛋白cyclinD1及癌基因c-myc上調(diào)能夠促進(jìn)細(xì)胞增殖及惡性轉(zhuǎn)化。Li等[10]研究發(fā)現(xiàn),MUC1過表達(dá)參與Wnt/β-catenin信號(hào)通路的活化,MUC1-CT通過與β-catenin相互作用形成復(fù)合物,調(diào)節(jié)β-catenin的定位,活化轉(zhuǎn)錄因子LEF/TCF,上調(diào)cyclinD1及c-myc基因表達(dá),促進(jìn)乳腺腫瘤的發(fā)生與進(jìn)展。本研究結(jié)果顯示,HMR-1組及HMR-2組細(xì)胞cyclinD1和c-myc表達(dá)水平顯著降低,可能為MUC1基因沉默抑制肝癌細(xì)胞增殖的可能機(jī)制。
研究證實(shí),MUC1與腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移有關(guān),在乳腺癌患者的轉(zhuǎn)移灶及循環(huán)系統(tǒng)腫瘤細(xì)胞中均發(fā)現(xiàn)MUC1蛋白高表達(dá)[11]。Horm等[11]發(fā)現(xiàn),小鼠乳腺腫瘤DA3細(xì)胞過表達(dá)MUC1后,細(xì)胞通過基質(zhì)膠的能力明顯增強(qiáng)。本研究結(jié)果顯示,HMR-1組、HMR-2組細(xì)胞侵襲能力顯著減低,表明MUC1在調(diào)節(jié)肝癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移中發(fā)揮重要作用。MMPs是一組含鋅離子的肽鏈內(nèi)切酶家族,在腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移中扮演重要角色[12]。研究發(fā)現(xiàn),活化JNK/Smad2L/Smad2L/C信號(hào)通路能夠上調(diào)MMP-1、MMP-2 及 MMP-9表達(dá),從而促進(jìn)肝癌細(xì)胞的侵襲及轉(zhuǎn)移能力[13,14]。Nart等[15]報(bào)道,MMP-9表達(dá)上調(diào)與肝癌進(jìn)展及侵襲轉(zhuǎn)移相關(guān)。本研究HMR-1組及HMR-2組細(xì)胞MMP-9表達(dá)顯著下調(diào),提示MUC1能夠調(diào)節(jié)MMP表達(dá),在肝癌的侵襲及轉(zhuǎn)移中發(fā)揮重要作用。
綜上所述,沉默HepG2細(xì)胞MUC1基因表達(dá)能夠抑制肝癌HepG2細(xì)胞增殖及侵襲,其機(jī)制可能與下調(diào)cyclinD1、c-myc及MMP-9表達(dá)有關(guān)。